Метод количественной оценки сократительной активности миотуб
- Авторы: Махновский П.А.1, Вепхвадзе Т.Ф.1, Попов Д.В.1
-
Учреждения:
- Государственный научный центр Российской Федерации — Институт медико-биологических проблем Российской академии наук
- Выпуск: Том 20, № 4 (2025)
- Страницы: 337-346
- Раздел: Оригинальные исследования
- URL: https://bakhtiniada.ru/2313-1829/article/view/381688
- DOI: https://doi.org/10.17816/gc679035
- EDN: https://elibrary.ru/FCCWOV
- ID: 381688
Цитировать
Аннотация
Обоснование. Миотубы — многоядерные терминально дифференцированные клетки, которые широко используются для изучения изменений, вызванных сократительной активностью мышц, метаболическими нарушениями и миопатиями. Способность к сокращению является ключевым показателем зрелости мышечных клеток, поэтому количественная характеристика этого показателя необходима для оценки степени дифференцировки миотуб. Существующие методы оценки вызванной сократительной активности миотуб имеют ряд ограничений: короткие анализируемые интервалы записи, невозможность отличить клеточную активность от артефактов и др.
Цель. Разработать метод количественной оценки вызванной сократительной активности миотуб, учитывающий период их сокращения-расслабления и влияние артефактов, а также позволяющий анализировать десятки циклов сокращения-расслабления.
Методы. Миотубы C2C12 на 9–11-й день дифференцировки стимулировали электрическим током в течение 1 ч: в течение 300 мс — последовательные биполярные прямоугольные импульсы длительностью 2 мс (45 Гц, 1,7 мА/лунка) и в течение 700 мс — покой. Сократительную активность регистрировали на видео (40 с в начале и в конце каждой сессии) и затем количественно характеризовали с помощью существующих методов, основанных на оценке смещения участка изображения или изменения яркости пикселей, а также с помощью разработанного метода, основанного на оценке среднего стандартного отклонения яркости пикселей в скользящем окне.
Результаты. Предложенный нами метод по сравнению с существующими на порядок снизил влияние артефактов (изменение фокуса и движение частиц в среде) на индекс сократительной активности миотуб, а также коэффициент вариации между техническими повторами — в 2 раза. Увеличение продолжительности анализируемой записи (до 40 с) позволило снизить вариативность (в 1,4–2,3 раза) относительно коротких видеозаписей. Программа для языка python (https://github.com/maxpauel/movindex) выложена в открытом доступе.
Заключение. В работе предложен количественный метод оценки вызванной сократительной активности миотуб, позволяющий эффективно удалять артефакты, связанные с движением частиц в культуральной среде и изменением фокуса, а также оценивать среднюю сократительную активность в кадре (поле зрения) в течение длительного времени.
Ключевые слова
Об авторах
Павел Александрович Махновский
Государственный научный центр Российской Федерации — Институт медико-биологических проблем Российской академии наук
Автор, ответственный за переписку.
Email: maxpauel@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-3934-6514
SPIN-код: 6720-5905
канд. биол. наук
Россия, МоскваТатьяна Федоровна Вепхвадзе
Государственный научный центр Российской Федерации — Институт медико-биологических проблем Российской академии наук
Email: anegina13@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-7352-8469
SPIN-код: 1411-7760
канд. биол. наук
Россия, МоскваДаниил Викторович Попов
Государственный научный центр Российской Федерации — Институт медико-биологических проблем Российской академии наук
Email: danil-popov@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-3981-244X
SPIN-код: 3148-2905
д-р биол. наук
Россия, МоскваСписок литературы
- Fujita H, Nedachi T, Kanzaki M. Accelerated de novo sarcomere assembly by electric pulse stimulation in c2c12 myotubes. Exp Cell Res. 2007;313(9):1853–1865. doi: 10.1016/j.yexcr.2007.03.002 EDN: LRNWIX
- Nedachi T, Fujita H, Kanzaki M. Contractile C2C12 myotube model for studying exercise-inducible responses in skeletal muscle. Am J Physiol Endocrinol Metab. 2008;295(5):E1191–Е204. doi: 10.1152/ajpendo.90280.2008
- Lambernd S, Taube A, Schober A, et al. Contractile activity of human skeletal muscle cells prevents insulin resistance by inhibiting pro-inflammatory signalling pathways. Diabetologia. 2012;55(4):1128–1139. doi: 10.1007/s00125-012-2454-z EDN: URSVCW
- Ferrari MB, Podugu S, Eskew JD. Assembling the myofibril: coordinating contractile cable construction with calcium. Cell Biochem Biophys. 2006;45(3):317–337. doi: 10.1385/CBB:45:3:317 EDN: MFMQIV
- Dreher SI, Grubba P, von Toerne C, et al. IGF1 promotes human myotube differentiation toward a mature metabolic and contractile phenotype. Am J Physiol Cell Physiol. 2024;326(5):C1462–C1481. doi: 10.1152/ajpcell.00654.2023 EDN: FVPJMA
- Murata A, Akiyama H, Honda H, Shimizu K. Electrical pulse stimulation-induced tetanic exercise simulation increases the secretion of extracellular vesicles from C2C12 myotubes. Biochem Biophys Res Commun. 2023;672:177–184. doi: 10.1016/j.bbrc.2023.06.054 EDN: IKJNJU
- Manabe Y, Miyatake S, Takagi M, et al. Characterization of an acute muscle contraction model using cultured C2C12 myotubes. PLoS One. 2012;7(12):e52592. doi: 10.1371/journal.pone.0052592
- Arifuzzaman M, Ito A, Ikeda K, et al. Fabricating muscle-neuron constructs with improved contractile force generation. Tissue Eng Part A. Apr 2019;25(7-8):563–574. doi: 10.1089/ten.TEA.2018.0165
- Schneider O, Zeifang L, Fuchs S, et al. User-friendly and parallelized generation of human induced pluripotent stem cell-derived microtissues in a centrifugal heart-on-a-chip. Tissue Eng Part A. 2019;25(9-10):786–798. doi: 10.1089/ten.TEA.2019.0002
- Hennig K, Hardman D, Barata DM, et al. Generating fast-twitch myotubes in vitro with an optogenetic-based, quantitative contractility assay. Life Sci Alliance. 2023;6(10):e202302227. doi: 10.26508/lsa.202302227 EDN: VVMVUU
- Bajaj P, Reddy B Jr, Millet L, et al. Patterning the differentiation of C2C12 skeletal myoblasts. Integr Biol (Camb). 2011;3(9):897–909. doi: 10.1039/c1ib00058f
- Baryshyan AL, Woods W, Trimmer BA, Kaplan DL. Isolation and maintenance-free culture of contractile myotubes from Manduca sexta embryos. PLoS One. 2012;7(2):e31598. doi: 10.1371/journal.pone.0031598 EDN: XZAXWF
- Chen W, Nyasha MR, Koide M, et al. In vitro exercise model using contractile human and mouse hybrid myotubes. Sci Rep. 2019;9(1):11914. doi: 10.1038/s41598-019-48316-9 EDN: VTEBSZ
- Li Y, Chen W, Ogawa K, et al. Feeder-supported in vitro exercise model using human satellite cells from patients with sporadic inclusion body myositis. Sci Rep. 2022;12(1):1082. doi: 10.1038/s41598-022-05029-w EDN: ERAYSX
Дополнительные файлы

