🔧На сайте запланированы технические работы
25.12.2025 в промежутке с 18:00 до 21:00 по Московскому времени (GMT+3) на сайте будут проводиться плановые технические работы. Возможны перебои с доступом к сайту. Приносим извинения за временные неудобства. Благодарим за понимание!
🔧Site maintenance is scheduled.
Scheduled maintenance will be performed on the site from 6:00 PM to 9:00 PM Moscow time (GMT+3) on December 25, 2025. Site access may be interrupted. We apologize for the inconvenience. Thank you for your understanding!

 

Filamentous Green Algae Cladophora spp. in the Crimean Hypersaline Water Bodies: Ecosystem Engineers and a Valuable Resource (Review)

Capa

Citar

Texto integral

Acesso aberto Acesso aberto
Acesso é fechado Acesso está concedido
Acesso é fechado Somente assinantes

Resumo

The seasonal dynamics of Cladophora, the influence of environmental factors, the formation and vertical structure of Cladophora mats, photosynthesis and production process, and the role of mats as ecosystem engineers in the formation of habitats for epibiont microalgae are analyzed. Wide prospects for using Cladophora biomass in medicine and agriculture, primarily as fertilizers and feed additives, are shown.

Sobre autores

A. Prazukin

A.O. Kovalevsky Institute of Biology of the Southern Seas of Russian Academy of Sciences

Sevastopol, Russia

N. Shadrin

A.O. Kovalevsky Institute of Biology of the Southern Seas of Russian Academy of Sciences

Sevastopol, Russia

Yu. Firsov

A.O. Kovalevsky Institute of Biology of the Southern Seas of Russian Academy of Sciences

Sevastopol, Russia

E. Anufriieva

A.O. Kovalevsky Institute of Biology of the Southern Seas of Russian Academy of Sciences

Email: lena_anufriieva@mail.ru
Sevastopol, Russia

Bibliografia

  1. Ануфриева Е.В., Шадрин Н.В. 2023. Жизнь в экстремальной среде. Животные в экосистемах гиперсоленых вод. М.: Тов-во науч. изданий КМК.
  2. Балушкина Е.В., Голубков С.М., Голубков М.С. и др. 2009. Влияние абиотических и биотических факторов на структурно-функциональную организацию экосистем соленых озер Крыма // Журн. общ. биол. Т. 70. № 6. С. 504.
  3. Голубков С.М., Шадрин Н.В., Голубков М.С. и др. 2018. Пищевые цепи и их динамика в экосистемах мелководных озер с различной соленостью воды // Экология. № 5. С. 391. https://doi.org/10.1134/S0367059718050050
  4. Губанов В.И., Бобко Н.И. 2012. Гидролого-гидрохимическая характеристика соляного озера на мысе Херсонес (Севастополь, Крым) // Мор. экол. журн. Т. 11. № 4. С. 18.
  5. Латышев С.Э. 2025. Фитомасса и продукция макрофитов в озерах Белорусского поозерья // Биология внутр. вод. Т. 18. № 2. С. 298.
  6. Неврова Е.Л., Шадрин Н.В. 2005. Донные диатомовые водоросли соленых озер Крыма // Мор. экол. журн. Т. 4. № 4. С. 61.
  7. Остапчук П.С., Шадрин Н.В., Празукин А.В. и др. 2025. Влияние добавок зеленой нитчатой водоросли Cladophora в рацион молодняка кроликов на их рост и развитие // Аграрный вестник Урала. Т. 25. № 1. С. 61. https://doi.org/10.32417/1997-4868-2025-25-01-61-73
  8. Павловская Т.М., Празукин А.В., Шадрин Н.В. 2009. Сезонные явления в сообществе инфузорий гиперсоленого озера Херсонесское (Крым) // Мор. экол. журн. Т. 8. № 2. С. 53.
  9. Празукин А.В., Бобкова А.Н., Евстигнеева И.К. и др. 2008. Структура и сезонная динамика фитокомпоненты биокосной системы морского гиперсоленого озера на мысе Херсонес (Крым) // Мор. экол. журн. Т. 7. № 1. С. 61.
  10. Празукин А.В. 2009. Фотосинтетическая активность растительного покрова Херсонесского озера (Крым) и его структурно- функциональная организация // Системы контроля окружающей среды: средства, информационные технологи и мониторинг. Сб. науч. тр. Севастополь: Мор. гидрофиз. ин-т. С. 370.
  11. Празукин А.В. 2015. Экологическая фитосистемология. М.: Перо.
  12. Празукин А.В., Ануфриева Е.В., Шадрин Н.В. 2019. Фотоситетическая активность матов нитчатых водорослей гиперсоленого озера Херсонесское (Крым) // Вестн. Твер. гос. ун-та. Серия: Биология и экология. № 2(54). С. 87. https://doi.org/10.26456/vtbio74
  13. Сеничева М.И., Губелит В., Празукин А.В., Шадрин Н.В. 2008. Фитопланктон гиперсоленых озер Крыма // Микроводоросли Черного моря: проблемы сохранения биоразнообразия и биотехнологического использования. Севастополь: ЭКОСИ-Гидрофизика. С. 93.
  14. Тооминг Х.Г. 1977. Солнечная радиация и формирование урожая. Л.: Гидрометеоиздат.
  15. Шадрин Н.В. 2024. Дополнительность общего и уникального, случайность и необходимость в экологии водоемов. М.: Тов-во науч. изданий КМК.
  16. Шадрин Н.В., Миходюк О.С., Найданова О.Г. и др. 2008. Донные цианобактерии гиперсоленых озер Крыма // Микроводоросли Черного моря: проблемы сохранения биоразнообразия и биотехнологического использования. Севастополь: ЭКОСИ-Гидрофизика. С. 100.
  17. Шадрин Н.В., Остапчук П.С., Куевда Т.А. и др. 2024. Влияние добавок нитчатой зеленой водоросли Cladophora в рацион кроликов на показатели крови // Аграрная наука Евро-Северо-Востока. Т. 25. № 6. С. 1137. https://doi.org/10.30766/2072-9081.2024.25.6.1137-1146
  18. Adla K., Dejan K., Neira D., Dragana Š. 2022. Degradation of ecosystems and loss of ecosystem services // One health. Cambridge: Acad. Press. P. 281. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-822794-7.00008-3
  19. Andersson B., Salter A.H., Virgin I. et al. 1992. Photodamage to photosystem II – primary and secondary events // J. Photochem. Photobiol. B. V. 15. Iss. 1–2. P. 15. https://doi.org/10.1016/1011-1344(92)87003-R
  20. Anufriieva E.V. 2018. How can saline and hypersaline lakes contribute to aquaculture development? A review // J. Oceanol. Limnol. V. 36. Iss. 6. P. 2002. https://doi.org/10.1007/s00343-018-7306-3
  21. Attia-Ismail S.A. 2022. Halophytic plants for animal feed: associated botanical and nutritional characteristics. Bentham Science Publishers. https://doi.org/10.2174/97898150503871220101
  22. Bader Q.A., Al-Sharify Z.T., Dhabab J.M. et al. 2024. Cellulose nanomaterials in oil and gas industry and bio-manufacture: Current situation and future outlook // Case Studies in Chemical and Environmental Engineering. V. 10. P. 100993. https://doi.org/10.1016/j.cscee.2024.100993
  23. Balycheva D., Anufriieva E., Lee R. et al. 2023. Salinitydependent species richness of Bacillariophyta in hypersaline environments // Water. V. 15. Iss. 12. Art. no. 2252 (11 p.). https://doi.org/10.3390/w15122252
  24. Berner T., Dubinsky Z., Wyman K., Falkowski P.G. 1989. Photoadaptation and the “package” effect in Dunaliella teriolecta (Chlorophyceae) // J. Phycol. V. 25. Iss. 1. P. 70. https://doi.org/10.1111/j.0022-3646.1989.00070.x
  25. Berry H.A., Lembi C.A. 2000. Effects of temperature and irradiance on the seasonal variation of a Spirogyra (Chlorophyta) population in a midwestern lake (USA) // J. Phycol. V. 36. Iss. 5. P. 841. https://doi.org/10.1046/j.1529-8817.2000.99138.x
  26. Binzer T., Sand-Jensen K., Middelboe A. 2006. Community photosynthesis of macrophytes // Limnol., Oceanogr. V. 51. Iss. 6. P. 2722. https://doi.org/10.4319/lo.2006.51.6.2722
  27. Bischof K., Rautenberger R., Brey L., Perez-Llorens J.L. 2006. Physiological acclimation to gradients of solar irradiance within mats of the filamentous green macroalga Chaetomorpha linum from southern Spain // Mar. Ecol. Prog. Ser. V. 306. P. 165. https://doi.org/10.3354/meps306165
  28. Bo Y., Zhou F., Zhao J. et al. 2021. Additional surface-water deficit to meet global universal water accessibility by 2030 // J. Clean. Prod. V. 320. P. 128829. https://doi.org/10.1016/j.jclepro.2021.128829
  29. Canale R.P., Auer M.T. 1982. Ecological studies and mathematical modeling of Cladophora in Lake Huron: 7. Model verification and system response // J. Great Lakes Res. V. 8. Iss. 1. P. 134. https://doi.org/10.1016/S0380-1330(82)71951-3
  30. Chudyba H. 1965. Cladophora glomerata and accompanying algae in the Skawa River // Acta Hydrobiologica. V. 7(1). P. 93.
  31. Davis J.A., McGuire M., Halse S.A. et al. 2003. What happens when you add salt: predicting impacts of secondary salinisation on shallow aquatic ecosystems by using an alternative-states model // Aust. J. Bot. V. 51. № 6. P. 715. https://doi.org/10.1071/BT02117
  32. Dodds W.K., Gudder D.A. 1992. The ecology of Cladophora // J. Phycol. V. 28. Iss. 4. P. 415. https://doi.org/10.1111/j.0022-3646.1992.00415.x
  33. Dodds W.K., Biggs B.J., Lowe R.L. 1999. Photosynthesis– irradiance patterns in benthic microalgae: variations as a function of assemblage thickness and community structure // J. Phycol. V. 35. Iss. 1. P. 42. https://doi.org/10.1046/j.1529-8817.1999.3510042.x
  34. Eiseltova M., Pokorny J. 1994. Filamentous algae in fish ponds of the Třeboň Biosphere Reserve-ecophysiological study // Vegetatio. V. 113. № 2. P. 155. https://doi.org/10.1007/BF00044232
  35. Ensminger I., Xylander M., Hagen C., Braune W. 2001. Strategies providing success in a variable habitat: III. Dynamic control of photosynthesis in Cladophora glomerata // Plant. Cell. Environ. V. 24. Iss. 8. P. 769. https://doi.org/10.1046/j.1365-3040.2001.00725.x
  36. Gladyshev M.I., Gubelit Y.I. 2019. Green tides: new consequences of the eutrophication of natural waters (invited review) // Contemp. Probl. Ecol. V. 12. P. 109. https://doi.org/10.1134/S1995425519020057
  37. Green L., Fong P. 2015. The good, the bad and the Ulva: the density dependent role of macroalgal subsidies in influencing diversity and trophic structure of an estuarine community // Oikos. V. 125. Iss. 7. P. 988. https://doi.org/10.1111/oik.02860
  38. Gubelit Y.I. 2022. Opportunistic macroalgae as a component in assessment of eutrophication // Diversity. V. 14. Iss. 12. P. 1112. https://doi.org/10.3390/d14121112
  39. Gordon D.M., McComb A.J. 1989. Growth and production of the green alga Cladophora montagneana in a eutrophic Australian estuary and its interpretation using a computer program // Water Res. V. 23. № 5. P. 633. https://doi.org/10.1016/0043-1354(89)90030-4
  40. Hansen A.T., Hondzo M., Sheng J., Sadowsky M.J. 2014. Microscale measurements reveal contrasting effects of photosynthesis and epiphytes on frictional drag on the surfaces of filamentous algae // Freshwater Biol. V. 59. Iss. 2. P. 312. https://doi.org/10.1111/fwb.12266
  41. Hardwick G.G., Blinn D.W., Usher H.D. 1992. Epiphytic diatoms on Cladophora glomerata in the Colorado River, Arizona: longitudinal and vertical distribution in a regulated river // The Southwestern Naturalist. V. 37. № 2. P. 148. https://doi.org/10.2307/3671663
  42. Haroon A.M., Hussian A.E., El-Sayed S.M. 2018. Deviations in the biochemical structure of some macroalgal species and their relation to the environmental conditions in Qarun Lake, Egypt // Egyptian J. Aquatic Res. V. 44. № 1. P. 15. https://doi.org/10.1016/j.ejar.2018.02.006
  43. Heinke J., Lannerstad M., Gerten D., et al. 2020. Water use in global livestock production—opportunities and constraints for increasing water productivity // Water Resources Res. V. 56. № 12. P. e2019WR026995.
  44. Herbst R.P. 1969. Ecological factors and the distribution of Cladophora glomerata in the Great Lakes // Am. Midl. Nat. V. 82. № 1. P. 90. https://doi.org/10.2307/2423819
  45. Higgins S.N., Howell E.T., Hecky R.E. et al. 2005. The wall of green: the status of Cladophora glomerata on the northern shores of Lake Erie's eastern basin, 1995–2002 // J. Great Lakes Res. V. 31. Iss. 4. P. 547. https://doi.org/10.1016/S0380-1330(05)70283-5
  46. Higgins S.N., Hecky R.E., Guildford S.J. 2006. Environmental controls on Cladophora growth dynamics in eastern Lake Erie: application of the Cladophora growth model (CGM) // J. Great Lakes Res. V. 32. Iss. 3. P. 629. https://doi.org/10.3394/0380-1330(2006)32[629:ECOCGD]2.0.CO;2
  47. Higgins S.N., Hecky R.E., Guildford S.J. 2008a. The collapse of benthic macroalgal blooms in response to self-shading // Freshwаter Biol. V. 53. Iss. 12. P. 2557. https://doi.org/10.1111/j.1365-2427.2008.02084.x
  48. Higgins S.N., Malkin S.Y., Howell E.T. et al. 2008b. An ecological review of Cladophora glomerata (Chlorophyta) in the Laurentian Great Lakes // J. Phycol. V. 44. Iss. 4. P. 839. https://doi.org/10.1111/j.1529-8817.2008.00538.x
  49. Hoffmann J.P., Graham L.E. 1984. Effects of selected physicochemical factors on growth and zoosporogenesis of Cladophora glomerata (Chlorophyta) // J. Phycol. V. 20. Iss. 1. P. 1. https://doi.org/10.1111/j.0022-3646.1984.00001.x
  50. Ibelings B.W., Mur L.R. 1992. Microprofiles of photosynthesis and oxygen concentration in Microcystis sp. scums // FEMS Microbiol. Lett. V. 86. Iss. 3. 195. https://doi.org/10.1111/j.1574-6968.1992.tb04810.x
  51. Ingrao C., Strippoli R., Lagioia G., Huisingh D. 2023. Water scarcity in agriculture: an overview of causes, impacts and approaches for reducing the risks // Heliyon. V. 9. Iss. 8. P. e18507. https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2023.e18507
  52. Irfanullah H.M., Moss B. 2005. A filamentous green algaedominated temperate shallow lake: variations on the theme of clear-water stable states? // Arch. Hydrobiol. V. 163. № 1. P. 25. https://doi.org/10.1127/0003-9136/2005/0163-0025
  53. Ivanova M., Balushkina E., Basova S. 1994. Structural functional reorganization of ecosystem of hyperhaline lake Saki (Crimea) at increased salinity // Rus. J. of Aquat. Ecol. V. 3. № 2. P. 111.
  54. Jessen G.L., Lichtschlag A., Ramette A. et al. 2017. Hypoxia causes preservation of labile organic matter and changes seafloor microbial community composition (Black Sea) // Sci. Adv. V. 3. Iss. 2. P. e1601897. https://doi.org/10.1126/sciadv.1601897
  55. Jia Q., Liu X., Wang H. et al. 2017. Bio-ecological resources of saline lakes in Tibet and their economic prospect // Sci. and Technol. Rev. V. 35. № 2. P. 19.
  56. Jiang H.B., Qiu B.S. 2005. Photosynthetic adaptation of a bloom-forming cyanobacterium Microcystis aeruginosa (Cyanophyceae) to prolonged UV-B exposure // J. Phycol. V. 41. Iss. 5. P. 983. https://doi.org/10.1111/j.1529-8817.2005.00126.x
  57. John D.M. 2002. Macroalgae associated with sabkha // Sabkha ecosytems – volume I, The Arabian Peninsula and Adjacent Countries. Dordrecht: Kluwer Acad. Publ. P. 239.
  58. Jones E. R., Bierkens M. F., van Vliet M. T. 2024. Current and future global water scarcity intensifies when accounting for surface water quality // Nature Climate Change. V. 14. № 6. P. 629.
  59. Kolesnikova E.A., Mazlumyan S.A., Shadrin N.V. 2008. Seasonal dynamics of meiobenthos fauna from a salt lake of the Crimea / The Firth International Conference of Environmental Micropaleontology, Microbiology and Meiobenthology (EMMM). Chennai, India. P. 155.
  60. Krause-Jensen D., McGlathery K., Rysgaard S., Christensen P.B. 1996. Production within dense mats of the filamentous macroalga Chaetomorpha linum in relation to light and nutrient availability // Mar. Ecol. Prog. Ser. V. 134. P. 207. https://doi.org/10.3354/meps134207
  61. Lassen C., Ploug H., Jorgensen B.B. 1992. Microalgal photosynthesis and spectral scalar irradiance in coastal marine sediments of Limfjorden, Denmark // Limnol., Oceanogr. V. 37. Iss. 4. P. 760. https://doi.org/10.4319/lo.1992.37.4.0760
  62. Lawson L., Degenstein L.M., Bates B. et al. 2022. Cellulose textiles from hemp biomass: Opportunities and challenges // Sustainability. V. 14. Iss. 22. P. 15337. https://doi.org/10.3390/su142215337
  63. Lenzi M., Renzi M., Nesti U. et al. 2011. Vegetation cyclic shift in eutrophic lagoon. Assessment of dystrophic risk indices based on standing crop evaluation // Estuar. Coast. Shelf. Sci. V. 132. P. 99. https://doi.org/10.1016/j.ecss.2011.10.006
  64. Lester W.W., Adams M.S., Farmer A.M. 1988. Effects of light and temperature on photosynthesis of the nuisance alga Cladophora glomerata (L.) Kutz from Green Bay, Lake Michigan // New Phytologist. V. 109. Iss. 1. P. 53. https://doi.org/10.1111/j.1469-8137.1988.tb00218.x
  65. Li T., Chen C., Brozena A.H. et al. 2021. Developing fibrillated cellulose as a sustainable technological material // Nature. V. 590. № 7844. P. 47. https://doi.org/10.1038/s41586-020-03167-7
  66. Liu X., Liu W., Tang Q. et al. 2022. Global agricultural water scarcity assessment incorporating blue and green water availability under future climate change // Earth’s Future. V. 10. Iss. 4. P. e2021EF002567. https://doi.org/10.1029/2021EF002567
  67. Malkin S.Y., Sorichetti R.J., Wiklund J.A., Hecky R.E. 2009. Seasonal abundance, community composition, and silica content of diatoms epiphytic on Cladophora glomerata // J. Great Lakes Res. V. 35. Iss. 2. P. 199. https://doi.org/10.1016/j.jglr.2008.12.008
  68. Mantai K.E. 1974. Some aspects of photosynthesis in Cladophora glomerata // J. Phycol. V. 10. Iss. 3. P. 288. https://doi.org/10.1111/j.1529-8817.1974.tb02716.x
  69. Marks J.C., Power M.E. 2001. Nutrient induced changes in the species composition of epiphytes on Cladophora glomerata Kutz. (Chlorophyta) // Hydrobiologia. V. 450. № 1. P. 187. https://doi.org/10.1023/A:1017596927664
  70. Messyasz B., Rybak A. 2011. Abiotic factors affecting the development of Ulva sp. (Ulvophyceae; Chlorophyta) in freshwater ecosystems // Aquat. Ecol. V. 45. № 1. P. 75. https://doi.org/10.1007/s10452-010-9333-9
  71. Messyasz B., Leska B., Fabrowska J. et al. 2015. Biomass of freshwater Cladophora as a raw material for agriculture and the cosmetic industry // Open Chem. V. 13. P. 1108. https://dx.doi.org/10.1515/chem-2015-0124
  72. Middelburg J.J., Levin L.A. 2009. Coastal hypoxia and sediment biogeochemistry // Biogeosciences. V. 6. P. 1273. https://doi.org/10.5194/bg-6-1273-2009
  73. Mihhels K., Yousefi N., Blomster J. et al. 2023. Assessment of the Alga Cladophora glomerata as a Source for Cellulose Nanocrystals // Biomacromolecules. V. 24. Iss. 11. P. 4672. https://doi.org/10.1021/acs.biomac.3c00380
  74. Mishra R.K. 2023. Fresh water availability and its global challenge // British Journal of Multidisciplinary and Advanced Studies. V. 4. №. 3. P. 1.
  75. Mpawenayo B., Mathooko J.M. 2005. The structure of diatom assemblages associated with Cladophora and sediments in a highland stream in Kenya // Hydrobiologia. V. 544. № 1. P. 55. https://doi.org/10.1007/s10750-004-8333-y
  76. Mukhanov V.S., Naidanova O.G., Shadrin N.V., Kemp R.B. 2004. The spring energy budget of the algal mat community in a Crimean hypersaline lake determined by microcalorimetry // Aquat. Ecol. V. 38. P. 375. https://doi.org/10.1023/B:AECO.0000035169.08581.10
  77. Muluneh M.G. 2021. Impact of climate change on biodiversity and food security: a global perspective a review article // Agriculture and Food Security. V. 10. № 1. P. 1.
  78. Munir M., Qureshi R., Bibi M., Khan A.M. 2019. Pharmaceutical aptitude of Cladophora: a comprehensive review // Algal Res. V. 39. P. 101476. https://doi.org/10.1016/j.algal.2019.101476
  79. Nutautaitė M., Vilienė V., Racevičiūtė–Stupelienė A. et al. 2021. Freshwater Cladophora glomerata biomass as promising protein and other essential nutrients source for high quality and more sustainable feed production // Agriculture. V. 11. Iss. 7. P. 582. https://doi.org/10.3390/agriculture11070582
  80. O'Neal S.W., Lembi C.A. 1983. Effect of simazine on photosynthesis and growth of filamentous algae // Weed Sci. V. 31. Iss. 6. P. 899. https://doi.org/10.1017/S0043174500070958
  81. Pan R., Cheung O., Wang Z. et al. 2016. Mesoporous Cladophora cellulose separators for lithium-ion batteries // J. Power Sources. V. 321. P. 185. https://doi.org/10.1016/j.jpowsour.2016.04.115
  82. Passarelli S., Free C.M., Shepon A. et al. 2024. Global estimation of dietary micronutrient inadequacies: a modelling analysis // The Lancet Global Health. V. 12. Iss. 10. P. e1590–e1599. https://doi.org/10.1016/S2214-109X(24)00276-6
  83. Peerapornpisal Y., Amornledpison D., Rujjanawate C. et al. 2006. Two endemic species of macroalgae in Nan River, northern Thailand, as therapeutic agents // Sci. Asia. V. 32. P. 71. https://doi.org/10.2306/scienceasia1513-1874.2006.32(s1).071
  84. Persincula M.R., Madrazo C.F. 2024. Cellulose extraction from Cladophora rupestris for extraction of nanomaterials // IOP Conference Series: Materials Science and Engineering. V. 1318. № 1. P. 012002. https://doi.org/10.1088/1757-899X/1318/1/012002
  85. Pikosz M., Messyasz B., Gąbka M. 2017. Functional structure of algal mat (Cladophora glomerata) in a freshwater in western Poland // Ecol. Indic. V. 74. P. 1. https://doi.org/10.1016/j.ecolind.2016.09.041
  86. Prazukin A.V., Anufriieva E.V., Shadrin N.V. 2018. Cladophora mats in a Crimean hypersaline lake: structure, dynamics, and inhabiting animals // J. Oceanol. Limnol. V. 36. Iss. 6. P. 1930. https://doi.org/10.1007/s00343-018-7313-4
  87. Prazukin A.V., Anufriieva E.V., Shadrin N.V. 2020. Is biomass of filamentous green algae Cladophora spp. (Chlorophyta, Ulvophyceae) an unlimited cheap and valuable resource for medicine and pharmacology? A review // Rev. Aquac. V. 12. Iss. 4. P. 2493. https://doi.org/10.1111/raq.12454
  88. Prazukin A.V., Firsov Yu.K., Gureeva E.V. et al. 2021a. Biomass of green filamentous alga Cladophora (Chlorophyta) from a hypersaline lake in Crimea as a prospective source of lutein and other pigments // Algal Res. V. 54. Article no. 102195 (9 p.). https://doi.org/10.1016/j.algal.2021.102195
  89. Prazukin A., Shadrin N., Balycheva D. et al. 2021b. Cladophora spp. (Chlorophyta) modulate environment and create a habitat for microalgae in hypersaline waters // Eur. J. Phycol. V. 56. № 3. P. 231. https://doi.org/10.1080/09670262.2020.1814423
  90. Prazukin A.V., Lee R.I., Balycheva D.S. et al. 2023. Cladophora (Chlorophyta) as an ecological engineer in hypersaline lake Chersonesskoye: Distribution of diatom algae in the structured space of plant mats // Mar. Biol. J. V. 8. № 3. P. 62. https://doi.org/10.21072/mbj.2023.08.3.05
  91. Prazukin A.V., Anufriieva E.V., Shadrin N.V. 2024. Biomass of Cladophora (Chlorophyta, Cladophorales) is a promising resource for agriculture with high benefits for economics and the environment // Aquac. Int. V. 23. Iss. 3. P. 3637. https://doi.org/10.1007/s10499-023-01342-x
  92. Prazukin A., Shadrin N., Latushkin A., Anufriieva E. 2025. Mats of green filamentous alga Cladophora in the hypersaline Bay Sivash: distribution, structure, environmentforming role and resource potential // Reg. Stud. Mar. Sci. V. 82. Art. no. 104031 (12 p.). https://doi.org/10.1016/j.rsma.2025.104031
  93. Rozema J., Flowers T. 2008. Crops for a salinized world // Science. V. 322. № 5907. P. 1478.
  94. Saunders L.L., Kilham S.S., Winfield Fairchild G., Verb R. 2012. Effects of small-scale environmental variation on metaphyton condition and community composition // Freshwater Biol. V. 57. Iss. 9. P. 1884. https://doi.org/10.1111/j.1365-2427.2012.02851.x
  95. Scheffer M. 2001. Alternative attractors of shallow lakes // The Sci. World J. V. 1. P. 254. https://doi.org/10.1100/tsw.2001.62
  96. Scheffer M., Szabo S., Gragnani A. et al. 2003. Floating plant dominance as a stable state // Proceedings of the National Academy of Sciences. V. 100. № 7. P. 4040. https://doi.org/10.1073/pnas.073791810
  97. Shaalan M., El-Mahdy M., Saleh M. et al. 2018. Aquaculture in Egypt: insights on the current trends and future perspectives for sustainable development // Reviews in Fisheries Science and Aquaculture. V. 26. №1. P. 99.
  98. Shadrin N.V., Anufriieva E.V. 2013. Climate change impact on the marine lakes and their Crustaceans: The case of marine hypersaline Lake Bakalskoye (Ukraine) // Turk. J. Fish. Aquat. Sci. V. 13. P. 603. https://doi.org/10.4194/1303-2712-v13_4_05
  99. Shadrin N., Zheng M., Oren A. 2015. Past, present and future of saline lakes: research for global sustainable development // Chin. J. Oceanol. Limnol. V. 33. P. 1349. https://doi.org/10.1007/s00343-015-5157-8
  100. Shadrin N.V., Anufriieva E.V., Belyakov V.P., Bazhora A.I. 2017. Chironomidae larvae in hypersaline waters of the Crimea: diversity, distribution, abundance and production // Eur. Zool. J. V. 84. № 1. P. 61. https://doi.org/10.1080/11250003.2016.1273974
  101. Shadrin N., Balycheva D., Anufriieva E. 2021a. Spatial and temporal variability of microphytobenthos in a marine hypersaline lake (Crimea): Are there some general patterns? // J. Sea Res. V. 177. Article no. 102121 (7 p.). https://doi.org/10.1016/j.seares.2021.102121
  102. Shadrin N., Balycheva D., Anufriieva E. 2021b. Microphytobenthos in the hypersaline water bodies, the case of Bay Sivash (Crimea): Is salinity the main determinant of species composition? // Water. V. 13. Iss. 11. Article no. 1542 (17 p.). https://doi.org/10.3390/w13111542
  103. Shadrin N., Latushkin A., Yakovenko V. et al. 2024. Daily and other short-term changes in the ecosystem components of the world's largest hypersaline lagoon Bay Sivash (Crimea) // Reg. Stud. Mar. Sci. 2024. V. 77. Art. no. 103643 (11 p.). https://doi.org/10.1016/j.rsma.2024.103643
  104. Shemer H., Wald S., Semiat R. 2023. Challenges and solutions for global water scarcity // Membranes. V. 13. № 6. P. 612.
  105. Skinner S., Entwisle T. J. 2004. Non-marine algae of Australia: 6. Cladophoraceae (Chlorophyta) // Telopea. V. 10. №3. P. 731.
  106. Song C., Cao X., Zhou Y., Shadrin N. 2017. Filamentous green algae, extracellular alkaline phosphatases and some features of the phosphorus cycle in ponds // Mar. Biol. J. V. 2. № 1. P. 66. https://doi.org/10.21072/mbj.2017.02.1.07
  107. Vass I. 1997. Adverse effects of UV-B light on the structure and function of the photosynthetic apparatus // Handbook of photosynthesis. N.Y.: Marcel Dekker. P. 931.
  108. Vergara J.J., Perez-Llorens J.L., Peralta G. et al. 1997. Seasonal variation of photosynthetic performance and light attenuation in Ulva canopies from Palmones river estuary // J. Phycol. V. 33. Iss. 5. P. 773. https://doi.org/10.1111/j.0022-3646.1997.00773.x
  109. Vergara J.J., Sebastian M., Perez-Llorens J.L., Hernandez I. 1998. Photoacclimation of Ulva rigida and U. rotundata (Chlorophyta) arranged in canopies // Mar. Ecol. Prog. Ser. V. 165. P. 283. https://doi.org/10.3354/meps165283
  110. Viana C., Freire D., Abrantes P. et al. 2022. Agricultural land systems importance for supporting food security and sustainable development goals: A systematic review // Sci. Tot. Environ. V. 806. № 3. P. 150718.
  111. Wang Y., Zhou P., Zhou W, Wang J., Huang S., Ao H., Wu C., Li G. 2025. Structural diversity and environmental impacts of Cladophora mats in a large plateau brackish lake // Environ. Res. V. 278. P. 121674.
  112. Whitton B.A. 1970. Biology of Cladophora in freshwaters // Water Res. V. 4. Iss. 7. P. 457. https://doi.org/10.1016/0043-1354(70)90061-8
  113. Wood K.G. 1968. Photosynthesis of Cladophora under unnatural conditions // Algae, Man and the Environment. N.Y.: Syracuse University Press. P. 121.
  114. Wu Z., Yuan X., Xiong X. et al. 2024. Cladophora as ecological engineer: a new test from the largest lake of Qinghai-Tibet plateau with filamentous algal blooms // Water Biol. and Sec. V. 3. Iss. 1. P. 100210. https://doi.org/10.1016/j.watbs.2023.100210
  115. Yan J., Zhu J., Zhao S., Su F. 2023. Coastal wetland degradation and ecosystem service value change in the Yellow River Delta, China // Glob. Ecol. Conserv. V. 44. P. e02501. https://doi.org/10.1016/j.gecco.2023.e02501
  116. Yao F., Livneh B., Rajagopalan B. et al. 2023. Satellites reveal widespread decline in global lake water storage // Science. V. 380. № 6646. P. 743. https://doi.org/10.1126/science.abo2812
  117. Zafar A., Ali I., Rahayu F. 2022. Marine seaweeds (biofertilizer) significance in sustainable agricultural activities: a review // IOP Conf. Ser.: Earth Environ. Sci. V. 974. P. 012080. https://doi.org/10.1088/1755-1315/974/1/012080
  118. Zhang X., Lu X., Li H. 2021. Isolation and identification of a novel allelochemical from Ruppia maritima extract against the cyanobacteria Microcystis aeruginosa // Environ. Technol. and Innovat. V. 21. P. 101301.
  119. Zhou S., Nyholm L., Stromme M., Wang Z. 2019. Cladophora cellulose: unique biopolymer nanofibrils for emerging energy, environmental, and life science applications // Acc. Chem. Res. V. 52. Iss. 8. P. 2232. https://doi.org/10.1021/acs.accounts.9b00215
  120. Zulkifly S.B., Graham J.M., Young E.B. et al. 2013. The genus Cladophora Kutzing (Ulvophyceae) as a globally distributed ecological engineer // J. Phycol. V. 49. Iss. 1. P. 1. https://doi.org/10.1111/jpy.12025

Arquivos suplementares

Arquivos suplementares
Ação
1. JATS XML
Baixar

Declaração de direitos autorais © Russian Academy of Sciences, 2025

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».