Секреция цитокинов семейства ИЛ-10 ассоциирована с активностью компонентов аутофагии в висцеральной жировой ткани у больных с ожирением с и без сахарного диабета 2 типа
- Авторы: Шунькина Д.А.1, Дахневич А.Я.1, Комар А.А.1, Вульф М.А.1, Шунькин Е.О.1, Газатова Н.Д.1, Кириенкова Е.В.1, Тодосенко Н.М.1, Малахова Ж.Л.1, Литвинова Л.С.1
-
Учреждения:
- Балтийский федеральный университет им. И. Канта
- Выпуск: Том 17, № 2 (2022)
- Страницы: 25-31
- Раздел: Оригинальные исследования
- URL: https://bakhtiniada.ru/2313-1829/article/view/143490
- DOI: https://doi.org/10.23868/202209004
- ID: 143490
Цитировать
Аннотация
Аутофагия необходима для поддержания клеточного гомеостаза и функционирования органов путем избирательного избавления клеток от потенциально токсичных белков, липидов и органелл. Нарушение гомеостаза аутофагических процессов связано с метаболическими нарушениями, такими как ожирение и сахарный диабет 2 типа. При ожирении нарушение аутофагии в жировой ткани и её воспаление способствует формированию сахарного диабета 2 типа.
Цель исследования: анализ экспрессии генов аутофагии в жировой ткани большого сальника и поиск их взаимосвязи с уровнями цитокинов семейства IL-10 в плазме крови у пациентов с ожирением в зависимости от наличия или отсутствия сахарного диабета 2 типа.
Исследованы образцы плазмы крови и висцеральной жировой ткани от 347 пациентов с ожирением с и без сахарным диабетом 2 типа: 33 условно здоровых донора (11 мужчин и 22 женщины, индекс массы тела 22,5 ± 2,5 кг/м2, средний возраст 39 ± 8 лет), 118 пациентов с ожирением без сахарного диабета 2 типа (30 мужчин и 88 женщин, индекс массы тела 41,8 ± 7,0 кг/м2, средний возраст 42 ± 10) и 196 пациентов с ожирением и сахарным диабетом 2 типа (41 мужчин и 155 женщин, индекс массы тела 45,1 ± 8,7 кг/м2, средний возраст 45 ± 9 лет). Проведен биохимический анализ крови пациентов. Уровень цитокинов детектировали методом проточной флуориметрии. Экспрессию генов определяли методом ПЦР в режиме реального времени, тканеспецифическую продукцию белков — методом иммуноблоттинга. Статистическая обработка результатов выполнена с использованием программы GraphPad Prism 9.0.0.
Уровни IL-10, IL-20 IL-22, IL-28А и IL-29 в плазме крови были повышены у больных с ожирением без сахарного диабета 2 типа по сравнению с больными с ожирением и сахарным диабетом 2 типа. У больных с ожирением и сахарным диабетом 2 типа уровень экспрессии генов SQSTM1_p62 и MAP1LC3B в жировой ткани большого сальника был повышен по сравнению с пациентами с ожирением, но без сахарного диабета 2 типа.
Высокие уровни IL-22 и IL-26 в плазме крови связаны с наличием сахарного диабета 2 типа. У больных без сахарного диабета 2 типа рост уровня IL-28А в плазме крови ассоциирован со снижением экспрессии генов аутофагии SQSTM1_p62 и MAP1LC3B в жировой ткани большого сальника.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Д. А. Шунькина
Балтийский федеральный университет им. И. Канта
Автор, ответственный за переписку.
Email: DariaSK@list.ru
Россия, Калининград
А. Я. Дахневич
Балтийский федеральный университет им. И. Канта
Email: DariaSK@list.ru
Россия, Калининград
А. А. Комар
Балтийский федеральный университет им. И. Канта
Email: DariaSK@list.ru
Россия, Калининград
М. А. Вульф
Балтийский федеральный университет им. И. Канта
Email: DariaSK@list.ru
Россия, Калининград
Е. О. Шунькин
Балтийский федеральный университет им. И. Канта
Email: DariaSK@list.ru
Россия, Калининград
Н. Д. Газатова
Балтийский федеральный университет им. И. Канта
Email: DariaSK@list.ru
Россия, Калининград
Е. В. Кириенкова
Балтийский федеральный университет им. И. Канта
Email: DariaSK@list.ru
Россия, Калининград
Н. М. Тодосенко
Балтийский федеральный университет им. И. Канта
Email: DariaSK@list.ru
Россия, Калининград
Ж. Л. Малахова
Балтийский федеральный университет им. И. Канта
Email: DariaSK@list.ru
Россия, Калининград
Л. С. Литвинова
Балтийский федеральный университет им. И. Канта
Email: DariaSK@list.ru
Россия, Калининград
Список литературы
- CDC. Causes and Consequences of Childhood Obesity [Internet]. Centers for Disease Control and Prevention. 2022 [cited 2022 Apr 17], https://www.cdc.gov/obesity/basics/causes.html.
- Zhang Y., Sowers J.R., Ren J. Targeting autophagy in obesity: from pathophysiology to management. Nat. Rev. Endocrinol. 2018; 14(6): 356–76.
- Tong L., Wang L., Yao S. et al. PPARδ attenuates hepatic steatosis through autophagy-mediated fatty acid oxidation. Cell Death Dis. 2019; 10(3): 1–14.
- Goldman S., Zhang Y., Jin S. Autophagy and adipogenesis Implications in obesity and type II diabetes. Autophagy 2010; 6(1): 179–81.
- Menikdiwela K.R., Ramalingam L., Rasha F. et al. Autophagy in metabolic syndrome: breaking the wheel by targeting the renin-angiotensin system. Cell Death Dis. 2020; 11(2): 1–17.
- Ferhat M., Funai K., Boudina S. Autophagy in Adipose Tissue Physiology and Pathophysiology. Antioxid. Redox Signal. 2019; 31(6): 487–501.
- Frisardi V., Matrone C., Street M.E. Metabolic Syndrome and Autophagy: Focus on HMGB1 Protein. Frontiers in Cell and Developmental Biology 2021 [cited 2022 May 19]; 9, https://www.frontiersin.org/article/10.3389/fcell.2021.654913.
- XuQ., Mariman E.C.M., Roumans N.J.T. et al. Adipose tissue autophagy related gene expression is associated with glucometabolic status in human obesity. Adipocyte 2018; 7(1): 12–9.
- Ndisang J.F., Vannacci A., Rastogi S. Insulin Resistance, Type 1 and Type 2 Diabetes, and Related Complications 2017. J. Diabetes Res. 2017; 2017: 1478294.
- Shunkina (Skuratovskaia) D., Komar A., Vulf M. et al. Tumor Necrosis Receptor Superfamily Interact with Fusion and Fission of Mitochondria of Adipose Tissue in Obese Patients without Type 2 Diabetes. Biomedicines 2021; 9(9): 1260.
- Donnelly R.P., Kotenko S.V. Interferon-lambda: a new addition to an old family. J. Interferon Cytokine Res. 2010; 30(8): 555–64.
- Commins S., Steinke J.W., Borish L. The extended IL-10 superfamily: IL-10, IL-19, IL-20, IL-22, IL-24, IL-26, IL-28, and IL-29. J. Allergy Clin. Immunol. 2008; 121(5): 1108–11.
- Maiorino M.I., Schisano B., Di Palo C. et al. Interleukin-20 circulating levels in obese women: effect of weight loss. Nutr. Metab. Cardiovasc. Dis. 2010; 20(3): 180–5.
- IL-20 is involved in obesity by modulation of adipogenesis and macrophage dysregulation: PubMed [cited 2022 Apr 9], https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34403503//.
- Hsu Y.H., Wu C.H., Chiu C.J. et al. IL-20 is involved in obesity by modulation of adipogenesis and macrophage dysregulation. Immunology 2021; 164(4): 817–33.
- Sabat R., Wolk K. Deciphering the role of interleukin-22 in metabolic alterations. Cell Biosci. 2015; 5: 68.
- Sivitz W.I., Yorek M.A. Mitochondrial dysfunction in diabetes: from molecular mechanisms to functional significance and therapeutic opportunities. Antioxid. Redox Signal. 2010; 12(4): 537–77.
- Frontiers | IL-26, a Cytokine With Roles in Extracellular DNA-Induced Inflammation and Microbial Defense | Immunology [cited 2022 Apr 17], https://www.frontiersin.org/articles/10.3389/fimmu.2019.00204/full.
- Savchenko L., Mykytiuk M., Cinato M. et al. IL-26 in the induced sputum is associated with the level of systemic inflammation, lung functions and body weight in COPD patients. Int. J. Chron. Obstruct. Pulmon. Dis. 2018; 13: 2569–75.
- Ma Y., Li J., Peng Z. et al. IL28A protein homotetramer structure is required for autolysosomal degradation of HCV-NS5A in vitro. Cell Death Dis. 2020; 11(3): 1–14.
- Lin T.Y., Chiu C.J., Kuan C.H. et al. IL-29 promoted obesity-induced inflammation and insulin resistance. Cell. Mol. Immunol. 2020; 17(4): 369–79.
- Phosphorylation of ULK1 (hATG1) by AMP-activated protein kinase connects energy sensing to mitophagy: PubMed [cited 2022 Apr 17], Available from: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21205641/.
- Dai W., Jiang L. Dysregulated Mitochondrial Dynamics and Metabolism in Obesity, Diabetes, and Cancer. Front. Endocrinol. (Lausanne) 2019; 10: 570.
- p62/SQSTM1 cooperates with Parkin for perinuclear clustering of depolarized mitochondria: PubMed [cited 2022 Apr 17], https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/20604804/.
- Pickles S., Vigié P., Youle R.J. Mitophagy and Quality Control Mechanisms in Mitochondrial Maintenance. Current Biology 2018; 28(4): R170–85.
- Lechado Terradas A., Zittlau K.I., Macek B. et al. Regulation of mitochondrial cargo-selective autophagy by posttranslational modifications. Journal of Biological Chemistry 2021; 297(5): 101339.
- Jheng H.F., Tsai P.J., Guo S.M. et al. Mitochondrial fission contributes to mitochondrial dysfunction and insulin resistance in skeletal muscle. Mol. Cell. Biol. 2012; 32(2): 309–19.
- Akazawa Y., Nakao K. To die or not to die: death signaling in nonalcoholic fatty liver disease. J. Gastroenterol. 2018; 53(8): 893–906.
- Jung J.Y., Suh C.H. Incomplete clearance of apoptotic cells in systemic lupus erythematosus: pathogenic role and potential biomarker. Int. J. Rheum. Dis. 2015; 18(3):294–303.
- Mellor K.M., Bell J.R., Young M.J. et al. Myocardial autophagy activation and suppressed survival signaling is associated with insulin resistance in fructose-fed mice. J. Mol. Cell. Cardiol. 2011; 50(6): 1035–43.
Дополнительные файлы
