Анатомо-физиологические и патофизиологические особенности нижних мочевых путей в гендерном и возрастном аспектах

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

В обзорной статье на основе результатов современных клинико-экспериментальных исследований рассматриваются гендерные и возрастные особенности анатомии, физиологии и патофизиологии нижних мочевых путей. Подробно описаны особенности строения и функционирования уротелия, миотелия, нейротелия и эндотелия нижних мочевых путей у мужчин и женщин. Отдельный раздел обзора посвящен особенностям гормональной регуляции нижних мочевых путей в зависимости от половой принадлежности и возраста.

Об авторах

Игорь Сергеевич Шорманов

Ярославский государственный медицинский университет

Автор, ответственный за переписку.
Email: i-s-shormanov@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-2062-0421
SPIN-код: 7772-8420
Scopus Author ID: 6507085029

д-р мед. наук, профессор, заведующий кафедрой урологии c нефрологией

Россия, 150000, Ярославская область, Ярославль, ул. Революционная, д. 5

Андрей Сергеевич Соловьев

Ярославский государственный медицинский университет

Email: a-s-soloviev89@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-5612-3227

канд. мед. наук

Россия, 150000, Ярославская область, Ярославль, ул. Революционная, д. 5

Игорь Адамович Тюзиков

Медицинский центр «Тандем-Плюс»

Email: phoenix-67@list.ru
ORCID iD: 0000-0001-6316-9020
SPIN-код: 3026-1218

канд. мед. наук, врач-уролог

Россия, Ярославль

Сергей Владимирович Куликов

Ярославский государственный медицинский университет

Email: kulikov268@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-3331-8555
SPIN-код: 8894-6060

д-р мед. наук, доцент

Россия, 150000, Ярославская область, Ярославль, ул. Революционная, д. 5

Список литературы

  1. Miller V.M. Why are sex and gender important to basic physiology and translational and individualized medicine? // Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2014. Vol. 306, No. 6. P. H781–H788. doi: 10.1152/ajpheart.00994.2013
  2. Institute of Medicine. Exploring the biological contributions to human health: does sex matter? Washington, DC: The National Academies Press; 2001. Режим доступа: https://www.nap.edu/read/10028/chapter/1. Дата обращения: 09.08.2021.
  3. Collins F.S., Tabak L.A. Policy: NIH plans to enhance reproducibility // Nature. 2014. Vol. 505, No. 7485. P. 612–613. doi: 10.1038/505612a
  4. Losada L., Amundsen C.L., Ashton-Miller J., et al. Expert panel recommendations on lower urinary tract health of women across their life span // J Women’s Health (Larchmt). 2016. Vol. 25, No. 11. P. 1086–1096; doi: 10.1089/jwh.2016.5895
  5. Clayton J.A., Collins F.S. Policy: NIH to balance sex in cell and animal studies // Nature. 2014. Vol. 509, No. 7500. P. 282–283. doi: 10.1038/509282a
  6. Abelson B., Sun D., Que L., et al. Sex differences in lower urinary tract biology and physiology // Biol Sex Differences. 2018. Vol. 9, No. 1. P. 45–58. doi: 10.1186/s13293-018-0204-8
  7. Parsons C.L. The role of the urinary epithelium in the pathogenesis of interstitial cystitis / prostatitis / urethritis // Urol. 2007. Vol. 69, Suppl. 4. P. 9–16. doi: 10.1016/j.urology.2006.03.084
  8. Russo G.I., Castelli T., Urzì D., et al. Emerging links between non-neurogenic lower urinary tract symptoms secondary to benign prostatic obstruction, metabolic syndrome and its components: A systematic review // Int J Urol. 2015. Vol. 22, No. 11. P. 982–990. doi: 10.1111/iju.12877
  9. Matthews C.A. Risk factors for urinary, fecal, or double incontinence in women // Curr Opin Obstet Gynecol. 2014. Vol. 26, No. 5. P. 393–397. doi: 10.1097/GCO.0000000000000094
  10. Birder L.A., de Groat W.C. Mechanisms of disease: involvement of the urothelium in bladder dysfunction // Nat Clin Pract Urol. 2007. Vol. 4, No. 1. P. 46–54. doi: 10.1038/ncpuro0672
  11. Тюзиков И.А. Эндокринологические аспекты хронического цистита у женщин. Часть 1. Общие эндокринологические аспекты // Экспериментальная и клиническая урология. 2016. № 3. С. 120–126.
  12. Fry C.H., Bayliss M., Young J.S., Hussain M. Influence of age and bladder dysfunction on the contractile properties of isolated human detrusor smooth muscle // BJU Int. 2011. Vol. 108, No. 2. P. E91–E96. doi: 10.1111/j.1464-410X.2010.09845.x
  13. Khandelwal P., Abraham S.N., Apodaca G. Cell biology and physiology of the uroepithelium // Am J Physiol Ren Physiol. 2009. Vol. 297, No. 6. P. F1477–1501. doi: 10.1152/ajprenal.00327.2009
  14. Walz T., Haner M., Wu X.R., et al. Towards the molecular architecture of the asymmetric unit membrane of the mammalian urinary bladder epithelium: a closed «twisted ribbon» structure // J Mol Biol. 1995. Vol. 248, No. 5. P. 887–900. doi: 10.1006/jmbi.1995.0269
  15. Lin J.H., Wu X.R., Kreibich G., Sun T.T. Precursor sequence, processing, and urothelium-specific expression of a major 15-kDa protein subunit of asymmetric unit membrane // J Biol Chem. 1994. Vol. 269, No. 3. P. 1775–1784.
  16. Wu X.R., Sun T.T. Molecular cloning of a 47 kDa tissue-specific and differentiation dependent urothelial cell surface glycoprotein // J Cell Sci. 1993. Vol. 106, No. 1. P. 31–43.
  17. Yu J., Lin J.H., Wu X.R., Sun T.T. Uroplakins Ia and Ib, two major differentiation products of bladder epithelium, belong to a family of four transmembrane domain (4TM) proteins // J Cell Biol. 1994. Vol. 125. P. 171–182. doi: 10.1083/jcb.125.1.171
  18. Hu P., Meyers S., Liang F.X., et al. Role of membrane proteins in permeability barrier function: uroplakin ablation elevates urothelial permeability // Am J Physiol Ren Physiol. 2002. Vol. 283, No. 6. P. F1200–1207. doi: 10.1152/ajprenal.00043.2002
  19. Aboushwareb T., Zhou G., Deng FM, et al. Alterations in bladder function associated with urothelial defects in uroplakin II and IIIa knockout mice // Neurourol Urodyn. 2009. Vol. 28, No. 8. P. 1028–1033. doi: 10.1002/nau.20688
  20. Apodaca G., Balestreire E., Birder L.A. The uroepithelial-associated sensory web // Kidney Int. 2007. Vol. 72, No. 9. P. 1057–1064. doi: 10.1038/sj.ki.5002439
  21. Birder L.A. Urothelial signaling // Handb Exp Pharmacol. 2011. No. 202. P. 207–231. doi: 10.1007/978-3-642-16499-6_10
  22. Kobayashi H., Yoshiyama M., Zakoji H., et al. Sex differences in the expression profile of acid-sensing ion channels in the mouse urinary bladder: a possible involvement in irritative bladder symptoms // BJU Int. 2009. Vol. 104, No. 11. P. 1746–1751. doi: 10.1111/j.1464-410X.2009.08658.x
  23. Page A.J., Brierley S.M., Martin C.M., et al. Different contributions of ASIC channels 1a, 2, and 3 in gastrointestinal mechanosensory function // Gut. 2005. Vol. 54, No. 10. P. 1408–1415. doi: 10.1136/gut.2005.071084
  24. Luthje P., Brauner H., Ramos N.L., et al. Estrogen supports urothelial defense mechanisms // Sci Transl Med. 2013. Vol. 5. No. 190. P. 190ra180. doi: 10.1126/scitranslmed.3005574
  25. Wang C., Symington J.W., Ma E., et al. Estrogenic modulation of uropathogenic Escherichia coli infection pathogenesis in a murine menopause model // Infect Immun. 2013. Vol. 81, No. 3. P. 733–739. doi: 10.1128/IAI.01234-12
  26. Tincello D.G., Taylor A.H., Spurling S.M., Bell S.C. Receptor isoforms that mediate estrogen and progestagen action in the female lower urinary tract // J Urol. 2009. Vol. 181, No. 3. P. 1474–1482. doi: 10.1016/j.juro.2008.10.104
  27. Lu M., Li J.R., Alvarez-Lugo L., et al. Lipopolysaccharide stimulates BK channel activity in bladder umbrella cells // Am J Phys Cell Physiol. 2018. Vol. 314, No. 6. P. 643–653. doi: 10.1152/ajpcell.00339.2017
  28. Papavlassopoulos M., Stamme C., Thon L., et al. MaxiK blockade selectively inhibits the lipopolysaccharide-induced I kappa B-alpha / NF-kappa B signaling pathway in macrophages // J Immunol. 2006. Vol. 177, No. 6. P. 4086–4093. doi: 10.4049/jimmunol.177.6.4086
  29. Acevedo-Alvarez M., Yeh J., Alvarez-Lugo L., et al. Mouse urothelial genes associated with voiding behavior changes after ovariectomy and bladder lipopolysaccharide exposure // Neurourol Urodyn. 2018. Vol. 37, No. 8. P. 2398–2405. doi: 10.1002/nau.23592
  30. Andersson K.E., Arner A. Urinary bladder contraction and relaxation: physiology and pathophysiology // Physiol Rev. 2004. Vol. 84, No. 3. P. 935–986. doi: 10.1152/physrev.00038.2003
  31. DeLancey J., Gosling J., Creed K., et al. Gross anatomy and cell biology of the lower urinary tract. In: Abrams P., Cardozo L., Khoury S., Wein A., editors. Second international consultation on incontinence. Plymouth: Health Publication; 2002. P. 17–82.
  32. Mangera A., Osman N.I., Chapple C.R. Anatomy of the lower urinary tract // Surgery (Oxford). 2013. Vol. 31, No. 7. P. 319–325. doi: 10.1016/j.mpsur.2010.03.002
  33. Lepor H., Machi G. Comparison of AUA symptom index in unselected males and females between fifty-five and seventy-nine years of age // Urology. 1993. Vol. 42. P. 36–40. doi: 10.1016/0090-4295(93)90332-5
  34. Tanaka S.T., Ishii K., Demarco R.T., et al. Endodermal origin of bladder trigone inferred from mesenchymal-epithelial interaction // J Urol. 2010. Vol. 183, No. 1. P. 386–391. doi: 10.1016/j.juro.2009.08.107
  35. Favorito L.A., Pazos H.M., Costa S.F., et al. Morphology of the fetal bladder during the second trimester: comparing genders // J Pediatr Urol. 2014. Vol. 10, No. 6. P. 1014–1019. doi: 10.1016/j.jpurol.2014.11.006
  36. Baggish M.S., Karram M.M. Atlas of Pelvic Anatomy and Gynecologic Surgery. Philadelphia: Elsevier/Saunders, 2011.
  37. Morita T., Latifpour J., O’Hollaren B., et al. Sex differences in function and distribution of alpha 1- and alpha 2-adrenoceptors in rabbit urethra // Am J Phys. 1987. Vol. 252, No. 6, pt 2. P. F1124–1128. doi: 10.1152/ajprenal.1987.252.6.F1124
  38. Alexandre E.C., de Oliveira M.G., Campos R., et al. How important is the alpha1-adrenoceptor in primate and rodent proximal urethra? Sex differences in the contribution of alpha1-adrenoceptor to urethral contractility // Am J Physiol Ren Physiol. 2017. Vol. 312, No. 6. P. F1026–1034. doi: 10.1152/ajprenal.00013.2017
  39. Oswald J., Heidegger I., Steiner E., et al. Gender-related fetal development of the internal urethral sphincter // Urology. 2013. Vol. 82. No. 6. P. 1410–1415. doi: 10.1016/j.urology.2013.03.096
  40. Jin Z.W., Abe H., Hinata N., et al. Descent of mesonephric duct to the final position of the vas deferens in human embryo and fetus // Anat Cell Biol. 2016. Vol. 49, No. 4. P. 231–240. doi: 10.5115/acb.2016.49.4.231
  41. Downing K. Chapter Eight; Biochemistry and ultrastructure of pelvic floor tissues and organs. In: Biomechanics of the female pelvic floor. 1st edition. Hoyte L., Damaster M., еds. Elsevier, 2016. P. 181–208. doi: 10.1016/B978-0-12-803228-2.00008-8
  42. Frontera W.R., Ochala J. Skeletal muscle: a brief review of structure and function // Calcif Tissue Int. 2015. Vol. 96. P. 183–195. doi: 10.1007/s00223-014-9915-y
  43. Dixon J., Gosling J. Structure and innervation in the human. In: The physiology of the lower urinary tract. London: Springer, 1987. P. 3–22.
  44. Gosling J.A., Dixon J.S., Critchley H.O., Thompson S.A. A comparative study of the human external sphincter and periurethral levator ani muscles // Br J Urol. 1981. Vol. 53, No. 1. P. 35–41. doi: 10.1111/j.1464-410x.1981.tb03125.x
  45. Praud C., Sebe P., Mondet F., Sebille A. The striated urethral sphincter in female rats // Anat Embryol (Berl). 2003. Vol. 207, No. 2. P. 169–175. doi: 10.1007/s00429-003-0340-7
  46. Lim S.H., Wang T.J., Tseng G.F., et al. The distribution of muscles fibers and their types in the female rat urethra: cytoarchitecture and three-dimensional reconstruction // Anat Rec (Hoboken). 2013. Vol. 296, No. 10. P. 1640–1649. doi: 10.1002/ar.22740
  47. Bierinx A.S., Sebille A. The urethral striated sphincter in adult male rat // Anat Embryol (Berl). 2006. Vol. 211, No. 5. P. 435–441. doi: 10.1007/s00429-006-0093-1
  48. Buffini M., O’Halloran K.D., O’Herlihy C., et al. Comparison of the contractile properties, oxidative capacities and fibre type profiles of the voluntary sphincters of continence in the rat // J Anat. 2010. Vol. 217, No. 3. P. 187–195. doi: 10.1111/j.1469-7580.2010.01263.x
  49. Chen S.L., Wu M., Henderson J.P., et al. Genomic diversity and fitness of E. coli strains recovered from the intestinal and urinary tracts of women with recurrent urinary tract infection // Sci Transl Med. 2013. Vol. 5. No. 184. P. 184ra160. doi: 10.1126/scitranslmed.3005497
  50. Benoit G., Quillard J., Jardin A. Anatomical study of the infra-montanal urethra in man // J Urol. 1988. Vol. 139, No. 4. P. 866–868. doi: 10.1016/s0022-5347(17)42664-4
  51. Brading AF. The physiology of the mammalian urinary outflow tract // Exp Physiol. 1999. Vol. 84. P. 215–221.
  52. Ho K.M., McMurray G., Brading A., Noble J. The human female striated urethral sphincter consists of a heterogeneous population of muscle fibres // Br J Urol. 1997. Vol. 79. P. 13.
  53. Ho K.M., McMurray G., Brading A.F., et al. Nitric oxide synthase in the heterogeneous population of intramural striated muscle fibres of the human membranous urethral sphincter // J Urol. 1998. Vol. 159. P. 1091–1096.
  54. Tokunaka S., Okamura K., Fujii H., Yachiku S. The proportions of fiber types in human external urethral sphincter: electrophoretic analysis of myosin // Urol Res. 1990. Vol. 18, No. 5. P. 341–344. doi: 10.1007/BF00300784
  55. Bridgewater M., MacNeil H.F., Brading A.F. Regulation of tone in pig urethral smooth muscle // J Urol. 1993. Vol. 150, No. 1. P. 223–228. doi: 10.1016/s0022-5347(17)35451-4
  56. Persson K., Andersson K.E. Non-adrenergic, non-cholinergic relaxation and levels of cyclic nucleotides in rabbit lower urinary tract // Eur J Pharmacol. 1994. Vol. 268, No. 2. P. 159–167. doi: 10.1016/0922-4106(94)90185-6
  57. Persson K., Igawa Y., Mattiasson A., Andersson K.E. Effects of inhibition of the L-arginine / nitric oxide pathway in the rat lower urinary tract in vivo and in vitro // Br J Pharmacol. 1992. Vol. 107, No. 1. P. 178–184. doi: 10.1111/j.1476-5381.1992.tb14483.x
  58. Livingston B.P. Anatomy and neural control of the lower urinary tract and pelvic floor // Top Geriatr Rehabil. 2016. Vol. 32, No. 4. P. 280–294. doi: 10.1097/TGR.0000000000000123
  59. Hull T., Zutshi M. Chapter 78. Pathophysiology, diagnosis, and treatment of defecatory dysfunction. In: Female urology. 3rd ed. Philadelphia: Elsevier, 2008. P. 761–72. doi: 10.1016/B978-1-4160-2339-5.50127-0
  60. Koelbl H., Strassegger H., Riss P.A., Gruber H. Morphologic and functional aspects of pelvic floor muscles in patients with pelvic relaxation and genuine stress incontinence // Obstet Gynecol. 1989. Vol. 74. P. 789–795.
  61. Jundt K., Kiening M., Fischer P., et al. Is the histomorphological concept of the female pelvic floor and its changes due to age and vaginal delivery correct? // Neurourol Urodyn. 2005. Vol. 24, No. 1. P. 44–50. doi: 10.1002/nau.20080
  62. Tobin C., Joubert Y. Testosterone-induced development of the rat levatorani muscle // DevBiol. 1991. Vol. 146, No. 1. P. 131–138. doi: 10.1016/0012-1606(91)90453-a
  63. Niel L., Willemsen K.R., Volante S.N., Monks D.A. Sexual dimorphism and androgen regulation of satellite cell population in differentiating rat levator ani muscle // Dev Neurobiol. 2008. Vol. 68, No. 1. P. 115–122. doi: 10.1002/dneu.20580
  64. Fritsch H., Frohlich B. Development of the levator ani muscle in human fetuses // Early Hum Dev. 1994. Vol. 37, No. 1. P. 15–25. doi: 10.1016/0378-3782(94)90143-0
  65. Anderson T.J., Charbonneau F., Title L.M., et al. Microvascular function predicts cardiovascular events in primary prevention: long-term results from the Firefighters and Their Endothelium (FATE) study // Circulation. 2011. Vol. 123, No. 2. P. 163–169. doi: 10.1161/CIRCULATIONAHA.110.953653
  66. Taddei S., Virdis A., Ghiadoni L., et al. Menopause is associated with endothelial dysfunction in women // Hypertension. 1996. Vol. 28, No. 4. P. 576–582. doi: 10.1161/01.hyp.28.4.576
  67. Robinson D., Toozs-Hobson P., Cardozo L. The effect of hormones on the lower urinary tract // Menopause Int. 2013. Vol. 19, No. 4. P. 155–162. doi: 10.1177/1754045313511398
  68. Somani Y.B., Pawelczyk J.A., De Souza M.J., et al. Aging women and their endothelium: Probing the relative role of estrogen on vasodilator function // Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2019. Vol. 317, No. 2. P. H395–H404. doi: 10.1152/ajpheart.00430.2018
  69. Van Geelen J.M., Doesburg W.H., Thomas C.M., Martin C.B. Urodynamic studies in the normal menstrual cycle: the relationship between hormonal changes during the menstrual cycle and the urethral pressure profile // Am J Obstet Gynecol. 1981. Vol. 141, No. 4. P. 384–392. doi: 10.1016/0002-9378(81)90599-8
  70. Ansari M.A., Begum D., Islam F. Serum sex steroids, gonadotrophins and sex hormonebinding globulin in prostatic hyperplasia // Ann Saudi Med. 2008. Vol. 28, No. 3. P. 174–178. doi: 10.5144/0256-4947.2008.174
  71. Ito S., Juncos L.A., Nushiro N., et al. Endothelium-derived relaxing factor modulates endothelin action in aggerent arterioles // Hypertension. 1991. Vol. 17, 6 Pt. 2. P. 1052–1056. doi: 10.1161/01.hyp.17.6.1052
  72. Тюзиков И.А. Патогенетические механизмы влияния дефицита тестостерона на симптомы нижних мочевых путей у мужчин // Эффективная фармакотерапия. 2020. Т. 16, № 20. С. 32–42. doi: 10.33978/2307-3586-2020-16-20-32-42
  73. Riding D.M., Hansrani V., McCollum C. Pelvic vein incompetence: clinical perspectives. // Vasc Health Risk Manag. 2017. Vol. 13. P. 439–447. doi: 10.2147/VHRM.S132827
  74. Shigehara K., Namiki M. Late-onset hypogonadism syndrome and lower urinary tract symptoms // Korean J Urol. 2011. Vol. 52, No. 10. P. 657–663. doi: 10.4111/kju.2011.52.10.657
  75. Gacci M., Corona G., Sebastianelli A., et al. Male Lower Urinary Tract Symptoms and Cardiovascular Events: A Systematic Review and Meta-analysis // Eur Urol. 2016. Vol. 70, No. 5. P. 788–796. doi: 10.1016/j.eururo.2016.07.007
  76. Semczuk-Kaczmarek K., Płatek A.E., Filip M. Szymański FM. Co-treatment of lower urinary tract symptoms and cardiovascular disease — where do we stand? // Cent European J Urol. 2020. Vol. 73, No. 1. P. 42–45. doi: 10.5173/ceju.2020.0029
  77. Sorge R.E., Totsch S.K. Sex Differences in Pain // J Neurosci Res. 2017. Vol. 95, No. 6. P. 1271–1281. doi: 10.1002/jnr.23841
  78. Li J., Baccei M.L. Functional Organization of Cutaneous and Muscle Afferent Synapses onto Immature Spinal Lamina i Projection Neurons // J Neurosci. 2017. Vol. 37, No. 6. P. 1505–1517. doi: 10.1523/JNEUROSCI.3164-16.2016
  79. Bueno C.H., Pereira D.D., Pattussi M.P., et al. Gender differences in temporomandibular disorders in adult populational studies: A systematic review and meta-analysis // J Oral Rehabil. 2018. Vol. 45, No. 9. P. 720–729. doi: 10.1111/joor.12661
  80. Mogil J.S. Sex differences in pain and pain inhibition: multiple explanations of a controversial phenomenon // Nat Rev Neurosci. 2012. Vol. 13, No. 12. P. 859–866. doi: 10.1038/nrn3360
  81. Rovner G.S., Sunnerhagen K.S., Bjorkdahl A., et al. Chronic pain and sex-differences; women accept and move, while men feel blue // PLoS One. 2017. Vol. 12, No. (4). P. e0175737. doi: 10.1371/journal.pone.0175737
  82. Martin LJ, Acland EL, Cho C, et al. Male-Specific Conditioned Pain Hypersensitivity in Mice and Humans // Current Biol. 2019. Vol. 29, No. 2. P. 192–201. doi: 10.1016/j.cub.2018.11.030
  83. Dannecker E.A., Liu Y., Rector R.S., et al. Sex differences in exercise-induced muscle pain and muscle damage // J Pain. 2012. Vol. 13, No. 12. P. 1242–1249. doi: 10.1016/j.jpain.2012.09.014
  84. Arendt-Nielsen L., Sluka K.A., Nie H.L. Experimental muscle pain impairs descending inhibition // Pain. 2008. Vol. 140, No. 3. P. 465–471. doi: 10.1016/j.pain.2008.09.027
  85. Wegner A., Elsenbruch S., Rebernik L., et al. Inflammation-induced pain sensitization in men and women: does sex matter in experimental endotoxemia? // Pain. 2015. Vol. 156, No. 10. P. 1954–1964. doi: 10.1097/j.pain.0000000000000256
  86. Monroe T.B., Fillingim R.B., Bruehl S.P., et al. Sex Differences in Brain Regions Modulating Pain Among Older Adults: A Cross-Sectional Resting State Functional Connectivity Study // Pain Medicine. 2018. Vol. 19, No. 9. P. 1737–1747. doi: 10.1093/pm/pnx084
  87. Gupta A., Mayer E.A., Fling C., et al. Sex-based differences in brain alterations across chronic pain conditions // Journal of Neuroscience Research. 2017. Vol. 95, No. 1–2. P. 604–616. doi: 10.1002/jnr.23856
  88. Henderson L.A., Gandevia S.C., Macefield V.G. Gender differences in brain activity evoked by muscle and cutaneous pain: a retrospective study of single-trial fMRI data // Neuroimage. 2008. Vol. 39, No. 4. P. 1867–1876. doi: 10.1016/j.neuroimage.2007.10.045
  89. Queme L.F., Jankowski M.P. // Curr Opin Physiol. 2019. Vol. 11. P. 1–6. doi: 10.1016/j.cophys.2019.03.006
  90. Blakeman P.J., Hilton P., Bulmer J.N. Oestrogen and progesterone receptor expression in the female lower urinary tract, with reference to oestrogen status // BJU Int. 2000. Vol. 86, No. 1. P. 32–38. doi: 10.1046/j.1464-410x.2000.00724.x
  91. Celayir S. Is there a “bladder sex”? The relation of different sex hormones and sex hormone receptors in bladder in childhood // Med Hypotheses. 2002. Vol. 59, No. 2. P. 186–190. doi: 10.1016/s0306-9877(02)00245-1
  92. Keast J.R., Saunders R.J. Testosterone has potent, selective effects on the morphology of pelvic autonomic neurons which control the bladder, lower bowel and internal reproductive organs of the male rat // Neuroscience. 1998. Vol. 85, No. 2. P. 543–556. doi: 10.1016/s0306-4522(97)00631-3
  93. Makela S., Strauss L., Kuiper G., et al. Differential expression of estrogen receptors alpha and beta in adult rat accessory sex glands and lower urinary tract // Mol Cell Endocrinol. 2000. Vol. 170, No. 1–2. P. 219–229. doi: 10.1016/s0303-7207(00)00441-x
  94. McKenna K.E., Nadelhaft I. The organization of the pudendal nerve in the male and female rat // J Comp Neurol. 1986. Vol. 248, No. 4. P. 532–549. doi: 10.1002/cne.902480406
  95. Savolainen S., Santti R., Streng T., et al. Sex specific expression of progesterone receptor in mouse lower urinary tract // Mol Cell Endocrinol. 2005. Vol. 230, No. 1–2. P. 17–21. doi: 10.1016/j.mce.2004.11.008
  96. Tincello D.G., Taylor A.H., Spurling S.M., Bell S.C. Receptor isoforms that mediate estrogen and progestagen action in the female lower urinary tract // J Urol. 2009. Vol. 181, No. 3. P. 1474–1482. doi: 10.1016/j.juro.2008.10.104
  97. Bødker A., Balslev E., Juul B.R., et al. Estrogen receptors in the human male bladder, prostatic urethra, and prostate: an immunohistochemical and biochemical study // Scand J Urol Nephrol. 1995. Vol. 29, No. 2. P. 161–165. doi: 10.3109/00365599509180557
  98. Celayir S. Effects of different sex hormones on male rabbit urodynamics: an experimental study // Horm Res. 2003. Vol. 60, No. 5. P. 215–220. doi: 10.1159/000074034
  99. Rohrmann S., Nelson W.G., Rifai N. Serum sex steroid hormones and lower urinary tract symptoms in Third National Health and Nutrition Examination Survey (NHANES III) // Urol. 2007. Vol. 69, No. 4. P. 708–713. doi: 10.1016/j.urology.2007.01.011
  100. Navarro-Dorado J., Orensanz L.M., Recio P. Mechanisms involved in testosterone-induced vasodilatation in pig prostatic small arteries // Life Sci. 2008. Vol. 83, No. 15–16. P. 569–573. doi: 10.1016/j.lfs.2008.08.009
  101. Mitterberger M., Pallwein L., Gradl J., et al. Persistent detrusor overactivity after transurethral resection of the prostate is associated with reduced perfusion of the urinary bladder // BJU Int. 2007. Vol. 99, No. 4. P. 831–835. doi: 10.1111/j.1464-410X.2006.06735.x
  102. McVary K.T. Erectile dysfunction and lower urinary tract symptoms secondary to BPH // Eur Urol. 2005. Vol. 47, No. 6. P. 838–845. doi: 10.1016/j.eururo.2005.02.001
  103. Azadzoi K.M., Tarcan T., Kozlowski R., et al. Overactivity and structural changes in the chronically ischemic bladder // J Urol. 1999. Vol. 162, No. 5. P. 1768–1778.
  104. Zhang Y., Chen J., Hu L., Chen Z. Androgen deprivation induces bladder histological abnormalities and dysfunction via TGF-β in orchiectomized mature rats // Tohoku J Exp. Med. 2012. Vol. 226, No. 2. P. 121–128. doi: 10.1620/tjem.226.121

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Гипотетическая модель взаимодействий между уротелиальными клетками (уротелием), афферентными и эфферентными нервными окончаниями (нейротелием), сосудами (эндотелием), гладкомышечными клетками и миофибробластами нижних мочевых путей [10, 11]. NO — оксид азота; АдР — адренергический рецептор; АТФ — аденозинтрифосфат; АЦХ — ацетилхолин; БР — брадикининовый рецептор; ГКД — гладкомышечная клетка детрузора; МР — мускариновый рецептор; НикР — никотиновый рецептор; НР — нейрокининовый рецептор; НЭ — норэпинефрин; П2Р — пуринергический рецептор подтипа 2; П2Х и П2Y — пуринергические рецепторы подтипов X и Y; ПГ — простагландины; СП — субстанция Р; ТирКР — тирозинкиназный рецептор с высокой аффинностью к фактору роста нервов; ТРПК — транзитный рецептор потенциальных каналов; ФРН — фактор роста нервов

Скачать (361KB)
Метаданные
3. Рис. 2. Схема связи между эндотелиальной дисфункцией и дисфункцией нижних мочевых путей у мужчин [76]

Скачать (131KB)
Метаданные
4. Рис. 3. Гендерные особенности патогенеза мышечной боли [89]. TRPV1 — транзиторный рецепторный потенциал ваниллоидного типа 1; Р2Х3 — аденозиновый рецептор типа 3; Р2Х5 — аденозиновый рецептор типа 5; ASIC3 — кислотно-чувствительный ионный канал типа 3

Скачать (222KB)
Метаданные

© ООО «Эко-Вектор», 2021


 


Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».