Иммунные структуры большого сальника и их роль в метастазировании злокачественных опухолей
- Авторы: Златник Е.Ю.1, Непомнящая Е.М.1, Женило О.Е.1, Никитина В.П.1, Вереникина Е.В.1, Никитин И.С.1
-
Учреждения:
- Ростовский научно-исследовательский онкологический институт
- Выпуск: Том 100, № 6 (2019)
- Страницы: 935-943
- Тип: Обзоры
- URL: https://bakhtiniada.ru/kazanmedj/article/view/18515
- DOI: https://doi.org/10.17816/KMJ2019-935
- ID: 18515
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Метастазирование злокачественных опухолей в большой сальник представляет собой одну из актуальных проблем онкологии. В работе приведён обзор литературы последних лет по строению и функциям иммунных структур большого сальника и характеристике их особенностей, способствующих или препятствующих опухолевой диссеминации. Описан клеточный состав лимфоидных узелков и млечных пятен, показаны функциональные и фенотипические свойства макрофагов и лимфоцитов. Охарактеризованы уникальные субпопуляции иммунокомпетентных клеток, свойственных именно этому органу, и синтезируемые ими цитокины. Особое внимание уделено окружающей иммунокомпетентные клетки висцеральной жировой ткани и её влиянию на их функции. Анализ данных литературы позволил выявить двойственную роль, то есть как защитную, так и иммуносупрессивную, лимфоидных структур большого сальника. Первая, по-видимому, связана преимущественно с ответом на бактериальные патогены, а вторая реализуется при метастазировании злокачественных опухолей. Сделан акцент на иммунологические механизмы, создающие локальные условия для роста и развития метастазов, в частности на провоспалительные цитокины, хемокины, ростовые факторы, секретируемые иммунными, опухолевыми, мезотелиальными клетками, а также значение в этом процессе окружающей висцеральной жировой ткани. Показана разнонаправленная прогностическая значимость ряда локальных клеточных и цитокиновых факторов при опухолях, метастазирующих в сальник и брюшину. Возможные подходы к лечению, включающему иммунотерапию, должны быть направлены не только на элиминацию опухолевых клеток, но и на преодоление иммуносупрессивной среды. В этом плане представляются перспективными перепрограммирование макрофагов, коррекция гипоксического микроокружения, поиск новых контрольных точек.
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Елена Юрьевна Златник
Ростовский научно-исследовательский онкологический институт
Email: iftrnioi@yandex.ru
SPIN-код: 4137-7410
Россия, г. Ростов-на-Дону, Россия
Евгения Марковна Непомнящая
Ростовский научно-исследовательский онкологический институт
Автор, ответственный за переписку.
Email: iftrnioi@yandex.ru
SPIN-код: 8930-9580
Россия, г. Ростов-на-Дону, Россия
Оксана Евгеньевна Женило
Ростовский научно-исследовательский онкологический институт
Email: iftrnioi@yandex.ru
SPIN-код: 4078-7080
Россия, г. Ростов-на-Дону, Россия
Вера Петровна Никитина
Ростовский научно-исследовательский онкологический институт
Email: iftrnioi@yandex.ru
SPIN-код: 4716-7390
Россия, г. Ростов-на-Дону, Россия
Екатерина Владимировна Вереникина
Ростовский научно-исследовательский онкологический институт
Email: iftrnioi@yandex.ru
SPIN-код: 6610-7824
Россия, г. Ростов-на-Дону, Россия
Иван Сергеевич Никитин
Ростовский научно-исследовательский онкологический институт
Email: iftrnioi@yandex.ru
SPIN-код: 2005-5880
Россия, г. Ростов-на-Дону, Россия
Список литературы
- Кит О.И., Шапошников А.В., Златник Е.Ю. и др. Местный клеточный иммунитет при аденокарциноме и полипах. Сибирское мед. обозрение. 2012; (4): 11–16.
- Clark R., Krishnan V., Schoof M. et al. Milky spots promote ovarian cancer metastatic colonization of peritoneal adipose in experimental models. Am. J. Pathol. 2013; 183: 576–591. doi: 10.1016/j.ajpath.2013.04.023.
- Gerber S.A., Rybalko V.Y., Bigelow C.E. et al. Preferential attachment of peritoneal tumor metastases to omental immune aggregates and possible role of a unique vascular microenvironment in metastatic survival and growth. Am. J. Pathol. 2006; 169: 1739–1752. doi: 10.2353/ajpath.2006.051222.
- Карасёва О.В., Рошаль Л.М., Некрутов А.В. Большой сальник: морфофункциональные особенности и клиническое значение в педиатрии. Вопр. соврем. педиатрии. 2007; 6 (6): 58–63.
- Liu J., Geng X., Li Y. Milky spots: omental functional units and hotbeds for peritoneal cancer metastasis. Tumor Boil. 2016; 37: 5715–5726. doi: 10.1007/s13277-016-4887-3.
- Murray P.J., Wynn T.A. Protective and pathogenic functions of macrophage subsets. Nat. Rev. Immunol. 2011; 11 (11): 723–737. doi: 10.1038/nri3073.
- Okabe Y., Medzhitov R. Tissue-specific signals control reversible program of localization and functional polarization of macrophages. Cell. 2014; 157 (4): 832–844. doi: 10.1016/j.cell.2014.04.016.
- Чердынцева Н.В., Митрофанова И.В., Булдаков М.А. и др. Макрофаги и опухолевая прогрессия: на пути к макрофаг-специфичной терапии. Бюлл. сибирской мед. 2017; 16 (4): 61–74. doi: 10.20538/1682-0363-2017-4-61–74.
- Sainz J.B., Martin B., Tatari M. et al. ISG15 is a critical microenvironmental factor for pancreatic cancer stem cells. Cancer Res. 2014; 74 (24): 7309–7320. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-14-1354.
- Cohen C.A., Shea A.A., Heffron C.L. et al. Intra-abdominal fat depots represent distinct immunomodulatory microenvironments: a murine model. PLoS One. 2013; 8 (6): e66477. doi: 10.1371/journal.pone.0066477.
- Rangel-Moreno J., Moyron-Quiroz J.E., Carragher D.M. et al. Omental milky spots develop in the absence of lymphoid tissue-inducer cells and support B and T cell responses to peritoneal antigens. Immunity. 2009; 30 (5): 731–743. doi: 10.1016/j.immuni.2009.03.014.
- Ярилин А.А. Иммунология. Учебник. М.: ГЭОТАР-Медиа. 2010; 752 с.
- Zhang Ch., Xin H., Zhang W. et al. CD5 binds to interleukin-6 and induces a feed-forward loop with the transcription factor STAT3 in B cells to promote cancer. Immunity. 2016; 44: 913–923. doi: 10.1016/j.immuni.2016.04.003.
- Чулкова С.В., Шолохова Е.Н., Грищенко Н.В. и др. Ключевая роль популяций В1-лимфоцитов в иммунном ответе у больных раком желудка. Рос. биотерап. ж. 2018; 17 (4): 64–70. doi: 10.17650/1726-9784-2018-17-4-64-70.
- McMurchy A.N., Bushell A., Levings M.K. et al. Moving to tolerance: clinical application of T regulatory cells. Semin. Immunol. 2011; 23 (4): 304–313. doi: 10.1016/j.smim.2011.04.001.
- Златник Е.Ю., Новикова И.А., Непомнящая Е.М. и др. Возможности прогнозирования эффективности лечения сарком мягких тканей на основе особенностей их иммунологического микроокружения. Казанский мед. ж. 2018; 99 (1): 167–173. doi: 10.17816/KMJ2018-167.
- Spits H., Artis D., Colonna M. et al. Innate lymphoid cells — a proposal for uniform nomenclature. Nat. Rev. Immunol. 2013; 13: 145–149. doi: 10.1038/nri3365.
- Jackson-Jones L.H., Duncan S.M., Magalhaes M.S. et al. Fat-associated lymphoid clusters control local IgM secretion during pleural infection and lung inflamemation. Nat. Commun. 2016; 7: 12 651. doi: 10.1038/ncomms12651.
- Jones D.D., Racine R., Wittmer S.T. et al. The omentum is a site of protective IgM production during intracellular bacterial infection. Infect. Immun. 2015; 83 (5): 2139–2147. doi: 10.1128/IAI.00295-15.
- Lu B., Yang M., Wang Q. Interleukin-33 in tumorigenesis, tumor immune evasion, and cancer immunotherapy. J. Mol. Med. 2016; 94: 535–543. doi: 10.1007/s00109-016-1397-0.
- Fessler J., Matson V., Gajewski T.F. Exploring the emerging role of themicrobiome in cancer immunotherapy. J. Immun. Ther. Cancer. 2019; 7: 108–123. doi: 10.1186/s40425-019-0574-4.
- Cipolletta D., Cohen P., Spiegelman B.M. et al. Appearance and disappearance of the mRNA signature characteristic of Treg cells in visceral adipose tissue: age, diet, and PPARɣ effects. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2015; 112 (2): 482–487. doi: 10.1073/pnas.1423486112.
- Vasanthakumar A., Moro K., Xin A. et al. The transcriptional regulators IRF4, BATF and IL-33 orchestrate development and maintenance of adipose tissue-resident regulatory T cells. Nat. Immunol. 2015; 16 (3): 276–285. doi: 10.1038/ni.3085.
- Bapat S.P., Myoung S.J., Fang S. et al. Depletion of fat-resident Treg cells prevents age-associated insulin resistance. Nature. 2015; 528 (7580): 137–141. doi: 10.1038/nature16151.
- Horikawa N., Abiko K., Matsumura N. et al. Expression of vascular endothelial growth factor in ovarian cancer inhibits tumor immunity through the accumulation of myeloid-derived suppressor cells. Clin. Cancer Res. 2017; 23 (2): 587–599. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-16-0387.
- Obermajer N., Wong J.L., Edwards R.P. et al. Induction and stability of human Th17 cells require endogenous NOS2 and cGMP-dependent NO signaling. J. Exp. Med. 2013; 210 (7): 1433–1445. doi: 10.1084/jem.20121277.
- Meza-Perez S., Randall T.D. Immunological functions of the omentum. Trends Immunol. 2017; 38 (7): 526–536. doi: 10.1016/j.it.2017.03.002.
- Stadlmann S., Raffeiner R., Amberger A. et al. Disruption of the integrity of human peritoneal mesothelium by interleukin-1beta and tumor necrosis factor- alpha. Virchows Arch. 2003; 443: 678–685. doi: 10.1007/s00428-003-0867-2.
- Lewis J.S., Landers R.J., Underwood J.C. et al. Expression of vascular endothelial growth factor by macrophages is up-regulated in poorly vascularized areas of breast carcinomas. J. Pathol. 2000; 192: 150–158. doi: 10.1002/1096-9896(2000)9999:9999<::AID-PATH687>3.0.CO;2-G.
- Burke B., Giannoudis A., Corke K.P. et al. Hypoxia-induced gene expression in human macrophages: implications for ischemic tis- sues and hypoxia-regulated gene therapy. Am. J. Pathol. 2003; 163: 1233–1243. doi: 10.1016/S0002-9440(10)63483-9.
- Miao Z.F., Wang Z.N., Zhao T.T. et al. Peritoneal milky spots serve as a hypoxic niche and favor gastric cancer stem/progenitor cell peritoneal dissemination through hypoxia-inducible factor 1α. Stem. Cells. 2014; 32: 3062–3074. doi: 10.1002/stem.1816.
- Cao L., Hu X., Zhang Y. et al. Omental milky spots in screening gastric cancer stem cells. Neoplasma. 2011; 58: 20–26. doi: 10.4149/neo_2011_01_20.
- Cao L., Hu X., Zhang J. et al. The role of the CCL22-CCR4 axis in the metastasis of gastric cancer cells into omental milky spots. J. Transl. Med. 2014; 12: 267. doi: 10.1186/s12967-014-0267-1.
- Мнихович М.В., Вернигородский С.В., Буньков К.В. и др. Эпителиально-мезенхимальный переход, трансдифференциация, репрограммирование и метаплазия: современный взгляд на проблему. Вестн. Нац. мед.-хир. центра им. Н.И. Пирогова. 2018; 13 (2): 145–152.
- Sorensen E.W., Gerber S.A., Sedlacek A.L. et al. Omental immune aggregates and tumor metastasis within the peritoneal cavity. Immunol. Res. 2009; 45 (2–3): 185–194. doi: 10.1007/s12026-009-8100-2.
- Sato E., Olson S.H., Ahn J. Intraepithelial CD8+ tumor-infiltrating lymphocytes and a high CD8+/regulatory T cells ratio are associated with favorable prognosis in ovarian cancer. PNAS. 2005; 102 (51): 18 538–18 543. doi: 10.1073/pnas.0509182102.
- Зуева Е.В., Никогосян С.О., Кузнецов В.В. и др. Иммуногистохимическая и проточно-цитометрическая характеристика интратуморальных лимфоцитов при серозной аденокарциноме яичников. Опухоли жен. репрод. сист. 2009; (3–4): 117–121.
- Nishimura S., Manabe I., Nagasaki M. et al. CD8+ effector T cells contribute to macrophage recruitment and adipose tissue inflammation in obesity. Nat. Med. 2009; 15; 914–920. doi: 10.1038/nm.1964.
- Бережная Н.М., Чехун В.Ф. Иммунология злокачественного роста. К.: Наукова думка. 2005; 792 с.
- Nieman K.M., Kenny H.A., Penicka C.V. et al. Adipocytes promote ovarian cancer metastasis and provide energy for rapid tumor growth. Nat. Med. 2011; 17: 1498–1503. doi: 10.1038/nm.2492.
- Schaible U.E., Kaufmann H.E. CD1 molecules and CD1-dependent T cells in bacterial infections: a link from innate to acquired immunity. Semin. Immunol. 2000; 12-6: 527–535. doi: 10.1006/smim.2000.0272.
- Sag D., Krause P., Hedrick C.C. et al. IL-10-producing NKT10 cells are a distinct regulatory invariant NKT cell subset. J. Clin. Invest. 2014; 124 (9): 3725–3740. doi: 10.1172/JCI72308.
- Shah S., Lowery E., Braun R.K. et al. Cellular basis of tissue regeneration by omentum. PLoS ONE. 2012; 7 (6): e38368. doi: 10.1371/journal.pone.0038368.
- Han S.J., Glatman Z.A., Andrade-Oliveira V. et al. White adipose tissue is a reservoir for memory T cells and promotes protective memory responses to infection. Immunity. 2017; 47: 1154–1168.e6. doi: 10.1016/j.immuni.2017.11.009.
- Conroy M.J., Maher S.G., Melo A.M. et al. Identifying a novel role for Fractalkine (CX3CL1) in memory CD8+ T cell accumulation in the omentum of obesity-associated cancer patients. Front. Immunol. 2018; 9: 1867. doi: 10.3389/fimmu.2018.01867.
- Shah R., Hinkle C.C., Ferguson J.F. et al. Fractalkine is a novel human adipochemokine associated with type 2 diabetes. Diabetes. 2011; 60: 1512–1518. doi: 10.2337/db10-0956.
- Conroy M.J., Fitzgerald V., Doyle S.L. et al. The microenvironment of visceral adipose tissue and liver alter natural killer cell viability and function. J. Leukoc. Biol. 2016; 100 (6): 1435–1442. doi: 10.1189/jlb.5AB1115-493RR.
- Zhang X.L., Yang Y.S., Xu D.P. et al. Comparative study on overexpression of HER2/neu and HER3 in gastric cancer. World J. Surg. 2009; 33 (10): 2112–2118. doi: 10.1007/s00268-009-0142-z.
- Shan T., Liu W., Kuang S. Fatty acid binding protein 4 expression marks a population of adipocyte progenitors in white and brown adipose tissues. FASEB J. 2013; 27 (1): 277–287. doi: 10.1096/fj.12-211516.
- Wouters M.C., Komdeur F.L., Workel H.H. et al. Treatment regimen, surgical outcome, and T-cell differentiation influence prognostic benefit of tumor-infiltrating lymphocytes in high-grade serous ovarian cancer. Clin. Cancer Res. 2016; 22 (3): 714–724. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-15-1617.
- Curiel T.J., Coukos G., Zou L. et al. Specific recruitment of regulatory T cells in ovarian carcinoma fosters immune privilege and predicts reduced survival. Nat. Med. 2004; 10 (9): 942–949. doi: 10.1038/nm1093.
- Златник Е.Ю., Горошинская И.А., Ушакова Н.Д. и др. Иммунологические и биохимические гуморальные факторы асцитической жидкости больных раком яичников и её компонентов, полученных методом фильтрационной детоксикации. Ж. РУДН, серия «Медицина». 2008; (8): 614–618.
- Ikehara Y., Shiuchi N., Kabata-Ikeharaet S. al. Effective induction of anti-tumor immune responses with oligomannose-coated liposome targeting to intraperitoneal phagocytic cells. Cancer Lett. 2008; 260 (1–2): 137–145. doi: 10.1016/j.canlet.2007.10.038.
- Casazza A., Laoui D., Wenes M. et al. Impeding macrophage entry into hypoxic tumor areas by Sema3A/Nrp1 signaling blockade inhibits angiogenesis and restores antitumor immunity. Cancer Cell. 2013; 24: 695–709. doi: 10.1016/j.ccr.2013.11.007.
- Brown D., Trowsdale J., Allen R. The LILR family: modulators of innate and adaptive immune pathways in health and disease. Tissue antigens. 2004; 64: 215–225. doi: 10.1111/j.0001-2815.2004.00290.x.
- Sedlacek A.L., Gerber S.A., Randall T.D. et al. Generation of a dual-functioning antitumor immune response in the peritoneal cavity. Am. J. Pathol. 2013; 183 (4): 1318–1328. doi: 10.1016/j.ajpath.2013.06.030.
- Yokota S.J., Facciponte J.G., Kelleher R.J.Jr. et al. Changes in ovarian tumor cell number, tumor vasculature, and T cell function monitored in vivo using a novel xenograft model. Cancer Immun. 2013; 13: 11. PMID: 23885217.
- Титов К.С., Демидов Л.В., Шубина И.Ж. и др. Клиническая эффективность внутриполостной биотерапии у больных с опухолевыми серозитами. Рос. онкол. ж. 2015; (2): 8–12.
- Неродо Г.А., Новикова И.А., Златник Е.Ю. и др. Применение ингарона в комплексе с химиотерапией у больных раком яичников III–IV стадий. Фундаментал. исслед. 2015; (1–8): 1649–1654.
- Kulbe H., Chakravarty P., Leinster D.A. et al. A dynamic inflammatory cytokine network in the human ovarian cancer microenvironment. Cancer Res. 2012; 72: 66–75. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-11-2178.
Дополнительные файлы
