Особенности вагинальной микробиоты в I триместре беременности и процессы плацентогенеза
- Авторы: Баринова В.В.1, Буштырева И.О.1, Иванов Д.О.2, Барыкина М.А.3
-
Учреждения:
- Клиника профессора Буштыревой
- Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет
- Ростовский государственный медицинский университет
- Выпуск: Том 74, № 3 (2025)
- Страницы: 5-16
- Раздел: Оригинальные исследования
- URL: https://bakhtiniada.ru/jowd/article/view/310775
- DOI: https://doi.org/10.17816/JOWD643298
- EDN: https://elibrary.ru/SYRKZR
- ID: 310775
Цитировать
Аннотация
Обоснование. Одними из основных причин перинатальных и материнских заболеваемости и смертности в мире являются задержка роста плода и преэклампсия. В основе патогенеза этих состояний лежит плацентарная недостаточность.
Цель — изучить влияние микробиоты влагалища в I триместре беременности на формирование хориона и на риски развития плацентарной недостаточности.
Материалы и методы. У пациенток без отягощенного акушерско-гинекологического и соматического анамнеза оценены уровни плацентарных белков [хорионического гонадотропина человека и связанного с беременностью плазменного белка А (pregnancy-associated plasma protein A, РАРР-А)], значения multiple of the median (MoM) для этих уровней и характер вагинальной микробиоты в I триместре беременности с помощью метода полимеразной цепной реакции.
Результаты. 396 пациенток разделены на две группы: в 1a группу вошли беременные с МоМ РАРР-А <0,5 (n=82), в 1b группу — пациентки с МоМ РАРР-А ≥0,5 (n=314). Эти же пациентки разделены на две другие группы в зависимости от МоМ хорионического гонадотропина человека: в 2a группу вошли пациентки с уровнем <0,5 (n=33), в 2b — с уровнем ≥0,5 (n=363). В 1b группе абсолютный и условный нормоценоз встречались статистически значимо чаще, а умеренный смешанный, выраженный анаэробный и выраженный смешанный дисбиоз — статистически значимо реже, чем в 1a группе. В зависимости от уровня МоМ хорионического гонадотропина человека в 2b группе выраженный аэробный и выраженный анаэробный дисбиоз встречались статистически значимо реже, чем в 2a группе. В 1a группе количество Staphylococcus spp., Gardnerella vaginalis / Prevotella bivia / Porphyromonas spp., Eubacterium spp., Megasphaera spp. / Veillonella spp. / Dialister spp. было статистически значимо выше, чем у пациенток в 1b группе. В зависимости от уровня МоМ хорионического гонадотропина человека различий по количеству микроорганизмов в составе влагалищной микробиоты не было. Методом «деревья решений» выявлено, что прогнозировать МоМ РАРР-А <0,5 следует, если концентрации условно-патогенных микроорганизмов при полимеразной цепной реакции в вагинальном микробиоме составляют: Sneathia spp. / Leptotrichia spp. / Fusobacterium spp. >103,85, Staphylococcus spp. >103,45, Peptostreptococcus spp. ≤104,85, Candida spp. ≤103,9 и Staphylococcus spp. ≤103,95, Sneathia spp. / Leptotrichia spp. / Fusobacterium spp. >103,85, Staphylococcus spp. >103,45 и Peptostreptococcus spp. >104,85. В представленных неравенствах отражены абсолютные значения копий ДНК микроорганизмов в форме десятичных логарифмов (геном-эквивалентов на миллилитр).
Заключение. У пациенток с пониженным уровнем плацентарных белков, по данным первого пренатального скрининга, вагинальная микробиота отличается более высоким количеством условно-патогенных микроорганизмов, чем у женщин с нормальными значениями плацентарных белков. Своевременная коррекция микробиоты влагалища на прегравидарном этапе и на ранних сроках беременности может стать важным источником профилактики плацентарной недостаточности.
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Виктория Владиславовна Баринова
Клиника профессора Буштыревой
Автор, ответственный за переписку.
Email: victoria-barinova@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-8584-7096
SPIN-код: 5068-0680
канд. мед. наук
Россия, 344011, Ростов-на-Дону, пер. Соборный, 58/7Ирина Олеговна Буштырева
Клиника профессора Буштыревой
Email: kio4@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-9296-2271
SPIN-код: 5009-1565
д-р мед. наук, профессор
Россия, Ростов-на-ДонуДмитрий Олегович Иванов
Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет
Email: doivanov@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-0060-4168
SPIN-код: 4437-9626
д-р мед. наук, профессор
Россия, Санкт-ПетербургМария Александровна Барыкина
Ростовский государственный медицинский университет
Email: mariabarykina480@gmail.com
ORCID iD: 0009-0005-3485-8763
SPIN-код: 2541-5967
Россия, Ростов-на-Дону
Список литературы
- Su W, Gong C, Zhong H, et al. Vaginal and endometrial microbiome dysbiosis associated with adverse embryo transfer outcomes. Reprod Biol Endocrinol. 2024;22(1):111. EDN: UROVDX doi: 10.1186/s12958-024-01274-y
- Wei Q, Chen H, Zou H, et al. Impact of vaginal microecological differences on pregnancy outcomes and endometrial microbiota in frozen embryo transfer cycles. J Assist Reprod Genet. 2024;41(4):929–938. EDN: GGCSZG doi: 10.1007/s10815-024-03066-0
- Zhu J, Zhang J, Syaza Razali N, et al. Mean arterial pressure for predicting preeclampsia in Asian women: a longitudinal cohort study. BMJ Open. 2021;11(8):e046161. EDN: WENHZG doi: 10.1136/bmjopen-2020-046161
- Hardee I, Wright L, McCracken C, et al. Maternal and neonatal outcomes of pregnancies in women with congenital heart disease: a meta-analysis. J Am Heart Assoc. 2021;10(8):e017834. EDN: NDIFRB doi: 10.1161/JAHA.120.017834
- Grylls A, Seidler K, Neil J. Link between microbiota and hypertension: Focus on LPS/TLR4 pathway in endothelial dysfunction and vascular inflammation, and therapeutic implication of probiotics. Biomed Pharmacother. 2021;137:111334. EDN: FYEEDP doi: 10.1016/j.biopha.2021.111334
- Liu Y, Li N, An H, et al. Impact of gestational hypertension and preeclampsia on low birthweight and small-for-gestational-age infants in China: a large prospective cohort study. J Clin Hypertens (Greenwich). 2021;23(4):835–842. EDN: UECGBD doi: 10.1111/jch.14176
- Quitterer U, AbdAlla S. Pathological AT1R-B2R protein aggregation and preeclampsia. Cells. 2021;10(10):2609. EDN: JSNDSP doi: 10.3390/cells10102609
- Kornacki J, Gutaj P, Kalantarova A, et al. Endothelial dysfunction in pregnancy complications. Biomedicines. 2021;9(12):1756. EDN: LTHVTE doi: 10.3390/biomedicines9121756
- Turkgeldi, L. S., Turkgeldi, E., Kiyak, H., et al. Abnormal first and second trimester matenal seum marker levels for aneuploidy screening and adverse pregnancy outcomes. East J Med. 2021;26(3):418–425. EDN: HSTQKN doi: 10.5505/ejm.2021.77775
- Chaveeva P, Papastefanou I, Dagklis T, et al. External validation and comparison of Fetal Medicine Foundation competing-risks model for small-for-gestational-age neonate in the first trimester: multicenter cohort study. Ultrasound Obstet Gynecol. 2025. doi: 10.1002/uog.29219
- Côté ML, Giguère Y, Forest JC, et al. First-trimester PlGF and PAPP-A and the risk of placenta-mediated complications: PREDICTION prospective study. J Obstet Gynaecol Can. 2025:47(2):102732. EDN: LOVHVQ doi: 10.1016/j.jogc.2024.102732
- Gladstone RA, Snelgrove JW, McLaughlin K, et al. Placental growth factor (PlGF) and soluble fms-like tyrosine kinase-1 (sFlt1): powerful new tools to guide obstetric and medical care in pregnancy. Obstet Med. 2025. doi: 10.1177/1753495X251327462
- Allen R, Aquilina J. Prospective observat-ional study to determine the accuracy of first-trimester serum biomarkers and uterine artery Dopplers in combination with maternal characteristics and arteriography for the prediction of women at risk of preeclampsia and other adverse pregnancy outcomes. J Matern Fetal Neonatal Med. 2018;31(21):2789–2806. doi: 10.1080/14767058.2017.1355903
- Genc S, Ozer H, Emeklioglu CN, et al. Relationship between extreme values of first trimester maternal pregnancy associated plasma protein-A, free-β-human chorionic gonadotropin, nuchal translucency and adverse pregnancy outcomes. Taiwan J Obstet Gynecol. 2022;61(3):433–440. EDN: GVCQHM doi: 10.1016/j.tjog.2022.02.043
- Yockey LJ, Varela L, Rakib T, et al. Vaginal exposure to zika virus during pregnancy leads to fetal brain infection. Cell. 2016;166(5):1247–1256.e4. doi: 10.1016/j.cell.2016.08.004
- Dong Z, Fan C, Hou W, et al. Vaginal exposure to candida albicans during early gestation results in adverse pregnancy outcomes via inhibiting placental development. Front Microbiol. 2022;12:816161. EDN: ZAIJDI doi: 10.3389/fmicb.2021.816161
- Wong YP, Cheah FC, Wong KK, et al. Gardnerella vaginalis infection in pregnancy: Effects on placental development and neonatal outcomes. Placenta. 2022;120:79–87. EDN: QVZIRD doi: 10.1016/j.placenta.2022.02.018
- Riganelli L, Iebba V, Piccioni M, et al. Structural variations of vaginal and endometrial microbiota: hints on female infertility. Front Cell Infect Microbiol. 2020;10:350. EDN: YPGTTA doi: 10.3389/fcimb.2020.00350
- Zervomanolakis I, Ott HW, Hadziomerovic D, et al. Physiology of upward transport in the human female genital tract. Ann NY Acad Sci. 2007;1101:1–20. doi: 10.1196/annals.1389.032
- Punzón-Jiménez P, Labarta E. The impact of the female genital tract microbiome in women health and reproduction: a review. J Assist Reprod Genet. 2021;38(10):2519–2541 EDN: TLJZCV doi: 10.1007/s10815-021-02247-5
- Odendaal J, Black N, Bennett PR, et al. The endometrial microbiota and early pregnancy loss. Hum Reprod. 2024;39(4):638–646. EDN: NSAXDP doi: 10.1093/humrep/dead274
- Qing X, Xie M, Liu P, et al. Correlation between dysbiosis of vaginal microecology and endometriosis: A systematic review and meta-analysis. PLoS One. 2024;19(7):e0306780. EDN: IGHDIW doi: 10.1371/journal.pone.030678000000000000
- Reschini M, Benaglia L, Ceriotti F, et al. Endometrial microbiome: sampling, assessment, and possible impact on embryo implantation. Sci Rep. 2022;19(2):8467. EDN: AKJLIY doi: 10.1038/s41598-022-12095-7
- Feng T, Liu Y. Microorganisms in the reproductive system and probiotic’s regulatory effects on reproductive health. Comput Struct Biotechnol J. 2022;20:1541–1553. doi: 10.1016/j.csbj.2022.03.017 EDN: FQBENO
- Di Simone N, Santamaria Ortiz A, Specchia M, et al. Recent insights on the maternal microbiota: impact on pregnancy outcomes. Front Immunol. 2020;11:528202. EDN: OKUFWA doi: 10.3389/fimmu.2020.528202
- Fu M, Zhang X, Liang Y, et al. Alterations in vaginal microbiota and associated metabolome in women with recurrent implantation failure. mBio. 2020;11:3. EDN: JTDUMI doi: 10.1128/mBio.03242-19
- Vasundhara D, Raju VN, Hemalatha R, et al. Vaginal & gut microbiota diversity in pregnant women with bacterial vaginosis & effect of oral probiotics: an exploratory study. Indian J Med Res. 2021;153(4):492–502. EDN: BKYBGI doi: 10.4103/ijmr.IJMR_350_19
- Gao X, Louwers YV, Laven JSE, et al. Clinical relevance of vaginal and endometrial microbiome investigation in women with repeated implantation failure and recurrent pregnancy loss. Int J Mol Sci. 2024;25(1):622. EDN: EIWRUL doi: 10.3390/ijms25010622
- Keburia LK, Smolnikova VU, Priputnevich TV, et al. Uterine microbiota and its effect on reproductive outcomes. Obstetrics and Gynecology. 2019;(2):22–27. EDN: YYXPNB doi: 10.18565/aig.2019.2.22-27
- Sukhanov AA, Dikke GB, Kukarskaya II, et al. Morphological characteristics of the endometrium in the preconception period, chorion and placenta during pregnancy resulting from in vitro fertilization in patients with chronic endometritis (secondary analysis of the results of the TULIP 2 randomized controlled trial). Obstetrics and Gynegology. 2024;(5):118–132. EDN: JMQJXS doi: 10.18565/aig.2024.122
Дополнительные файлы
