Анатомо-физиологические аспекты взаимного влияния циркуляторной гипоксии миометрия и слабости родовой деятельности
- Авторы: Судаков Д.С.1,2, Николаенков И.П.3, Дымарская Ю.Р.1, Кузнецова А.А.1
-
Учреждения:
- Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова
- Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта
- Ленинградский областной перинатальный центр
- Выпуск: Том 73, № 4 (2024)
- Страницы: 119-134
- Раздел: Научные обзоры
- URL: https://bakhtiniada.ru/jowd/article/view/268546
- DOI: https://doi.org/10.17816/JOWD623763
- ID: 268546
Цитировать
Аннотация
Слабость родовой деятельности, встречающаяся практически в 10 % родов, является одной из основных причин незапланированных операций кесарева сечения и оперативных влагалищных родов с применением акушерских щипцов или вакуум-экстракции плода. В статье описаны изменения морфологии миометрия и сосудистого русла матки, происходящие по мере прогрессирования беременности. Показано, что в архитектуре миометрия заложена неизбежность развития его гипоксии в родах. Проанализированы современные данные об анатомо-физиологических аспектах взаимного влияния циркуляторной гипоксии миометрия и слабости родовой деятельности. Приведены результаты экспериментальных и клинических исследований, объясняющих механизмы влияния уровней pH и лактата, определяемых в миометрии, на его сократительную способность. Обоснована необходимость дальнейших исследований, в том числе изучения значений pH и лактата околоплодных вод у пациенток со слабостью родовой деятельности. В практическом аспекте это позволит уточнить условия и сроки родостимулирующей терапии окситоцином, а также выделить группу пациенток с противопоказаниями к ней из-за заведомой бесперспективности.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Дмитрий Сергеевич Судаков
Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова; Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта
Автор, ответственный за переписку.
Email: suddakovv@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-5270-0397
SPIN-код: 6189-8705
канд. мед. наук
Россия, Санкт-Петербург; Санкт-ПетербургИгорь Павлович Николаенков
Ленинградский областной перинатальный центр
Email: nikolaenkov_igor@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-2780-0887
SPIN-код: 5571-4620
канд. мед. наук
Россия, ГатчинаЮлия Романовна Дымарская
Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова
Email: julia_dym@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-6027-6875
SPIN-код: 4195-3410
канд. мед. наук
Россия, Санкт-ПетербургАнна Александровна Кузнецова
Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова
Email: anika8820@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-6901-9004
SPIN-код: 9077-0209
Россия, Санкт-Петербург
Список литературы
- Béranger R., Chantry A.A. Oxytocin administration during spontaneous labor: Guidelines for clinical practice. Chapter 1: Definition and characteristics of normal and abnormal labor // J Gynecol Obstet Hum Reprod. 2017. Vol. 46, N 6. P. 469–478. doi: 10.1016/j.jogoh.2017.04.011
- Selin L., Wennerholm U.B., Jonsson M., et al. High-dose versus low-dose of oxytocin for labour augmentation: a randomised controlled trial // Women Birth. 2019. Vol. 32, N 4. P. 356–363. doi: 10.1016/j.wombi.2018.09.002
- Operative Vaginal Birth: ACOG Practice Bulletin, Number 219 // Obstet Gynecol. 2020. Vol. 135, N 4. P. e149–e159. doi: 10.1097/AOG.0000000000003764
- Hofmeyr G.J., Singata-Madliki M. The second stage of labor // Best Pract Res Clin Obstet Gynaecol. 2020. Vol. 67. P. 53–64. doi: 10.1016/j.bpobgyn.2020.03.012
- Spong C.Y., Berghella V., Wenstrom K.D., et al. Preventing the first cesarean delivery: summary of a joint Eunice Kennedy Shriver National Institute of Child Health and Human Development, Society for Maternal-Fetal Medicine, and American College of Obstetricians and Gynecologists Workshop // Obstet Gynecol. 2012. Vol. 120, N 5. P. 1181–1193. doi: 10.1097/aog.0b013e3182704880
- Савицкий А.Г., Савицкий Г.А. Биомеханика физиологической родовой схватки (миометрально-гемодинамическая концепция) // Научное обозрение. Медицинские науки. 2021. № 6. С. 41–53. EDN: DESNAO doi: 10.17513/srms.1216
- Romero R. A profile of Emanuel A. Friedman, MD, DMedSci // Am J Obstet Gynecol. 2016. Vol. 215, N 4. P. 413–414. doi: 10.1016/j.ajog.2016.07.034
- Friedman E. The graphic analysis of labor // Am J Obstet Gynecol. 1954. Vol. 68, N 6. P. 1568–1575. doi: 10.1016/0002-9378(54)90311-7
- Friedman EA. Primigravid labor: a graphicostatistical analysis // Obstet Gynecol. 1955. Vol. 6, N 6. P. 567–589. doi: 10.1097/00006250-195512000-00001
- Беженарь В.Ф., Новиков Б.Н., Турлак А.С. Профессор Илья Ильич Яковлев (к 120-летию со дня рождения) // Ученые записки СПбГМУ им. акад. И.П. Павлова. 2017;24(1):9–14. EDN: YRMTJN doi: 10.24884/1607-4181-2017-24-1-9-14
- Яковлев И.И. О структуре и физиологии гладкой мускулатуры беременной матки // Акушерство и гинекология. 1965. № 2. С. 3–9.
- Яковлев И.И. Основные положения о функции «рожающей» матки // Акушерство и гинекология. 1963. № 5. С. 3–8.
- Савицкий А.Г., Савицкий Г.А. «Дискоординация родовой деятельности» — долгоживущий паранаучный миф или объективная акушерская реальность? // Детская медицина Северо-Запада. 2011. Т. 2, № 1. С. 6–15. EDN: OZNJSF
- Железова М.Е., Зефирова Т.П., Яговкина Н.Е., и др. Влияние продолжительности родового акта на перинатальные исходы // Практическая медицина. 2017. № 7(108). С. 12–17. EDN: ZFCWWD
- Пачулия О.В., Халенко В.В., Шенгелия М.О., и др. Биомеханизмы ремоделирования шейки матки и современные подходы к оценке степени ее зрелости // Журнал акушерства и женских болезней. 2023. Т. 72, № 1. C. 81–95. EDN: SZDEIG doi: 10.17816/JOWD114934
- Young R.C., Hession R.O. Three-dimensional structure of the smooth muscle in the term-pregnant human uterus // Obstet Gynecol. 1999. Vol. 93, N 1. P. 94–99. doi: 10.1016/s0029-7844(98)00345-7
- Gilroy A., MacPherson B., Ross L., et al, Atlas of anatomy. Stuttgart: Thieme, 2012. 656 p.
- Крстич Р.В. Атлас микроскопической анатомии человека: учебное пособие для студентов высших учеб. заведений / под ред. Р.П. Самусева. Москва: Мир и Образование, 2010. 608 с. EDN: QKSODN
- Young R.C. Myocytes, myometrium, and uterine contractions // Ann NY Acad Sci. 2007. Vol. 1101. P. 72–84. doi: 10.1196/annals.1389.038
- Weiss S., Jaermann T., Schmid P., et al. Three-dimensional fiber architecture of the nonpregnant human uterus determined ex vivo using magnetic resonance diffusion tensor imaging // Anat Rec A Discov Mol Cell Evol Biol. 2006. Vol. 288, N 1. P. 84–90. doi: 10.1002/ar.a.20274
- Tetlow R.L., Richmond I., Manton D.J., et al. Histological analysis of the uterine junctional zone as seen by transvaginal ultrasound // Ultrasound Obstet Gynecol. 1999. Vol. 14, N 3. P. 188–193. doi: 10.1046/j.1469-0705.1999.14030188.x
- Benagiano G., Brosens I. Adenomyosis and endometriosis have a common origin // J Obstet Gynaecol India. 2011. Vol. 61, N 2. P. 146–152. doi: 10.1007/s13224-011-0030-y
- Могильная Г.М., Симовоник А.Н. Переходная зона матки и ее предикторы в диагностике аденомиоза // Крымский журнал экспериментальной и клинической медицины. 2018. Т. 8, № 1. С. 55–60. EDN: UUXGVK
- Могильная Г.М., Куценко И.И., Симовоник А.Н. Переходная зона матки и аденомиоз // Журнал анатомии и гистопатологии. 2018. Т. 7, № 1. С. 108–117. EDN: YTTOWW doi: 10.18499/2225-7357-2018-7-1-108-117
- Brosens I., Derwig I., Brosens J., et al. The enigmatic uterine junctional zone: the missing link between reproductive disorders and major obstetrical disorders? // Hum Reprod. 2010. Vol. 25, N 3. P. 569–574. doi: 10.1093/humrep/dep474
- Aguilar H.N., Mitchell B.F. Physiological pathways and molecular mechanisms regulating uterine contractility // Hum Reprod Update. 2010. Vol. 16, N 6. P. 725–744. doi: 10.1093/humupd/dmq016
- Wray S., Prendergast C. The myometrium: from excitation to contractions and labour // Adv Exp Med Biol. 2019. Vol. 1124. P. 233–263. doi: 10.1007/978-981-13-5895-1_10
- Farrer-Brown G., Beilby J.O., Tarbit M.H. The blood supply of the uterus. 1. Arterial vasculature // J Obstet Gynaecol Br Commonw. 1970. Vol. 77, N 8. P. 673–681. doi: 10.1111/j.1471-0528.1970.tb03592.x
- Farrer-Brown G., Beilby J.O., Tarbit M.H. The blood supply of the uterus. 2. Venous pattern // J Obstet Gynaecol Br Commonw. 1970. Vol. 77, N 8. P. 682–689. doi: 10.1111/j.1471-0528.1970.tb03593.x
- Noyes R.W., Hertig A.T., Rock J. Dating the endometrial biopsy // Am J Obstet Gynecol. 1975. Vol. 122, N 2. P. 262–263. doi: 10.1016/s0002-9378(16)33500-1
- Толибова Г.Х., Траль Т.Г., Коган И.Ю., и др. Эндометрий. Атлас. Москва: Медиабюро Статус презенс, 2022. 184 с. EDN: GMDUEO
- Толибова Г.Х., Траль Т.Г., Коган И.Ю., и др. Эмбриональные потери. Атлас. Москва: StatusPraesens, 2023. 248 с. EDN: NPIEWV doi: 10.29039/978-5-907217-78-9
- Pijnenborg R., Vercruysse L., Hanssens M. The uterine spiral arteries in human pregnancy: facts and controversies // Placenta. 2006. Vol. 27, N 9–10. P. 939–958. doi: 10.1016/j.placenta.2005.12.006
- Osol G., Moore L.G. Maternal uterine vascular remodeling during pregnancy // Microcirculation. 2014. Vol. 21, N 1. P. 38–47. doi: 10.1111/micc.12080
- Soares M.J., Chakraborty D., Kubota K., et al. Adaptive mechanisms controlling uterine spiral artery remodeling during the establishment of pregnancy // Int J Dev Biol. 2014. Vol. 58, N 2–4. P. 247–259. doi: 10.1387/ijdb.140083ms
- Burton G.J., Woods A.W., Jauniaux E., et al. Rheological and physiological consequences of conversion of the maternal spiral arteries for uteroplacental blood flow during human pregnancy // Placenta. 2009. Vol. 30, N 6. P. 473–482. doi: 10.1016/j.placenta.2009.02.009
- Jaggar J.H., Wellman G.C., Heppner T.J., et al. Ca2+ channels, ryanodine receptors and Ca(2+)-activated K+ channels: a functional unit for regulating arterial tone // Acta Physiol Scand. 1998. Vol. 164, N 4. P. 577–587. doi: 10.1046/j.1365-201X.1998.00462.x
- Rosenfeld C.R., Roy T., DeSpain K., et al. Large-conductance Ca2+-dependent K+ channels regulate basal uteroplacental blood flow in ovine pregnancy // J Soc Gynecol Investig. 2005. Vol. 12, N 6. P. 402–408. doi: 10.1016/j.jsgi.2005.04.009
- Hu X.Q., Song R., Romero M., et al. Pregnancy increases Ca2+ sparks/spontaneous transient outward currents and reduces uterine arterial myogenic tone // Hypertension. 2019. Vol. 73, N 3. P. 691–702. doi: 10.1161/HYPERTENSIONAHA.118.12484
- Galley H.F., Webster N.R. Physiology of the endothelium // Br J Anaesth. 2004. Vol. 93, N 1. P. 105–113. doi: 10.1093/bja/aeh163
- Wray S., Alruwaili M., Prendergast C. Hypoxia and reproductive health: hypoxia and labour // Reproduction. 2021. Vol. 161, N 1. P. F67–F80. doi: 10.1530/REP-20-0327
- Jenkins H.N., Rivera-Gonzalez O., Gibert Y., et al. Endothelin-1 in the pathophysiology of obesity and insulin resistance // Obes Rev. 2020. Vol. 21, N 12. P. e13086. doi: 10.1111/obr.13086
- Vanhoutte P.M., Tang E.H. Endothelium-dependent contractions: when a good guy turns bad! // J Physiol. 2008. Vol. 586, N 22. P. 5295–5304. doi: 10.1113/jphysiol.2008.161430
- Faber-Swensson A.P., O’Callaghan S.P., Walters W.A. Endothelial cell function enhancement in a late normal human pregnancy // Aust NZ J Obstet Gynaecol. 2004. Vol. 44, N 6. P. 525–529. doi: 10.1111/j.1479-828X.2004.00302.x
- Титов В.Н. Анатомические и функциональные основы эндотелий-зависимой вазодилатации, оксид азота и эндотелин // Российский кардиологический журнал. 2008. № 1. С. 71–85. EDN: IJVIIF
- Nelson S.H., Steinsland O.S., Wang Y., et al. Increased nitric oxide synthase activity and expression in the human uterine artery during pregnancy // Circ Res. 2000. Vol. 87, N 5. P. 406–411. doi: 10.1161/01.res.87.5.406
- Vanhoutte P.M., Shimokawa H., Feletou M., et al. Endothelial dysfunction and vascular disease – a 30th anniversary update // Acta Physiol (Oxf). 2017. Vol. 219, N 1. P. 22–96. doi: 10.1111/apha.12646
- Davies S.C., Machin S.J. Prostacyclin (PGI2) // Intensive Care Med. 1983. Vol. 9, N 2. P. 49–52. doi: 10.1007/BF01699256
- Luksha L., Agewall S., Kublickiene K. Endothelium-derived hyperpolarizing factor in vascular physiology and cardiovascular disease // Atherosclerosis. 2009. Vol. 202, N 2. P. 330–344. doi: 10.1016/j.atherosclerosis.2008.06.008
- Mustafa A.K., Sikka G., Gazi S.K., et al. Hydrogen sulfide as endothelium-derived hyperpolarizing factor sulfhydrates potassium channels // Circ Res. 2011. Vol. 109, N 11. P. 1259–1268. doi: 10.1161/CIRCRESAHA.111.240242
- Prendergast C. Maternal phenotype: how does age, obesity and diabetes affect myometrial function? // Curr Opin Physiol. 2020. Vol. 13. P. 108–116. doi: 10.1016/j.cophys.2019.10.016
- Айламазян Э.К., Кузьминых Т.У. Эволюция взглядов на оперативное родоразрешение // Журнал акушерства и женских болезней. 2022. Т. 71, № 6. С. 97–105. EDN: EPUCIM doi: 10.17816/JOWD119829
- Al-Qahtani S., Heath A., Quenby S., et al. Diabetes is associated with impairment of uterine contractility and high Caesarean section rate // Diabetologia. 2012. Vol. 55, N 2. P. 489–498. doi: 10.1007/s00125-011-2371-6
- Chirayath H.H., Wareing M., Taggart M.J., et al. Endothelial dysfunction in myometrial arteries of women with gestational diabetes // Diabetes Res Clin Pract. 2010. Vol. 89, N 2. P. 134–140. doi: 10.1016/j.diabres.2010.03.022
- Капустин Р.В., Аржанова О.Н., Соколов Д.И., и др. Оценка концентрации эндотелина-1 и SICAM-1 в плазме крови у беременных с гестационным сахарным диабетом // Акушерство и гинекология. 2013. № 5. С. 36–41. EDN: QLHTBZ
- Hayward C.E., Cowley E.J., Mills T.A., et al. Maternal obesity impairs specific regulatory pathways in human myometrial arteries // Biol Reprod. 2014. Vol. 90, N 3. P. 65. doi: 10.1095/biolreprod.113.112623
- Prendergast C., Wray S. Human myometrial artery function and endothelial cell calcium signalling are reduced by obesity: can this contribute to poor labour outcomes? // Acta Physiol (Oxf). 2019. Vol. 227, N 4. P. e13341. doi: 10.1111/apha.13341
- Серегина Д.С., Николаенков И.П., Кузьминых Т.У. Ожирение — ведущее патогенетическое звено патологического течения беременности и родов // Журнал акушерства и женских болезней. 2020. Т. 69, № 2. C. 73–82. EDN: LRLYCV doi: 10.17816/JOWD69273-82
- Acromite M.T., Mantzoros C.S., Leach R.E., et al. Androgens in preeclampsia // Am J Obstet Gynecol. 1999. Vol. 180, N 1. P. 60–63. doi: 10.1016/s0002-9378(99)70150-x
- Pepene C.E. Evidence for visfatin as an independent predictor of endothelial dysfunction in polycystic ovary syndrome // Clin Endocrinol (Oxf). 2012. Vol. 76, N 1. P. 119–125. doi: 10.1111/j.1365-2265.2011.04171.x
- Николаенков И.П., Кузьминых Т.У., Тарасова М.А., и др. Особенности течения беременности у пациенток с синдромом поликистозных яичников // Журнал акушерства и женских болезней. 2020. Т. 69, № 5. C. 105–112. EDN: HNEEAT doi: 10.17816/JOWD695105-112
- Лаврова О.В., Шаповалова Е.А., Дымарская Ю.Р., и др. Оперативное родоразрешение беременных, страдающих бронхиальной астмой // Журнал акушерства и женских болезней. 2019. Т. 68, № 4. C. 19–26. EDN: PHGBRI doi: 10.17816/JOWD68419-26
- Andersen M.R., Uldbjerg N., Stender S., et al. Maternal smoking and impaired endothelium-dependent nitric oxide-mediated relaxation of uterine small arteries in vitro // Am J Obstet Gynecol. 2011. Vol. 204, N 2. P. 177.e1–177.e1777. doi: 10.1016/j.ajog.2010.09.006
- Hu X.Q., Xiao D., Zhu R., et al. Chronic hypoxia suppresses pregnancy-induced upregulation of large-conductance Ca2+-activated K+ channel activity in uterine arteries // Hypertension. 2012. Vol. 60, N 1. P. 214–222. doi: 10.1161/HYPERTENSIONAHA.112.196097
- Xiao D., Hu X.Q., Huang X., et al. Chronic hypoxia during gestation enhances uterine arterial myogenic tone via heightened oxidative stress // PLoS One. 2013. Vol. 8, N 9. P. e73731. doi: 10.1371/journal.pone.0073731
- Lye S.J., Ou C.-W., Teoh T.-G., et al. The molecular basis of labour and tocolysis // Fetal and Maternal Medicine Review. 1998. Vol. 10, N 3. P. 121–136. doi: 10.1017/S096553959800031X
- Beyer E.C., Kistler J., Paul D.L., et al. Antisera directed against connexin43 peptides react with a 43-kD protein localized to gap junctions in myocardium and other tissues // J Cell Biol. 1989. Vol. 108, N 2. P. 595–605. doi: 10.1083/jcb.108.2.595
- Hutchings G., Gevaert T., Deprest J., et al. Immunohistochemistry using an antibody to unphosphorylated connexin 43 to identify human myometrial interstitial cells // Reprod Biol Endocrinol. 2008. Vol. 6. P. 43. doi: 10.1186/1477-7827-6-43
- Ермошенко Б.Г., Дорофеева И.В., Шубич М.Г. Структурно-функциональные основы координации сократительной деятельности миометрия в родах (проводящая система матки) // Российский вестник акушера-гинеколога. 2003. Т. 3, № 5. C. 21–27. EDN: ZCAJFX
- Garfield R.E., Sims S., Daniel E.E. Gap junctions: their presence and necessity in myometrium during parturition // Science. 1977. Vol. 198, N 4320. P. 958–960. doi: 10.1126/science.929182
- Risek B., Guthrie S., Kumar N., et al. Modulation of gap junction transcript and protein expression during pregnancy in the rat // J Cell Biol. 1990. Vol. 110, N 2. P. 269–282. doi: 10.1083/jcb.110.2.269
- Meyer R.A., Laird D.W., Revel J.P., et al. Inhibition of gap junction and adherens junction assembly by connexin and A-CAM antibodies // J Cell Biol. 1992. Vol. 119, N 1. P. 179–189. doi: 10.1083/jcb.119.1.179
- Коновалов П.В., Горшков А.Н., Овсянников Ф.А., и др. Ремоделирование миометрия при соединительнотканной дисплазии у женщин со слабостью родовой деятельности // Трансляционная медицина. 2015. № 6. С. 39–46. EDN: VWHUHH
- Савицкий А.Г., Савицкий Г.А. Биомеханика физиологической родовой схватки (доминирующая версия учения) // Научное обозрение. Медицинские науки. 2021. № 3. С. 62–68. EDN: PDYJZE doi: 10.17513/srms.1192
- Lutton E.J., Lammers W.J.E.P., James S., et al. Identification of uterine pacemaker regions at the myometrial-placental interface in the rat // J Physiol. 2018. Vol. 596, N 14. P. 2841–2852. doi: 10.1113/JP275688
- Shmigol A.V., Eisner D.A., Wray S. Properties of voltage-activated [Ca2+]i transients in single smooth muscle cells isolated from pregnant rat uterus // J Physiol. 1998. Vol. 511, Pt. 3. P. 803–811. doi: 10.1111/j.1469-7793.1998.803bg.x
- Mitchell J.A., Lye S.J. Regulation of connexin43 expression by c-fos and c-jun in myometrial cells // Cell Commun Adhes. 2001. Vol. 8, N 4–6. P. 299–302. doi: 10.3109/15419060109080741
- Chwalisz K., Garfield R.E. Regulation of the uterus and cervix during pregnancy and labor. Role of progesterone and nitric oxide // Ann NY Acad Sci. 1997. Vol. 828. P. 238–253. doi: 10.1111/j.1749-6632.1997.tb48545.x
- Challis J.R.G. Characteristics of parturition. In: Dugoff L., Louis J. Maternalfetal medicine: principles and practice. Philadelphia: Saunders Co., 1998. P. 484–497.
- Кузьминых Т.У., Борисова В.Ю., Николаенков И.П., и др. Роль биологически активных молекул в развитии сократительной деятельности матки // Журнал акушерства и женских болезней. 2019. Т. 68, № 1. С. 21–27. EDN: ZABXXV doi: 10.17816/JOWD68121-27
- Larcombe-McDouall J., Buttell N., Harrison N., et al. In vivo pH and metabolite changes during a single contraction in rat uterine smooth muscle // J Physiol. 1999. Vol. 518, Pt. 3. P. 783–790. doi: 10.1111/j.1469-7793.1999.0783p.x
- Jones N.W., Raine-Fenning N.J., Jayaprakasan K., et al. Changes in myometrial ‘perfusion’ during normal labor as visualized by three-dimensional power Doppler angiography // Ultrasound Obstet Gynecol. 2009. Vol. 33, N 3. P. 307–312. doi: 10.1002/uog.6303
- Sato M., Noguchi J., Mashima M., et al. 3D power Doppler ultrasound assessment of placental perfusion during uterine contraction in labor // Placenta. 2016. Vol. 45. P. 32–36. doi: 10.1016/j.placenta.2016.06.018
- Alotaibi M., Arrowsmith S., Wray S. Hypoxia-induced force increase (HIFI) is a novel mechanism underlying the strengthening of labor contractions, produced by hypoxic stresses // Proc Natl Acad Sci USA. 2015. Vol. 112, N 31. P. 9763–9768. doi: 10.1073/pnas.1503497112
- Duprat F., Lesage F., Fink M., et al. TASK, a human background K+ channel to sense external pH variations near physiological pH // EMBO J. 1997. Vol. 16, N 17. P. 5464–5471. doi: 10.1093/emboj/16.17.5464
- Швецова А.А., Гайнуллина Д.К., Тарасова О.С. Каналы TASK-1: функциональная роль в гладкомышечных клетках артерий // Вестник Московского университета. Серия 16. Биология. 2022. Т. 77, № 2. С. 76–88. EDN: EHRSTY
- Yuill K., Ashmole I., Stanfield P.R. The selectivity filter of the tandem pore potassium channel TASK-1 and its pH-sensitivity and ionic selectivity // Pflugers Arch. 2004. Vol. 448, N 1. P. 63–69. doi: 10.1007/s00424-003-1218-5
- Morton M.J., O’Connell A.D., Sivaprasadarao A., et. Determinants of pH sensing in the two-pore domain K(+) channels TASK-1 and -2 // Pflugers Arch. 2003. Vol. 445, N 5. P. 577–583. doi: 10.1007/s00424-002-0901-2
- Hong S.J., Kim B.K., Shin D.H., et al. Effect of intravascular ultrasound-guided vs angiography-guided everolimus-eluting stent implantation: the IVUS-XPL randomized clinical trial // JAMA. 2015. Vol. 314, N 20. P. 2155–2163. doi: 10.1001/jama.2015.15454
- Kyeong K.S., Hong S.H., Kim Y.C., et al. Myometrial relaxation of mice via expression of two pore domain acid sensitive K(+) (TASK-2) channels // Korean J Physiol Pharmacol. 2016. Vol. 20, N 5. P. 547–556. doi: 10.4196/kjpp.2016.20.5.547
- Jones K., Shmygol A., Kupittayanant S., et al. Electrophysiological characterization and functional importance of calcium-activated chloride channel in rat uterine myocytes // Pflugers Arch. 2004. Vol. 448, N 1. P. 36–43. doi: 10.1007/s00424-003-1224-7
- Monir-Bishty E., Pierce S.J., Kupittayanant S., et al. The effects of metabolic inhibition on intracellular calcium and contractility of human myometrium // BJOG. 2003. Vol. 110, N 12. P. 1050–1056.
- Bugg G.J., Riley M.J., Johnston T.A., et al. Hypoxic inhibition of human myometrial contractions in vitro: implications for the regulation of parturition // Eur J Clin Invest. 2006. Vol. 36, N 2. P. 133–140. doi: 10.1111/j.1365-2362.2006.01600.x
- Badran M., Abuyassin B., Ayas N., et al. Intermittent hypoxia impairs uterine artery function in pregnant mice // J Physiol. 2019. Vol. 597, N 10. P. 2639–2650. doi: 10.1113/JP277775
- Gourdin M.J., Bree B., De Kock M. The impact of ischaemia-reperfusion on the blood vessel // Eur J Anaesthesiol. 2009. Vol. 26, N 7. P. 537–547. doi: 10.1097/EJA.0b013e328324b7c2
- Kirby L.S., Kirby M.A., Warren J.W., et al. Increased innervation and ripening of the prepartum murine cervix // J Soc Gynecol Investig. 2005. Vol. 12, N 8. P. 578–585. doi: 10.1016/j.jsgi.2005.08.006
- Quenby S., Pierce S.J., Brigham S., et al. Dysfunctional labor and myometrial lactic acidosis // Obstet Gynecol. 2004. Vol. 103, N 4. P. 718–723. doi: 10.1097/01.AOG.0000118306.82556.43
- Wiberg-Itzel E., Pembe A.B., Järnbert-Pettersson H., et al. Lactate in amniotic fluid: predictor of labor outcome in oxytocin-augmented primiparas’ deliveries // PLoS One. 2016. Vol. 11, N 10. P. e0161546. doi: 10.1371/journal.pone.0161546
- Wiberg-Itzel E., Pembe A.B., Wray S., et al. Level of lactate in amniotic fluid and its relation to the use of oxytocin and adverse neonatal outcome // Acta Obstet Gynecol Scand. 2014. Vol. 93, N 1. P. 80–85. doi: 10.1111/aogs.12261
Дополнительные файлы
