Механизмы влияния адипонектина на продукцию аполипопротеинов А-1 и B гепатоцитами человека
- Авторы: Танянский Д.А.1, Диже Э.Б.1, Олейникова Г.Н.1, Шавва В.С.1, Денисенко А.Д.1
-
Учреждения:
- Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Институт экспериментальной медицины»
- Выпуск: Том 21, № 1 (2021)
- Страницы: 39-45
- Раздел: Оригинальные исследования
- URL: https://bakhtiniada.ru/MAJ/article/view/62892
- DOI: https://doi.org/10.17816/MAJ62892
- ID: 62892
Цитировать
Аннотация
Цель исследования — выяснить механизмы влияния адипонектина на продукцию аполипопротеинов (апо) А-1 и В гепатоцитами человека.
Материалы и методы. Исследование проводили на клетках линии гепатомы человека HepG2. Экспрессию гена apoA-1 оценивали на уровне мРНК методом количественной полимеразной цепной реакции с обратной транскрипцией, продукцию апоВ — методом иммуноферментного анализа. Активность липогенеза определяли по включению меченого 14С-ацетата в триглицериды, по экспрессии генов липогенеза на уровне мРНК и по общему содержанию триглицеридов в клетках. Для выяснения участия сигнальных путей использовали метод РНК-интерференции.
Результаты. Нокдаун генов специфических рецепторов, АМФ-активируемой протеинкиназы и регулируемых ею факторов транскрипции приводил к отмене адипонектин-зависимой стимуляции экспрессии гена apoA-1 в гепатоцитах. Адипонектин не влиял на липогенез и продукцию апоВ в базальных условиях, но при этом подавлял данные процессы, индуцированные добавлением олеата.
Заключение. Адипонектин стимулирует продукцию апоА-1 в гепатоцитах путем индукции транскрипции гена apoA-1 и подавляет секрецию данными клетками апоВ посредством влияния на липогенез. Указанные воздействия могут лежать в основе влияния адипонектина на обмен липопротеинов.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Дмитрий Андреевич Танянский
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Институт экспериментальной медицины»
Автор, ответственный за переписку.
Email: dmitry.athero@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-5321-8834
SPIN-код: 9303-9445
канд. мед. наук, заведующий лабораторией липопротеинов им. акад. РАМН А.Н. Климова отдела биохимии
Россия, Санкт-ПетербургЭлла Борисовна Диже
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Институт экспериментальной медицины»
Email: dizhe@iem.sp.ru
ORCID iD: 0000-0001-5147-4749
SPIN-код: 1625-0496
канд. биол. наук, ведущий научный сотрудник отдела биохимии
Россия, Санкт-ПетербургГалина Николаевна Олейникова
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Институт экспериментальной медицины»
Email: galina@iem.sp.ru
лаборант-исследователь отдела биохимии
Россия, Санкт-ПетербургВладимир Станиславович Шавва
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Институт экспериментальной медицины»
Email: vssreinard.fox@gmail.com
SPIN-код: 5428-6800
канд. биол. наук, старший научный сотрудник отдела биохимии
Россия, Санкт-ПетербургАлександр Дорофеевич Денисенко
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Институт экспериментальной медицины»
Email: add@iem.sp.ru
ORCID iD: 0000-0003-1613-0654
SPIN-код: 7496-1449
д-р мед. наук, профессор, заведующий отделом биохимии
Россия, Санкт-ПетербургСписок литературы
- Мычка В.Б., Верткин А.Л., Вардаев Л.И. и др. Консенсус экспертов по междисциплинарному подходу к ведению, диагностике и лечению больных с метаболическим синдромом // Кардиоваскулярная терапия и профилактика. 2013. Т. 12, № 6. С. 41–81.
- Денисенко А.Д., Танянский Д.А. Адипокины в патогенезе атеросклероза при метаболическом синдроме // Метаболический синдром / под ред. А.В. Шаброва. СПб., 2020. С. 105–139.
- Yamauchi T., Kamon J., Ito Y. et al. Cloning of adiponectin receptors that mediate antidiabetic metabolic effects // Nature. 2003. Vol. 423, No. 6941. P. 762–769. doi: 10.1038/nature01705
- Qiao L., Zou C., van der Westhuyzen D.R., Shao J. Adiponectin reduces plasma triglyceride by increasing VLDL triglyceride catabolism // Diabetes. 2008. Vol. 57, No. 7. P. 1824–1833. doi: 10.2337/db07-0435
- Matsuura F., Oku H., Koseki M. et al. Adiponectin accelerates reverse cholesterol transport by increasing high density lipoprotein assembly in the liver // Biochem. Biophys. Res. Commun. 2007. Vol. 358, No. 4. P. 1091–1095. doi: 10.1016/j.bbrc.2007.05.040
- Wanninger J., Liebisch G., Eisinger K. et al. Adiponectin isoforms differentially affect gene expression and the lipidome of primary human hepatocytes // Metabolites. 2014. Vol. 4, No. 2. P. 394–407. doi: 10.3390/metabo4020394
- Wanninger J., Neumeier M., Weigert J. et al. Adiponectin-stimulated CXCL8 release in primary human hepatocytes is regulated by ERK1/ERK2, p38 MAPK, NF-kappaB, and STAT3 signaling pathways // Am. J. Physiol. Gastrointest. Liver Physiol. 2009. Vol. 297, No. 3. P. G611–G618. doi: 10.1152/ajpgi.90644.2008
- Shavva V.S., Bogomolova A.M., Nikitin A.A. et al. FOXO1 and LXRα downregulate the apolipoprotein A-I gene expression during hydrogen peroxide-induced oxidative stress in HepG2 cells // Cell Stress Chaperones. 2017. Vol. 22, No. 1. P. 123–134. doi: 10.1007/s12192-016-0749-6
- Mogilenko D.A., Dizhe E.B., Shavva V.S. et al. Role of the nuclear receptors HNF4 alpha, PPAR alpha, and LXRs in the TNF alpha-mediated inhibition of human apolipoprotein A-I gene expression in HepG2 cells // Biochemistry. 2009. Vol.48, No. 50. P. 11950–11960. doi: 10.1021/bi9015742
- Некрасова Е.В., Данько Е.В., Шавва В.С. и др. Действие инсулина на экспрессию гена аполипопротеина A-I в макрофагах человека // Медицинский академический журнал. 2020. Т. 20, № 1. C. 65–74. doi: 10.17816/MAJ16437
- Lee J., Hong S.W., Park S.E. et al. AMP-activated protein kinase suppresses the expression of LXR/SREBP-1 signaling-induced ANGPTL8 in HepG2 cells // Mol. Cell. Endocrinol. 2015. Vol. 414. P. 148–155. doi: 10.1016/j.mce.2015.07.031
- Hwahng S.H., Ki S.H., Bae E.J. et al. Role of adenosine monophosphate-activated protein kinase-p70 ribosomal S6 kinase-1 pathway in repression of liver X receptor-alpha-dependent lipogenic gene induction and hepatic steatosis by a novel class of dithiolethiones // Hepatology. 2009. Vol. 49, No. 6. P. 1913–1925. doi: 10.1002/hep.22887
- Fazio S., Linton M.F. Regulation and clearance of apolipoprotein B-containing lipoproteins // Clinical lipidology: a companion to Braunwald’s heart disease. Ed by C.M. Ballantyne. 2nd ed. Sauders Elsevier; 2015. P. 11–24. doi: 10.1016/B978-141605469-6.50006-8
- Awazawa M., Ueki K., Inabe K. et al. Adiponectin suppresses hepatic SREBP1c expression in an AdipoR1/LKB1/AMPK dependent pathway // Biochem. Biophys. Res. Commun. 2009. Vol. 382, No. 1. P. 51–56. doi: 10.1016/j.bbrc.2009.02.131
- Chen H., Zhang L., Li X. et al. Adiponectin activates the AMPK signaling pathway to regulate lipid metabolism in bovine hepatocytes // J. Steroid. Biochem. Mol. Biol. 2013. Vol. 138. P. 445–454. doi: 10.1016/j.jsbmb.2013.08.013
- Garcia D., Shaw R.J. AMPK: Mechanisms of cellular energy sensing and restoration of metabolic balance // Mol. Cell. 2017. Vol. 66, No. 6. P. 789–800. doi: 10.1016/j.molcel.2017.05.032
- Iwabu M., Yamauchi T., Okada-Iwabu M. et al. Adiponectin and AdipoR1 regulate PGC-1alpha and mitochondria by Ca(2+) and AMPK/SIRT1 // Nature. 2010. Vol. 464, No. 7293. P. 1313–1319. doi: 10.1038/nature08991
Дополнительные файлы
