Анализ результатов использования метода ПЦР в режиме реального времени в исследовании микробного пейзажа плаценты

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Цель – изучить микробный пейзаж плаценты при доношенной беременности при преждевременном разрыве плодных оболочек в сравнении с интактным плодным пузырем.

Материал и методы. На базе ГКБ №1 им. Н.И. Пирогова у 43 беременных в сроке беременности 37–41 неделя, из которых 24 с преждевременным разрывом плодных оболочек (основная группа) и 19 пациенток (группа контроля) с неповрежденными плодными оболочками, во время элективного кесарева сечения проводился забор ткани плаценты на ПЦР-РВ следующих микроорганизмов: Lactobacillus spp., Enterobacteriaceae, Streptococcus spp., Staphylococcus spp., Gardnerella vaginalis / Prevotella bivia / Porphyromonas spp., Eubacterium spp., Sneathia spp. / Leptotrihia spp. / Fusobacterium spp., Megasphaera spp. / Veillonella spp. / Dialister spp., Lachnobacterium spp. / Clostridium spp., Mobiluncus spp. / Corynebacterium spp., Peptostreptococcus spp., Atopobium vaginae, Mycoplasma hominis, Ureaplasma (urealyticum + parvum), Candida spp., Mycoplasma genitalium.

Результаты. При физиологически протекающей доношенной беременности на плаценте выявлено присутствие общей бактериальной массы у 66,7% основной группы (Ме 103,2 Q1:Q3 0,0 – 103,4 ГЭ/образце) и у 78,9% контрольной группы (Ме 103,3 Q1:Q3 103,1 – 103,5 ГЭ/образце). Основными представителями в плаценте из идентифицированных микроорганизмов были представители семейства Enterobacteriaceae spp. (Ме 103,2 ГЭ/образце при ПРПО и Ме 103,2 ГЭ/образце при интактном плодном пузыре (р>0,05)). Lactobacillus spp. определялись в плаценте только в группе с ПРПО у 8,3% пациенток. Присутствие Lactobacillus spp. в тканях плаценты характерно только для пациенток с ПРПО. Не идентифицированные тестом «Фемофлор-16» микроорганизмы установлены у 50% пациенток с ПРПО с Ме 102,1 ГЭ/образце и у 63,2% пациенток с интактным плодным пузырем с Ме 103,2 ГЭ/образце (р=0,09). Взаимосвязи между ПРПО и особенностями микробиоты плаценты не установлено.

Заключение. При физиологически протекающей доношенной беременности возможно выявление методом ПЦР-РВ небольшого количества бактериальной массы, представленной семейством Enterobacteriaceae spp., при ПРПО в образцах плаценты выявляется также Lactobacillus spp. и анаэробная вагинальная флора.

Об авторах

М. А. Каганова

ФГБОУ ВО «Самарский государственный медицинский университет» Минздрава России

Автор, ответственный за переписку.
Email: m.a.kaganova@samsmu.ru
ORCID iD: 0000-0001-5879-418X

канд. мед. наук, доцент кафедры акушерства и гинекологии ИПО

Россия, Самара

Н. В. Спиридонова

ФГБОУ ВО «Самарский государственный медицинский университет» Минздрава России

Email: n.v.spiridonova@samsmu.ru
ORCID iD: 0000-0003-3928-3784

д-р мед. наук, профессор, заведующая кафедры акушерства и гинекологии ИПО

Россия, Самара

Список литературы

  1. Han YW, Shen T, Chung P, et al. Uncultivated bacteria as etiologic agents of intra-amniotic inflammation leading to preterm birth. J Clin Microbiol. 2009;47:38-47. doi: 10.1128/JCM.01206-08
  2. Goldenberg RL, Hauth JC, Andrews WW. Intrauterine infection and preterm delivery. N Engl J Med. 2000;342:1500-7. doi: 10.1056/NEJM200005183422007
  3. Stout MJ, Conlon B, Landeau M, et al. Identification of intracellular bacteria in the basal plate of the human placenta in term and preterm gestations. Am J Obstet Gynecol. 2013;208(3):226.e1-7. doi: 10.1016/j.ajog.2013.01.018
  4. Satokari R, Gronroos T, Laitinen K, et al. Bifidobacterium and Lactobacillus DNA in the human placenta. Lett Appl Microbiol. 2009;48:8-12. doi: 10.1111/j.1472-765X.2008.02475.x.
  5. Parnell LA, Briggs CM, Cao B, et al. Microbial communities in placentas from term normal pregnancy exhibit spatially variable profiles. Sci Rep. 2017;7:11200. doi: 10.1038/s41598-017-11514-4
  6. Lim ES, Rodriges C, Holtz LR. Amniotic fluid from healthy term pregnancies does not harbor a detectable microbial community. Microbiome. 2018;6:87. doi: 10.1186/s40168-018-0475-7
  7. Collado MC, Rautava S, Aakko J, et al. Human gut colonisation may be initiated in utero by distinct microbial communities in the placenta and amniotic fluid. Sci Rep. [Internet]. Elsivier BV. 2015;212;1;57-58. doi: 1016/j.ajog.2014.10.128
  8. Aagaard K, Ma J, Antony KM, et al. The placenta harbors a unique microbiome. Sci Transl Med. [Internet]. American Association for the Advancement of Science (AAAS).2014;6:237ra265-237ra65. doi: 10.1126/scitranslmed.3008599
  9. Mitchell CM, Haick A, Nkwopara E. Colonization of the upper genital tract by vaginal bacterial species in non-pregnant women. Am J Obstet Gynecol. 2015;212;5;611.e1-9. doi: 10.1016/j.ajog.2014.11.043
  10. Chen HJ, Gur TL. Intrauterine Microbiota: Missing, or the Missing Link? Trends Neurosci. 2019;42:402-413. doi: 10.1016/j.tins.2019.03.008
  11. Prince AL, Ma J, Kannan PS, et al. The placental membrane microbiome is altered among subjects with spontaneous preterm birth with and without chorioamnionitis. Am J Obstet Gynecol. 2016;214(5):627.e1-627.e16. doi: 10.1016/j.ajog.2016.01.193
  12. Popova EN, Gordeev IG. Modern ideas about the human microbiota. In: Microbiota. Ed. Nikonova E.N. M., 2019;5-19. (In Russ.). [Попова Е.Н., Гордеев И.Г. Современные представления о микробиоте человека. В кн.: Микробиота. Под ред. Никоновой Е.Н. М., 2019;5-19].
  13. Fox C, Eichelberger K. Maternal microbiome and pregnancy outcomes. Fertil Steril. 2015;104(6):1358-63. doi: 10.1016/j.fertnstert.2015.09.037
  14. Peterson J, Garges S, Giovanni M, et al. The NIH Human Microbiome Project. Genome Res. 2009;19,2317-2323. doi: 10.1101/gr.096651.109
  15. Lipatov IS, Tezikov YuV, Martynova NV, et al. A universal approach to the prevention of pathological pregnancy syndrome. Science and innovations in medicine. 2017;1(5):13-23. (In Russ.). [Липатов И.С., Тезиков Ю.В., Мартынова Н.В., и др. Универсальный подход к профилактике синдрома патологической беременности. Наука и инновации в медицине. 2017;1(5):13-23]. doi: 10.35693/2500-1388-2017-0-1-13-23
  16. Boldyreva MN, Lipova EV, Alexeev LP, et al. Features of urogenital tract’s biota determined by means of real-time PCR among women of reproductive age. Journal of obstetrics and women's diseases. 2009;LVIII(6):36-42. (In Russ.). [Болдырева М.Н., Липова Е.В., Алексеев Л.П., и др. Характеристика биоты урогенитального тракта у женщин репродуктивного возраста методом ПЦР в реальном времени. Журнал акушерства и женских болезней. 2009;LVIII(6):36-42.
  17. Sukhikh GT, Prilepskaya VN, Trofimov DYu, et al. Application of the real-time polymerase chain reaction method to assess the microbiocenosis of the urogenital tract in women (femoflor test): medical technology. М., 2011:36. (In Russ.). [Сухих Г.Т., Прилепская В.Н., Трофимов Д.Ю., и др. Применение метода полимеразной цепной реакции в реальном времени для оценки микробиоценоза урогенитального тракта у женщин (тест фемофлор): медицинская технология. М., 2011:36].
  18. Voroshilina ES, Tumbinskaya LV, Donnikov AE, et al. Vaginal biocenosis with a view to quantitative polymerase chain reaction: what is its norm? Obstetrics and Gynegology. 2011;1:57-65. (In Russ.). [Ворошилина Е.С., Тумбинская Л.В., Донников А.Е., и др. Биоценоз влагалища с точки зрения количественной полимеразной цепной реакции: что есть норма? Акушерство и гинекология. 2011;1:57-65].
  19. Kaganova MA, Spiridonova NV, Kazakova AV, et al. Features of the cervical canal microbiota in prenatal amniorrhea and full-term pregnancy. Obstetrics and Gynegology. 2019;5:77-84. (In Russ.). [Каганова М.А., Спиридонова Н.В., Казакова А.В., и др. Особенности микробиоты цервикального канала при дородовом излитии околоплодных вод и доношенной беременности. Акушерство и гинекология. 2019;5:77-84]. doi: 10.18565/aig.2019.5.77-84
  20. Lauder AP, Roche AM, Sherrill-Mix S, et al. Comparison of placenta samples with contamination controls does not provide evidence for a distinct placenta microbiota. Microbiome. 2014;4:29. doi: 10.1186/s40168-016-0172-3
  21. Theis KR, Romero R, Winters AD, et al. Does the human placenta delivered at term have a microbiota? Results of cultivation, quantitative real-time PCR, 16S rRNA gene sequencing, and metagenomics. J Matern Fetal Neonatal Med. 2019;29:1-16. doi: 10.1016/j.ajog.2018.10.018
  22. de Goffau MC, Lager S, Sovio U, et al. Human placenta has no microbiome but can contain potential pathogens. Nature. 2019;572:1-21. doi: 10.1038/s41586-019-1451-5
  23. Theis KR, Romero R, Greenberg JM, et al. Consistent Evidence for Microbiota in Murine Placental and Fetal Tissues. mSphere. 2020;5(1):e00933-19. doi: 10.1128/mSphere.00933-19
  24. Satokari, R, Gronroos T, Laitinen K, et al. Bifidobacterium and Lactobacillus DNA in the human placenta. Lett Appl Microbiol. 2009;48:8-12. doi: 10.1111/j.1472-765X.2008.02475.x
  25. Zhu L, Luo F, Hu W, et al. Bacterial Communities in the Womb During Healthy Pregnancy. Front Microbiol. Bacterial Communities in the Womb During Healthy Pregnancy. Front Microbiol. 2018;6(9):2163. doi: 10.3389/fmicb.2018.02163
  26. Bagga R, Arora P. Genital Micro-Organisms in Pregnancy. Front Public Health. 2020;8:225. doi: 10.3389/fpubh. 2020. 00225
  27. Martinez KA, Romano-Keeler J, Zackular JP, et al. Bacterial DNA is present in the fetal intestine and overlaps with that in the placenta in mice. PLoS ONE. 2018;13(5):e0197439. doi: 10.1371/journal.pone.0197439
  28. Parnell LA, Briggs CM, Cao B, et al. Microbial communities in placentas from term normal pregnancy exhibit spatially variable profiles. Sci Rep. 2017;7:11200. doi: 10.1038/s41598-017-11514-4
  29. Leiby JS, McCormick K, Sherrill-Mix S, et al. Lack of detection of a human placenta microbiome in samples from preterm and term deliveries. Microbiome. 2018;6:196. doi: 10.1186/s40168-018-0575-4
  30. Vanterpool SF, Been JV, Houben ML, et al. Porphyromonas gingivalis within Placental Villous Mesenchyme and Umbilical Cord Stroma Is Associated with Adverse Pregnancy Outcome. PLoS One. 2016;11(1):e0146157. doi: 10.1371/journal.pone.0146157
  31. Younes JA, Lievens E, Hummelen R, et al. Women and their microbes: the unexpected friendship. Trends Microbiol. 2017;26:16-32. doi: 10.1016/j.tim.2017.07.008
  32. Cobb CM, Kelly PJ, Williams KB, et al. The oral microbiome and adverse pregnancy outcomes. International Journal of Women’s Health. 2017;8(9):551-559. doi: 10.2147/IJWH.S142730
  33. Pelzer E, Gomez-Arango LF, Barrett HL, Nitert MD. Maternal health and the placental microbiome. Placenta. 2017;54:30-37. doi: 10.1016/j.placenta.2016.12.003

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Каганова М.А., Спиридонова Н.В., 2023

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».