Изучение морфоструктурных повреждений бактериальных клеток под воздействием хлорсодержащих производных 5-,6-,7-аминоиндолов с помощью сканирующего электронного микроскопа
- Авторы: Масейкина А.А.1, Степаненко И.С.2, Платкова Т.Н.1, Кирютина А.И.1, Малышева В.С.1
-
Учреждения:
- ФГБОУ ВО Национальный исследовательский Мордовский государственный университет им. Н.П. Огарева
- ФГБОУ ВО Волгоградский государственный медицинский университет Министерства здравоохранения Российской Федерации
- Выпуск: Том 13, № 2 (2023)
- Страницы: 243-256
- Раздел: ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ
- URL: https://bakhtiniada.ru/2220-7619/article/view/147821
- DOI: https://doi.org/10.15789/2220-7619-MDT-2047
- ID: 147821
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Клеточная стенка и мембраны грамположительных и грамотрицательных бактерий обеспечивают физический, осмотический и метаболический барьер между внутренним содержимым бактериальной клетки и внешней средой. Наблюдение за изменениями целостности бактериальной структуры с помощью сканирующего электронного микроскопа (СЭМ) может помочь прояснить детальные механизмы гибели клеток. Цель исследования — провести анализ морфологических изменений микробных клеток под воздействием новых соединений с противомикробной активностью — хлорсодержащих производных 5-,6-,7-аминоиндолов с помощью СЭМ. Настоящее исследование проводили с использованием штаммов Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus aureus и Еsсhеriсhiа соli, полученных от больных с неспецифическими заболеваниями органов дыхания, мочевыводящих путей, кишечника, с различной чувствительностью к традиционно используемым антимикробным препаратам. В результате исследуемые хлорметилсодержащие соединения индольного ряда показали свою биологическую активность, а именно — противомикробную. Контрольные клетки были морфологически правильными и типичными. Статистический анализ морфометрии поверхности клеток в контрольных и опытных образцах не выявил существенных изменений размеров под воздействием соединений с лабораторным шифром Т1, Т4, Т7 и Т12. При этом по сравнению с контрольными необработанными клетками P. aeruginosa, S. aureus и E. coli обработка хлорзамещенными производными 5-,6-,7-аминоиндолов вызывала явные морфологические изменения, о чем свидетельствует об ухудшении состояния клеточной стенки. У P. aeruginosa под воздействием Т7 и Т12 наблюдались филаментные клетки. Появление длинных нитей может быть связано со стрессом, который испытывает клетка после воздействия исследуемых соединений. Считается, что образование таких филаментов у бактерий в условиях стресса является результатом дефектов клеточного деления, особенно при отделении дочерних клеток. Есть данные, согласно которым при подавлении синтеза ДНК бактерии изменяется ее морфология: она становится длиннее, не вступая в фазу деления. Обработка Т1, Т7 и Т12 приводила к деградации клеточной стенки P. aeruginosa, в то время как обработка Т4 вызывала образование пор на поверхности клетки. В этом исследовании было продемонстрировано, что под действием Т1, Т4, Т7 и Т12 происходят заметные морфологические изменения клеточных стенок S. aureus, которые в конечном итоге приводят к деформации микробных клеток. Обработка клеток E. coli Т1, Т4, Т7 и Т12 при концентрации 500 мкг/мл вызывала лизис клеток, хотя нормальные клетки также были обнаружены. Появление клеточных обломков вокруг целых клеток E. coli указывает на повреждение мембраны, которое, вероятно, приводит к изменению осмотического давления. Использование СЭМ подтвердило данные об антимикробной активности хлорзамещенных производных 5-,6-,7-аминоиндолов.
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Алена Александровна Масейкина
ФГБОУ ВО Национальный исследовательский Мордовский государственный университет им. Н.П. Огарева
Автор, ответственный за переписку.
Email: minibat@mail.ru
соискатель кафедры иммунологии, микробиологии и вирусологии Медицинского института
Россия, г. СаранскИрина Семеновна Степаненко
ФГБОУ ВО Волгоградский государственный медицинский университет Министерства здравоохранения Российской Федерации
Email: minibat@mail.ru
д.м.н., доцент, зав. кафедрой иммунологии, микробиологии и вирусологии с курсом клинической микробиологии
Россия, г. ВолгоградТатьяна Николаевна Платкова
ФГБОУ ВО Национальный исследовательский Мордовский государственный университет им. Н.П. Огарева
Email: minibat@mail.ru
соискатель кафедры иммунологии, микробиологии и вирусологии Медицинского института
Россия, г. СаранскАнастасия Игоревна Кирютина
ФГБОУ ВО Национальный исследовательский Мордовский государственный университет им. Н.П. Огарева
Email: minibat@mail.ru
соискатель кафедры иммунологии, микробиологии и вирусологии Медицинского институт
Россия, г. СаранскВлада Сергеевна Малышева
ФГБОУ ВО Национальный исследовательский Мордовский государственный университет им. Н.П. Огарева
Email: minibat@mail.ru
студентка Медицинского института
Россия, г. СаранскСписок литературы
- Агарев А.Е. Распространенность ESKAPE-патогенов в отделении реанимации и интенсивной терапии новорожденных // Социально-гигиенический мониторинг здоровья населения: материалы к 24-й Всерос. науч.-практ. конф. с междунар. участием. Вып. 24. Под ред. В.А. Кирюшина. Рязань, 2020. С. 148–152. [Agarev A.E. Prevalence of ESKAPE-pathogens in neonatal intensive care units // Social and Hygienic Monitoring of Population Health: Proceedings for the 24th All-Russian Scientific and Practical Conference with International Participation. Iss. 24. Ed. by V.A. Kiryushin. Ryazan, 2020, pp. 148–152. (In Russ.)]
- Андреевская С.Г., Шевлягина Н.В., Псеунова Д.Р. Изменения морфологии S. aureus в условиях их культивирования в присутствии антибактериальных препаратов // Медицина. 2020. Т. 8, № 2. С. 31–49. [Andreevskaya S.G., Shevlyagina N.V., Pseunova J.R. Morphological сhanges of S. aureus cultivated in the presence of antibacterial drugs. Meditsina = Medicine, 2020, vol. 8, no. 2, pp. 31–49. (In Russ.)] doi: 10.29234/2308-9113-2020-8-2-31-49
- Методики клинических лабораторных исследований: справочное пособие. Том 3. Клиническая микробиология: бактериологические исследования; микологические исследования; паразитологические исследования; инфекционная иммунодиагностика; молекулярная диагностика инфекционных заболеваний / Под ред. В.В. Меньшикова. М.: Лабора, 2009. 880 с. [Methods of clinical laboratory tests: a reference manual. Vol. 3. Clinical microbiology: bacteriological studies; mycological studies; parasitological studies; infectious immunodiagnostics; molecular diagnosis of infectious diseases. Ed. by V.V. Menshikov. Moscow: Labora, 2009. 880 p. (In Russ.)]
- Мороз А.Ф., Анциферова Н.Г., Баскакова Н.В. Синегнойная инфекция. М.: Медицина, 1988. 256 с. [Moroz A.F., Antsiferova N.G., Baskakova N.V. Pseudomonas infection. Moscow: Meditsina, 1988. 256 p. (In Russ.)]
- Об унификации микробиологических (бактериологических) методов исследования, применяемых в клинико-диагностических лабораториях лечебно-профилактических учреждений: приказ МЗ СССР № 535 от 22.04.1985 г. М., 1985. 93 с. [Unification of microbiological (bacteriological) methods of investigation used in clinical diagnostic laboratories of medical and preventive institutions: Order of the Ministry of Health of the USSR No. 535. April 22, 1985. Moscow, 1985. 93 p. (In Russ.)]
- Патент № 2724605 Российская Федерация. МПК C07D 209/40 (2006.01), СПК C07D 209/40 (2020.02). Способ получения монохлорацетатов замещенных 5-,6-,7-аминоиндолов, обладающих противомикробным действием; № 2019125333, заявлено 2019.08.09, опубликовано 2020.06.25 / Степаненко И.С., Ямашкин С.А., Батаршева А.А., Сластников Е.Д. Патентообладатель: МГУ им. Н.П. Огарева. 9 с. [Patent No 2724605 Russian Federation, Int.Cl. C07D 209/40 (2006.01), C07D 209/40 (2020.02). Method of producing monochloroacetates of substituted 5-, 6-, 7-aminoindoles, having antimicrobial action; № 2019125333, application 2019.08.09; date of publication 2020.06.25 / Stepanenko I.S., Yamashkin S.А., Batarsheva A.А., Slastnikov E.D. Proprietors National Research Mordovia State University. 9 p.]
- Руководство по проведению доклинических исследований лекарственных средств. Часть первая. М.: Гриф и К, 2012. 944 с. [Guidelines for conducting preclinical studies of medicines. Part one. Moscow: Grif i K, 2012. 944 p. (In Russ.)]
- Сазыкин Ю.О., Навашин П.С. Антибиотики и оболочка бактериальной клетки. Итоги науки и техники. Сер. Биотехнология. М.: ВИНИТИ, 1991. Т. 31. 182 с. [Sazykin Yu.O., Navashin P.S. Antibiotics and bacterial cell envelope. Science and Technology Outcomes. Biotechnology Series. Mocsow: VINITI, 1991, vol. 31, 182 p. (In Russ.)]
- Супотницкий М.В. Механизмы развития резистентности к антибиотикам у бактерий // БИОпрепараты. Профилактика, диагностика, лечение. 2011. Т. 42, № 2. С. 4–13. [Supotnitskiy M.V. Mechanisms of antibiotic resistance in bacteria. BIOpreparaty. Profilaktika, diagnostika, lechenie = Biological Products. Prevention, Diagnostics, Treatment, 2011, vol. 42, no. 2, pp. 4–13. (In Russ.)]
- Armas F., Pacor S., Ferrari E., Guida F., Pertinhez T.A., Romani A.A., Scocchi M., Benincasa M. Design, antimicrobial activity and mechanism of action of Arg-rich ultra-short cationic lipopeptides. PLoS One, 2019, vol. 14, no. 2: e0212447. doi: 10.1371/journal.pone.0212447
- Bajpai V.K., Shukla S., Paek W.K., Lim J., Kumar P., Kumar P., Na M. Efficacy of (+)-Lariciresinol to control bacterial growth of Staphylococcus aureus and Escherichia coli O157:H7. Front. Microbiol., 2017, vol. 8: 804. doi: 10.3389/fmicb.2017.00804
- Barreto-Santamaría A., Curtidor H., Arévalo-Pinzón G., Herrera C., Suárez D., Pérez W.H., Patarroyo M.E. A New Synthetic Peptide Having Two Target of Antibacterial Action in E. coli ML35. Front. Microbiol., 2016, vol. 7: 2006. doi: 10.3389/fmicb.2016.02006
- Ciofu O., Hansen C.R., Høiby N. Respiratory bacterial infections in cystic fibrosis. Curr. Opin. Pulm. Med., 2013, vol. 19, no. 3, pp. 251–8. doi: 10.1097/MCP.0b013e32835f1afc
- Classics in infectious diseases. «On abscesses». Alexander Ogston (1844–1929). Rev. Infect. Dis., 1984, vol. 6, no. 1, pp. 122–128. doi: 10.1093/clinids/6.1.122
- Cui H., Zhang X., Zhou H., Zhao C., Lin L. Antimicrobial activity and mechanisms of Salvia sclarea essential oil. Bot. Stud., 2015, vol. 56, no. 1: 16. doi: 10.1186/s40529-015-0096-4
- Defez C., Fabbro-Peray P., Bouziges N., Gouby A., Mahamat A., Daurès J.P., Sotto A. Risk factors for multidrug-resistant Pseudomonas aeruginosa nosocomial infection. J. Hosp. Infect., 2004, vol. 57, no. 3, pp. 209–216. doi: 10.1016/j.jhin.2004.03.022
- Diggle S.P., Whiteley M. Microbe Profile: Pseudomonas aeruginosa: opportunistic pathogen and lab rat. Microbiology (Reading), 2020, vol. 166, no. 1, pp. 30–33. doi: 10.1099/mic.0.000860
- Dosunmu E.F., Chaudhari A.A., Bawage S., Bakeer M.K., Owen D.R., Singh S.R., Dennis V.A., Pillai S.R. Novel cationic peptide TP359 down-regulates the expression of outer membrane biogenesis genes in Pseudomonas aeruginosa: a potential TP359 anti-microbial mechanism. BMC Microbiol., 2016, vol. 16, no. 1: 192. doi: 10.1186/s12866-016-0808-2
- Dosunmu E., Chaudhari A.A., Singh S.R., Dennis V.A., Pillai S.R. Silver-coated carbon nanotubes downregulate the expression of Pseudomonas aeruginosa virulence genes: a potential mechanism for their antimicrobial effect. Int. J. Nanomedicine, 2015, vol. 10, pp. 5025–5034. doi: 10.2147/IJN.S85219
- Eckert R., Brady K.M., Greenberg E.P., Qi F., Yarbrough D.K., He J., McHardy I., Anderson M.H., Shi W. Enhancement of antimicrobial activity against pseudomonas aeruginosa by coadministration of G10KHc and tobramycin. Antimicrob. Agents Chemother., 2006, vol. 50, no. 11, pp. 3833–3838. doi: 10.1128/AAC.00509-06
- Greenwood D., O’Grady F. Scanning electron microscopy of Staphyloccus aureus exposed to some common anti-staphylococcal agents. J. Gen. Microbiol., 1972, vol. 70, no. 2, pp. 263–270. doi: 10.1099/00221287-70-2-263
- Hartmann M., Berditsch M., Hawecker J., Ardakani M.F., Gerthsen D., Ulrich A.S. Damage of the bacterial cell envelope by antimicrobial peptides gramicidin S and PGLa as revealed by transmission and scanning electron microscopy. Antimicrob. Agents Chemother., 2010, vol. 54, no. 8, pp. 3132–3142. doi: 10.1128/AAC.00124-10
- Jones T.H., Vail K.M., McMullen L.M. Filament formation by foodborne bacteria under sublethal stress. Int. J. Food Microbiol., 2013, vol. 165, no. 2, pp. 97–110. doi: 10.1016/j.ijfoodmicro.2013.05.001
- Kolle W., Hetsch H. Die experimentelle Bakteriologie und die Infektionskrankheiten mit besonderer Berücksichtigung der Immunitätslehre. Ein Lehrbuch für Studierende Ärzte und Medizinalbeamte. Urban & Schwarzenberg, Berlin 1906.
- Kong C., Chee C.F., Richter K., Thomas N., Abd Rahman N., Nathan S. Suppression of Staphylococcus aureus biofilm formation and virulence by a benzimidazole derivative, UM-C162. Sci. Rep., 2018, vol. 8, no. 1: 2758. doi: 10.1038/s41598-018-21141-2
- Leimbach A., Hacker J., Dobrindt U. E. coli as an all-rounder: the thin line between commensalism and pathogenicity. Curr. Top. Microbiol. Immunol., 2013, vol. 358, pp. 3–32. doi: 10.1007/82_2012_303
- Mahgoub S.A., Osman A.O., Sitohy M.Z. Bioactive proteins against pathogenic and spoilage bacteria. Functional Foods in Health and Disease, 2014, vol. 4, no. 10, pp. 451–462. doi: 10.31989/ffhd.v4i10.155
- Marcellini L., Giammatteo M., Aimola P., Mangoni M.L. Fluorescence and electron microscopy methods for exploring antimicrobial peptides mode(s) of action. Methods Mol. Biol., 2010, vol. 618, pp. 249–266. doi: 10.1007/978-1-60761-594-1_16
- Migula W. System der Bakterien: Handbuch der Morphologie, Entwicklungsgeschichte und Systematik der Bakterien. Fischer, 1900. 410 p.
- Mwangi J., Yin Y., Wang G., Yang M., Li Y., Zhang Z., Lai R. The antimicrobial peptide ZY4 combats multidrug-resistant Pseudomonas aeruginosa and Acinetobacter baumannii infection. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 2019, vol. 116, no. 52, pp. 26516–26522. doi: 10.1073/pnas.1909585117
- Schroeter J. Ueber einige durch Bacterien gebildete Pigmente. Beiträge zur Biologie der Pflanzen, 1872, vol. 1, no. 2, pp. 109–126.
- Sun H.Y., Fujitani S., Quintiliani R., Yu V.L. Pneumonia due to Pseudomonas aeruginosa: part II: antimicrobial resistance, pharmacodynamic concepts, and antibiotic therapy. Chest, 2011, vol. 139, no. 5, pp. 1172–1185. doi: 10.1378/chest.10-0167
- Rosenbach A.J.F. Mikro-organismen bei den Wund-infections-krankheiten des Menschen. Wiesbaden: JF Bergmann, 1884. 122 p.
- Rosenberger C.M., Gallo R.L., Finlay B.B. Interplay between antibacterial effectors: a macrophage antimicrobial peptide impairs intracellular Salmonella replication. Proc. Natl Acad. Sci. USA, 2004, vol. 101, no. 8, pp. 2422–2427. doi: 10.1073/pnas.0304455101
- Shulman S.T., Friedmann H.C., Sims R.H. Theodor Escherich: the first pediatric infectious diseases physician? Clin. Infect. Dis., 2007, vol. 45, no. 8, pp. 1025–1029. doi: 10.1086/521946
- Silhavy T.J., Kahne D., Walker S. The bacterial cell envelope. Cold Spring Harb. Perspect Biol., 2010, vol. 2, no. 5: a000414. doi: 10.1101/cshperspect.a000414
- Subbalakshmi C., Sitaram N. Mechanism of antimicrobial action of indolicidin. FEMS Microbiol. Lett., 1998, vol. 160, no. 1, pp. 91–96. doi: 10.1111/j.1574-6968.1998.tb12896.x
- Wu Y., Liang J., Rensing K., Chou T.M., Libera M. Extracellular matrix reorganization during cryo preparation for scanning electron microscope imaging of Staphylococcus aureus biofilms. Microsc. Microanal., 2014, vol. 20, no. 5, pp. 1348–1355. doi: 10.1017/S143192761401277X
- Xu Z.G., Gao Y., He J.G., Xu W.F., Jiang M., Jin H.S. Effects of azithromycin on Pseudomonas aeruginosa isolates from catheter-associated urinary tract infection. Exp. Ther. Med., 2015, vol. 9, no. 2, pp. 569–572. doi: 10.3892/etm.2014.2120
- Yamaki S., Kawai Y., Yamazaki K. Long filamentous state of Listeria monocytogenes induced by sublethal sodium chloride stress poses risk of rapid increase in colony-forming units. Food Control, 2021, vol. 124: 107860. doi: 10.1016/j.foodcont.2020.107860
Дополнительные файлы
