Экспрессия CDR1, CDR2, MDR1 и ERG11 у устойчивых к азолам штаммов Сandida albicans, выделенных от ВИЧ-инфицированных пациентов в городе Москве
- Авторы: Воропаев А.Д.1, Екатеринчев Д.А.1, Урбан Ю.Н.2, Зверев В.В.1, Несвижский Ю.В.1, Воропаева Е.А.2, Лиханская Е.И.2, Афанасьев М.С.1, Афанасьев С.С.2
-
Учреждения:
- ФГАОУ ВО Первый московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Минздрава России (Сеченовский Университет)
- ФБУН Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н. Габричевского Роспотребнадзора
- Выпуск: Том 12, № 5 (2022)
- Страницы: 929-937
- Раздел: ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ
- URL: https://bakhtiniada.ru/2220-7619/article/view/119157
- DOI: https://doi.org/10.15789/2220-7619-CCM-1931
- ID: 119157
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Грибы рода Candida — повсеместно распространенные оппортунисты человека, способные вызывать инфекции различной локализации, а также угрожающие жизни состояния у иммунокомпрометированных пациентов, число которых в последние годы неуклонно растет. Это ВИЧ-инфицированные, пациенты с различными онкологическими заболеваниями и пациенты, перенесшие трансплантацию гемопоэтических стволовых клеток. Кроме того, распространяется устойчивость к противогрибковым препаратам. Природно-чувствительные к азолам Candida albicans обладают разнообразными механизмами приобретенной устойчивости, включая эффлюксные переносчики и амплификацию гена белка-мишени. Данное исследование проводилось с целью оценить распространенность данных механизмов в выборке изолятов, выделенных от ВИЧ-инфицированных пациентов в Московском регионе Российской Федерации, охарактеризовать взаимосвязь данных механизмов и закономерности развития устойчивости. 18 устойчивых к флуконазолу и вориконазолу штаммов C. albicans были выделены от ВИЧ-инфицированных пациентов с рецидивирующим орофарингеальным кандидозом, находящихся на лечении в ГБУЗ ИКБ № 2 ДЗМ. Уровни экспрессии генов ERG11, MDR1, CDR1, CDR2, участвующих в формировании приобретенной устойчивости к азолам были измерены с помощью количественной полимеразной цепной реакции, метода –2ΔΔCT с генами ACT и PMA в качестве контрольных генов и референсных значений чувствительных изолятов. Уровни экспрессии выше средних значений чувствительных изолятов более чем на 3 стандартных отклонения считались достоверно повышенными. У большей части изолятов обнаружены повышенные уровни экспрессии генов CDR1 и CDR2: 89 и 78% соответственно. Уровень экспрессии гена MDR1 был повышен только в 28% случаев. Уровни экспрессии ERG11 были достоверно повышенными у 78% изолятов. У 4 штаммов были значительно повышены уровни экспрессии всех исследуемых генов устойчивости. В данной выборке изолятов C. albicans приобретенная устойчивость в основном связана с эффлюксными переносчиками, кодируемыми генами CDR1 и CDR2. Также, у большинства изолятов выявлен повышенный уровень экспрессии гена белка-мишени азолов — ERG11. Уровень экспрессии гена эффлюксного переносчика MDR1 был повышен в наименьшем числе образцов. Нельзя также исключать вероятную роль других механизмов приобретенной устойчивости, таких как мутации в гене ERG11. Можно предположить, что выявленные механизмы устойчивости являются следствием длительного, широкого, а порой и бесконтрольного применения азолов, в том числе для лечения и профилактики кандидозов в группе ВИЧ-инфицированных пациентов.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
А. Д. Воропаев
ФГАОУ ВО Первый московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Минздрава России (Сеченовский Университет)
Автор, ответственный за переписку.
Email: advoropaev@gmail.com
аспирант кафедры микробиологии, вирусологии и иммунологии
Россия, МоскваД. А. Екатеринчев
ФГАОУ ВО Первый московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Минздрава России (Сеченовский Университет)
Email: ekaterinchevda@yandex.ru
аспирант кафедры микробиологии, вирусологии и иммунологии
Россия, МоскваЮ. Н. Урбан
ФБУН Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н. Габричевского Роспотребнадзора
Email: urbanek@mail.ru
к.б.н., старший научный сотрудник лаборатории клинической микробиологии и биотехнологии
Россия, МоскваВ. В. Зверев
ФГАОУ ВО Первый московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Минздрава России (Сеченовский Университет)
Email: vitalyzverev@outlook.com
академик РАН, д.б.н., профессор, зав. кафедрой микробиологии, вирусологии и иммунологии
Россия, МоскваЮ. В. Несвижский
ФГАОУ ВО Первый московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Минздрава России (Сеченовский Университет)
Email: nesviz@mail.ru
д.м.н., профессор, заслуженный деятель науки РФ, профессор кафедры микробиологии, вирусологии и иммунологии
Россия, МоскваЕ. А. Воропаева
ФБУН Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н. Габричевского Роспотребнадзора
Email: voropaevaea2011@gmail.com
д.б.н., доцент, главный научный сотрудник, руководитель отдела медицинской биотехнологии
Россия, МоскваЕ. И. Лиханская
ФБУН Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н. Габричевского Роспотребнадзора
Email: lihanskaya.ei@gmail.com
к.б.н., руководитель лаборатории микробиологии и профилактики кишечных инфекций
Россия, МоскваМ. С. Афанасьев
ФГАОУ ВО Первый московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Минздрава России (Сеченовский Университет)
Email: nesviz@mail.ru
д.м.н., профессор кафедры клинической аллергологии и иммунологии
Россия, МоскваС. С. Афанасьев
ФБУН Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н. Габричевского Роспотребнадзора
Email: afanasievss409.4@bk.ru
д.м.н., профессор, заслуженный деятель науки РФ, главный научный сотрудник
Россия, МоскваСписок литературы
- Беженар М.Б., Плахова К.И. Механизмы развития резистентности к противогрибковым препаратам грибов рода Candida при рецидивирующем течении урогенитального кандидоза // Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 2020. Т. 38, № 1. С. 15–23. [Bezhenar M.B., Plakhova K.I. Mechanisms of developing antifungal drug resistance of candida spp. in recurrent urogenital candidiasis. Molekulyarnaya genetika, mikrobiologiya i virusologiya = Molecular Genetics, Microbiology and Virology, 2020, vol. 35, no. 1, pp. 15–23. (In Russ.)] doi: 10.17116/molgen20203801115
- Веселов А.В., Козлов Р.С. Инвазивный кандидоз: современные аспекты эпидемиологии, диагностики, терапии и профилактики у различных категорий пациентов (в вопроса и ответах) // Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2016. Т. 18, № 2 (Приложение). С. 1–104. [Veselov A.V., Kozlov R.S. Invasive candidiasis: modern aspects of epidemiology, diagnosis, therapy, and prevention in various categories of patients. Klinicheskaya mikrobiologiya i antimikrobnaya khimioterapiya = Clinical Microbiology and Antimicrobial Chemotherapy, 2016, vol. 18, no. 2 (suppl.), pp. 1–104. (In Russ.)]
- Пашинина О.А., Карташова О.Л., Пашкова Т.М., Попова Л.П. Антимикотикорезистентность грибов рода Candida, выделенных из репродуктивного тракта женщин с воспалительными заболеваниями гениталий // Бюллетень Оренбургского Научного Центра УрО РАН. 2016. № 3. 9 c. [Pashinina O.A., Kartashova O.L., Pashkova T.M., Popova L.P. Antimycotic resistance of Candida fungi isolated from the reproductive tract of women with inflammatory diseases of the genitals. Byulleten’ Orenburgskogo Nauchnogo Tsentra UrO RAN = Bulletin of the Orenburg Scientific Center of the Ural Branch of the Russian Academy of Sciences, 2016, no. 3, 9 p. (In Russ.)]
- Araújo D., Mil-Homens D., Henriques M., Silva S. Anti-EFG1 2’-OMethylRNA oligomer inhibits Candida albicans filamentation and attenuates the candidiasis in Galleria mellonella. Mol. Ther. Nucleic Acids, 2021, vol. 27, pp. 517–523. doi: 10.1016/ j.omtn.2021.12.018
- Assress H.A., Selvarajan R., Nyoni H., Mamba B.B., Msagati T.A.M. Antifungal azoles and azole resistance in the environment: current status and future perspectives — a review. Reviews in Environmental Science and Bio/Technology, 2021, vol. 20, pp. 1011–1041. doi: 10.1007/s11157-021-09594-w
- Banerjee A., Pata J., Sharma S., Monk B.C., Falson P., Prasad R. Directed mutational strategies reveal drug binding and transport by the MDR transporters of Candida albicans. J. Fungi (Basel), 2021, vol. 7, no. 2: 68. doi: 10.3390/jof7020068
- Bhattacharya S., Sae-Tia S., Fries B.C. Candidiasis and mechanisms of antifungal resistance. Antibiotics, 2020, vol. 9, no. 6: 312. doi: 10.3390/antibiotics9060312
- Biswas C., Chen C.-A., Halliday C., Kennedy K., Playford E.G., Marriott D.J., Slavin M.A., Sorrell T.C., Sintchenko V. Identification of genetic markers of resistance to echinocandins, azoles and 5-fluorocytosine in Candida glabrata by next-generation sequencing: a feasibility study. Clin. Microbiol. Infect., vol. 23, no. 9, pp. 676.e7–676.e10. doi: 10.1016/j.cmi.2017.03.014
- Bongomin F., Gago S., Oladele R., Denning D. Global and multi-national prevalence of fungal diseases — estimate precision. J. Fungi (Basel), 2017, vol. 3, no. 4: 57. doi: 10.3390/jof3040057
- Flowers S.A., Barker K.S., Berkow E.L., Toner G., Chadwick S.G., Gygax S.E., Morschhäuser J., Rogers P.D. Gain-of-function mutations in UPC2 are a frequent cause of ERG11 upregulation in azole-resistant clinical isolates of Candida albicans. Eukaryotic Cell. 2012, vol. 11, no. 10, pp. 1289–1299. doi: 10.1128/EC.00215-12
- Garcia-Effron G. Molecular markers of antifungal resistance: potential uses in routine practice and future perspectives. J. Fungi (Basel), 2021, vol. 7, no. 3: 197. doi: 10.3390/jof7030197
- Graham D.O., Wilson R.K., Ruma Y.N., Keniya M.V., Tyndall J.D.A., Monk B.C. Structural insights into the azole resistance of the Candida albicans darlington strain using Saccharomyces cerevisiae lanosterol 14-demethylase as a surrogate. J. Fungi (Basel), 2021, vol. 7, no. 11: 897. doi: 10.3390/jof7110897
- Hampe I.A.I., Friedman J., Edgerton M., Morschhäuser J. An acquired mechanism of antifungal drug resistance simultaneously enables Candida albicans to escape from intrinsic host defenses. PLoS Pathog., 2017, vol. 13, no. 9: e1006655. doi: 10.1371/journal.ppat.1006655
- Hoving J.C., Brown G.D., Gómez B.L., Govender N.P., Limper A.H., May R.C., Meya D.B. AIDS-related mycoses: updated progress and future priorities. Trends Microbiol., 2020, vol. 28, no. 6, pp. 425–428. doi: 10.1016/j.tim.2020.01.009
- Kukurudz R.J., Chapel M., Wonitowy Q., Bukari A.-R.A., Sidney B., Sierhuis R., Gerstein A.C. Acquisition of cross-azole tolerance and aneuploidy in Candida albicans strains evolved to posaconazole. G3 (Bethesda), 2022, vol. 12, no. 9: jkac156 doi: 10.1093/g3journal/jkac156
- Lee Y., Puumala E., Robbins N., Cowen L.E. Antifungal drug resistance: molecular mechanisms in Candida albicans and beyond. Chem. Rev., 2021, vol. 121, no. 6, pp. 3390–3411. doi: 10.1021/acs.chemrev.0c00199
- Liu J.-Y.Y., Shi C., Wang Y., Li W.-J.J., Zhao Y., Xiang M.-J.J. Mechanisms of azole resistance in Candida albicans clinical isolates from Shanghai, China. Res. Microbiol., 2015, vol. 166, no. 3, pp. 153–161. doi: 10.1016/j.resmic.2015.02.009
- Livak K.J., Schmittgen T.D. Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2(-Delta Delta C(T)) Method. Methods, 2001, vol. 25, no. 4, pp. 402–408. doi: 10.1006/meth.2001.1262
- Maras B., Maggiore A., Mignogna G., D’Erme M., Angiolella L. Hyperexpression of CDRs and HWP1 genes negatively impacts on Candida albicans virulence. PLoS One, 2021, vol. 16, no. 6: e0252555. doi: 10.1371/journal.pone.0252555
- Morio F., Pagniez F., Besse M., Oise Gay-Andrieu F., Miegeville M., Le Pape P. Deciphering azole resistance mechanisms with a focus on transcription factor-encoding genes TAC1, MRR1 and UPC2 in a set of fluconazole-resistant clinical isolates of Candida albicans. Int. J. Antimicrob. Agents, 2013, vol. 42, pp. 410–415. doi: 10.1016/j.ijantimicag.2013.07.013.
- Morschhäuser J. Regulation of multidrug resistance in pathogenic fungi. Fungal Genet. Biol., 2010, vol. 47, no. 2, pp. 94–106. doi: 10.1016/j.fgb.2009.08.002
- Moye-Rowley W.S. Linkage between genes involved in azole resistance and ergosterol biosynthesis. PLoS Pathog., 2020, vol. 16, no. 9: e1008819. doi: 10.1371/journal.ppat.1008819
- Niimi M., Niimi K., Tanabe K., Cannon R.D., Lamping E. Inhibitor resistant mutants give important insights into Candida albicans ABC transporter Cdr1 substrate specificity and help elucidate efflux pump inhibition. Antimicrob. Agents Chemother., 2022, vol. 66, no. 1: e0174821. doi: 10.1128/AAC.01748-21
- Oliveira J.M.V., Oliver J.C., Dias A.L.T., Padovan A.C.B., Caixeta E.S., Ariosa M.C.F. Detection of ERG11 Overexpression in Candida albicans isolates from environmental sources and clinical isolates treated with inhibitory and subinhibitory concentrations of fluconazole. Mycoses, 2021, vol. 64, no. 2, pp. 220–227 doi: 10.1111/myc.13208
- Orlandini R.K., Bepu D.A.N., Saraiva M.D.C.P., Bollela V.R., Motta A.C.F., Lourenço A.G. Are Candida albicans isolates from the oral cavity of HIV-infected patients more virulent than from non-HIV-infected patients? Systematic review and meta-analysis. Microbial Pathogenesis, 2020, vol. 149: 104477. doi: 10.1016/j.micpath.2020.104477
- Pankhurst C.L. Candidiasis (oropharyngeal). BMJ Clin. Evid., 2013, vol. 2013: 1304.
- Paul S., Moye-Rowley W.S. Multidrug resistance in fungi: regulation of transporter-encoding gene expression. Front. Physiol. Frontiers, 2014, vol. 5: 143. doi: 10.3389/fphys.2014.00143
- Perea S., López-Ribot J.L., Kirkpatrick W.R., McAtee R.K., Santillán R.A., Martínez M., Calabrese D., Sanglard D., Patterson T.F. Prevalence of molecular mechanisms of resistance to azole antifungal agents in candida albicans strains displaying high-level fluconazole resistance isolated from human immunodeficiency virus-infected patients. Antimicrob. Agents Chemother., 2001, vol. 45, no. 10, pp. 2676–2684. doi: 10.1128/AAC.45.10.2676-2684.2001
- Perlin D.S., Rautemaa-Richardson R., Alastruey-Izquierdo A. The global problem of antifungal resistance: prevalence, mechanisms, and management. Lancet Infect. Dis., 2017, vol. 17, no. 12, pp. e383–e392. doi: 10.1016/S1473-3099(17)30316-X
- Pfaller M.A., Carvalhaes C.G., DeVries S., Huband M.D., Castanheira M. Elderly versus nonelderly patients with invasive fungal infections: species distribution and antifungal resistance, SENTRY antifungal surveillance program 2017–2019. Diagn. Microbiol. Infect. Dis., 2022, vol. 102, no. 4: 115627. doi: 10.1016/j.diagmicrobio.2021.115627
- Rajadurai S.G., Maharajan M.K., Veettil S.K., Gopinath D. Comparative efficacy and safety of antifungal agents in the prophylaxis of oropharyngeal candidiasis among HIV-infected adults: a systematic review and network meta-analysis. Life (Basel), 2022, vol. 12, no. 4: 515. doi: 10.3390/life12040515
- Redhu A.K., Shah A.H., Prasad R. MFS transporters of Candida species and their role in clinical drug resistance. FEMS Yeast Res., 2016, vol. 16, no. 4: fow043 doi: 10.1093/femsyr/fow043
- Robbins N., Caplan T., Cowen L.E. Molecular evolution of antifungal drug resistance. Annu. Rev. Microbiol., 2017, vol. 71, no. 1, pp. 753–775. doi: 10.1146/annurev-micro-030117-020345
- Sah S.K., Hayes J.J., Rustchenko E. The role of aneuploidy in the emergence of echinocandin resistance in human fungal pathogen Candida albicans. PLoS Pathog., 2021, vol. 17, no. 5: e1009564. doi: 10.1371/journal.ppat.1009564
- Sanglard D., Coste A., Ferrari S. Antifungal drug resistance mechanisms in fungal pathogens from the perspective of transcriptional gene regulation. FEMS Yeast Res., 2009, vol. 9, no. 7, pp. 1029–1050. doi: 10.1111/j.1567-1364.2009.00578.x
- Sanguinetti M., Posteraro B., Lass-Flörl C. Antifungal drug resistance among Candida species: mechanisms and clinical impact. Mycoses, 2015, vol. 58, suppl. 2, pp. 2–13. doi: 10.1111/myc.12330
- Shi C., Liu J., Li W., Zhao Y., Meng L., Xiang M. Expression of fluconazole resistance-associated genes in biofilm from 23 clinical isolates of Candida albicans. Braz. J. Microbiol., 2019, vol. 50, no. 1, pp. 157–163. doi: 10.1007/s42770-018-0009-2
- Teo J.Q.-M., Lee S.J.-Y., Tan A.-L., Lim R.S.-M., Cai Y., Lim T.-P., Kwa A.L.-H. Molecular mechanisms of azole resistance in Candida bloodstream isolates. BMC Infect Dis., 2019, vol. 19, no. 1: 63. doi: 10.1186/s12879-019-3672-5
- Wakade R.S., Ristow L.C., Stamnes M.A., Kumar A., Krysan D.J. The Ndr/LATS kinase Cbk1 regulates a specific subset of Ace2 functions and suppresses the hypha-to-yeast transition in Candida albicans. mBio, 2020, vol. 11, no. 4: e01900-20. doi: 10.1128/mBio.01900-20
- Zhang J., Li L., Lv Q., Yan L., Wang Y., Jiang Y. The fungal CYP51s: their functions, structures, related drug resistance, and inhibitors. Front. Microbiol., 2019, vol. 10: 691. doi: 10.3389/fmicb.2019.00691
