Молекулярная характеристика генов PGA типа A–D среди полирезистентных штаммов Acinetobacter baumannii
- Авторы: Суприта М.1, Канника Парамешвар К.1, Смилине Гириджа А.1, Виджаяшри Приядхарсини Д.1
-
Учреждения:
- Институт медицинских и технических наук Савита
- Выпуск: Том 15, № 3 (2025)
- Страницы: 536-542
- Раздел: ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ
- URL: https://bakhtiniada.ru/2220-7619/article/view/315134
- DOI: https://doi.org/10.15789/2220-7619-MCO-17785
- ID: 315134
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Целью настоящего исследования было изучение в клинических условиях распространенности Acinetobacter baumannii, его устойчивости к противомикробным препаратам и способности к образованию биопленки у пациентов с ИВЛ-ассоциированной пневмонией (ИАП), основанное на исследовании локуса гена pgaABCD, ответственного за образование биопленки. Всего за 5 месяцев было собрано 53 изолята от пациентов, страдающих пневмонией и инфекциями нижних дыхательных путей. Изоляты были идентифицированы, а их профили лекарственной устойчивости были оценены с помощью автоматизированной системы VITEK. Способность к образованию биопленки была оценена с помощью теста с кристаллическим фиолетовым. Наличие гена pgaABCD было подтверждено с помощью ПЦР, а последовательности гена были проанализированы для оценки его распространенности и мутаций. Среди 53 клинических образцов в 29 изолятах (54,7%) было подтверждено наличие A. baumannii. Образование биопленки разной выраженности было обнаружено в 62,1% изолятах. Все 29 изолятов (100%) A. baumannii кодировали как гены pgaA, так и pgaD, тогда как гены pgaB и pgaC обнаружены в 93,10 и 89,66% изолятов соответственно. Среди клинических изолятов преобладали штаммы с множественной лекарственной устойчивостью (МЛУ) с высокой способностью к образованию биопленки. Секвенирование генов pgaABCD выявило мутации, способствующие различным типам образования биопленки. Настоящее исследование подчеркивает тесную связь между локусом pgaABCD и образованием биопленки в штаммах A. baumannii с МЛУ. Высокая распространенность изолятов, образующих биопленку, подчеркивает трудности в лечении инфекций, вызванных A. baumannii, особенно у пациентов с ИАП. Полученные результаты подчеркивают необходимость разработки стратегий терапии, воздействующей на биопленку, для улучшения результатов лечения пациентов в медицинских учреждениях.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
М. С. Суприта
Институт медицинских и технических наук Савита
Email: 152201022.sdc@saveetha.com
бакалавр стоматологической хирургии, кафедра микробиологии, стоматологический колледж и больница Савита
Индия, Ченнай, Тамил НадуК. Канника Парамешвар
Институт медицинских и технических наук Савита
Email: kannikakannan03@gmail.com
аспирант, кафедра микробиологии, стоматологический колледж и больницы Савита
Индия, Ченнай, Тамил НадуА. С. Смилине Гириджа
Институт медицинских и технических наук Савита
Автор, ответственный за переписку.
Email: smilinejames25@gmail.com
профессор кафедры микробиологии, стоматологический колледж и больница Савита
Индия, Ченнай, Тамил НадуДж. Виджаяшри Приядхарсини
Институт медицинских и технических наук Савита
Email: vijipriya26@gmail.com
доцент кафедры микробиологии, стоматологический колледж и больница Савита
Индия, Ченнай, Тамил НадуСписок литературы
- Badave G.K., Kulkarni D. Biofilm Producing Multidrug Resistant Acinetobacter baumannii: An Emerging Challenge. J. Clin. Diagn. Res., 2015, vol. 9, no. 1, pp. DC08–DC10. doi: 10.7860/JCDR/2015/11014.5398
- Bardbari A.M., Arabestani M.R., Karami M., Keramat F., Alikhani M.Y., Bagheri K.P. Correlation between ability of biofilm formation with their responsible genes and MDR patterns in clinical and environmental Acinetobacter baumannii isolates. Microb. Pathog., 2017, vol. 108, pp. 122–128. doi: 10.1016/j.micpath.2017.04.039
- Barenfanger J., Drake C., Kacich G. Clinical and financial benefits of rapid bacterial identification and antimicrobial susceptibility testing. J. Clin. Microbiol., 1999, vol. 37, no. 5, pp. 1415–1418. doi: 10.1128/JCM.37.5.1415-1418.1999
- Bassetti M., Welte T., Wunderink R.G. Treatment of Gram-negative pneumonia in the critical care setting: is the beta-lactam antibiotic backbone broken beyond repair? Crit. Care, 2016, vol. 20, no. 19: 19. doi: 10.1186/s13054-016-1197-5
- Boehm A., Steiner S., Zaehringer F., Casanova A., Hamburger F., Ritz D., Keck W., Ackermann M., Schirmer T., Jenal U. Second messenger signalling governs Escherichia coli biofilm induction upon ribosomal stress. Mol. Microbiol., 2009, vol. 72, no. 6, pp. 1500–1516. doi: 10.1111/j.1365-2958.2009.06739.x
- Chang H.C., Chen Y.C., Lin M.C., Liu S.F., Chung Y.H., Su M.C., Fang W.F., Tseng C.C., Lie C.H., Huang K.T., Wang C.C. Mortality risk factors in patients with Acinetobacter baumannii ventilator-associated pneumonia. J. Formos. Med. Assoc., 2011, vol. 110, no. 9, pp. 564–571. doi: 10.1016/j.jfma.2011.07.004
- Choi A.H., Slamti L., Avci F.Y., Pier G.B., Maira-Litrán T. The pgaABCD locus of Acinetobacter baumannii encodes the production of poly-beta-1-6-N-acetylglucosamine, which is critical for biofilm formation. J. Bacteriol., 2009, vol. 191, no. 19, pp. 5953–5963. doi: 10.1128/JB.00647-09
- El-Saed A., Balkhy H.H., Al-Dorzi H.M., Khan R., Rishu A.H., Arabi Y.M. Acinetobacter is the most common pathogen associated with late-onset and recurrent ventilator-associated pneumonia in an adult intensive care unit in Saudi Arabia. Int. J. Infect. Dis., 2013, vol. 17, no. 9, pp. e696–e701. doi: 10.1016/j.ijid.2013.02.004
- Ganesh P.S., Naji Naseef P., Muthusamy R., Sankar S., Gopal R.K., Shankar E.M. Acinetobacter baumannii Virulence Factors and Biofilm Components: Synthesis, Structure, Function, and Inhibitors. In: ESKAPE Pathogens. Detection, Mechanisms and Treatment Strategies. Eds: S. Busi, R. Prasad. Singapore: Springer Nature Singapore Pte Ltd., 2024, pp. 297–315. doi: 10.1007/978-981-99-8799-3_10
- Garnacho-Montero J., Amaya-Villar R. Multiresistant Acinetobacter baumannii infections: epidemiology and management. Curr. Opin. Infect. Dis., 2010, vol. 23, no. 4, pp. 332–339. doi: 10.1097/QCO.0b013e32833ae38b
- Girija As.S., Priyadharsini J.V., Paramasivam A. Prevalence of Acb and non-Acb complex in elderly population with urinary tract infection (UTI). Acta Clin. Belg., 2021, vol. 76, no. 2, pp. 106–112. doi: 10.1080/17843286.2019.1669274
- Girija As.S., Priyadharsini J.V. CLSI based antibiogram profile and the detection of MDR and XDR strains of Acinetobacter baumannii isolated from urine samples. Med. J. Islam. Repub. Iran., 2019, vol. 33: 3. doi: 10.34171/mjiri.33.3
- Girija A.S.S. Acinetobacter baumannii as an oro-dental pathogen: a red alert!! J. Appl. Oral Sci., 2024, vol. 32: e20230382. doi: 10.1590/1678-7757-2023-0382
- Huang Y., Zhou Q., Wang W., Huang Q., Liao J., Li J., Long L., Ju T., Zhang Q., Wang H., Xu H., Tu M. Acinetobacter baumannii Ventilator-Associated Pneumonia: Clinical Efficacy of Combined Antimicrobial Therapy and in vitro Drug Sensitivity Test Results. Front. Pharmacol., 2019, vol. 10: 92. doi: 10.3389/fphar.2019.00092
- Ibrahim M.E. Prevalence of Acinetobacter baumannii in Saudi Arabia: risk factors, antimicrobial resistance patterns and mechanisms of carbapenem resistance. Ann. Clin. Microbiol. Antimicrob., 2019, vol. 18: 1. doi: 10.1186/s12941-018-0301-x
- Itoh Y., Rice J.D., Goller C., Pannuri A., Taylor J., Meisner J., Beveridge T.J., Preston J.F. 3rd, Romeo T. Roles of pgaABCD genes in synthesis, modification, and export of the Escherichia coli biofilm adhesin poly-beta-1,6-N-acetyl-D-glucosamine. J. Bacteriol., 2008, vol. 190, no. 10, pp. 3670–3680. doi: 10.1128/JB.01920-07
- Kannan K.P., Smiline Girija A.S. Anticandidal effect of cinnamic acid characterized from Cinnamomum cassia bark against the fluconazole resistant strains of Candida. Braz. J. Microbiol., 2024, vol. 3, pp. 189–234. doi: 10.1007/s42770-024-01469-w
- Khanna N., Girija A.S.S., Priyadharsini J.V. Detection of the early putative biofilm marker pgaB among the MDR strains of A. baumannii. Heliyon, 2024, vol. 10, no. 5: e27020. doi: 10.1016/j.heliyon.2024.e27020
- Kropec A., Maira-Litran T., Jefferson K.K., Grout M., Cramton S.E., Götz F., Goldmann D.A., Pier G.B. Poly-N-acetylglucosamine production in Staphylococcus aureus is essential for virulence in murine models of systemic infection. Infect. Immun., 2005, vol. 73, no. 10, pp. 6868–6876. doi: 10.1128/IAI.73.10.6868-6876.2005
- Lee C.R., Lee J.H., Park M., Park K.S., Bae I.K., Kim Y.B., Cha C.J., Jeong B.C., Lee S.H. Biology of Acinetobacter baumannii: Pathogenesis, Antibiotic Resistance Mechanisms, and Prospective Treatment Options. Front. Cell. Infect. Microbiol., 2017, vol. 7: 55. doi: 10.3389/fcimb.2017.00055
- Li Y.J., Pan C.Z., Fang C.Q., Zhao Z.X., Chen H.L., Guo P.H., Zhao Z.W. Pneumonia caused by extensive drug-resistant Acinetobacter baumannii among hospitalized patients: genetic relationships, risk factors and mortality. BMC Infect. Dis., 2017, vol. 17, no. 1: 371. doi: 10.1186/s12879-017-2471-0
- Naseef Pathoor N., Viswanathan A., Wadhwa G., Ganesh P.S. Understanding the biofilm development of Acinetobacter baumannii and novel strategies to combat infection. APMIS, 2024, vol. 132, no. 5, pp. 317–335. doi: 10.1111/apm.13399
- Nhu N.T.K., Lan N.P.H., Campbell J.I., Parry C.M., Thompson C., Tuyen H.T., Hoang N.V.M., Tam P.T.T., Le V.M., Nga T.V.T., Nhu T.D.H., Van Minh P., Nga N.T.T., Thuy C.T., Dung L.T., Yen N.T.T., Van Hao N., Loan H.T., Yen L.M., Nghia H.D.T., Hien T.T., Thwaites L., Thwaites G., Chau N.V.V., Baker S. Emergence of carbapenem-resistant Acinetobacter baumannii as the major cause of ventilator-associated pneumonia in intensive care unit patients at an infectious disease hospital in southern Vietnam. J. Med. Microbiol., 2014, vol. 63, no. 10, pp. 1386–1394. doi: 10.1099/jmm.0.076646-0
- Rello J., Lipman J. Antibiotic prescription for respiratory tract infections in ventilated patients: where are we heading? Intensive Care Med., 2013, vol. 39, no. 9, pp. 1644–1646. doi: 10.1007/s00134-013-2983-z
- Rosenthal V.D., Maki D.G., Jamulitrat S., Medeiros E.A., Todi S.K., Gomez D.Y., Leblebicioglu H., Abu Khader I., Miranda Novales M.G., Berba R., Ramírez Wong F.M., Barkat A., Pino O.R., Dueñas L., Mitrev Z., Bijie H., Gurskis V., Kanj S.S., Mapp T., Hidalgo R.F., Ben Jaballah N., Raka L., Gikas A., Ahmed A., Thu le T.A., Guzmán Siritt M.E.; INICC Members. International Nosocomial Infection Control Consortium (INICC) report, data summary for 2003–2008, issued June 2009. Am. J. Infect. Control, 2010, vol. 38, no. 2, pp. 95–104.e2. doi: 10.1016/j.ajic.2009.12.004
- Shelenkov A., Akimkin V., Mikhaylova Y. International Clones of High Risk of Acinetobacter Baumannii-Definitions, History, Properties and Perspectives. Microorganisms, 2023, vol. 11, no. 8: 2115. doi: 10.3390/microorganisms11082115
- Sherif M.M., Elkhatib W.F., Khalaf W.S., Elleboudy N.S., Abdelaziz N.A. Multidrug Resistant Acinetobacter baumannii Biofilms: Evaluation of Phenotypic-Genotypic Association and Susceptibility to Cinnamic and Gallic Acids. Front. Microbiol., 2021, vol. 12: 716627. doi: 10.3389/fmicb.2021.716627
- Suvaithenamudhan S., Ananth S., Mariappan V., Dhayabaran V.V., Parthasarathy S., Ganesh P.S., Shankar E.M. In Silico Evaluation of Bioactive Compounds of Artemisia pallens Targeting the Efflux Protein of Multidrug-Resistant Acinetobacter baumannii (LAC-4 Strain). Molecules, 2022, vol. 27, no. 16: 5188. doi: 10.3390/molecules27165188
- Talbot G.H., Bradley J., Edwards J.E. Jr., Gilbert D., Scheld M., Bartlett J.G.; Antimicrobial Availability Task Force of the Infectious Diseases Society of America. Bad bugs need drugs: an update on the development pipeline from the Antimicrobial Availability Task Force of the Infectious Diseases Society of America. Clin. Infect. Dis., 2006, vol. 42, no. 5, pp. 657–668. doi: 10.1086/499819
- Towner K.J. Acinetobacter: an old friend, but a new enemy. J. Hosp. Infect., 2009, vol. 73, no. 4, pp. 355–363. doi: 10.1016/j.jhin.2009.03.032
- Yang C.H., Su P.W., Moi S.H., Chuang L.Y. Biofilm Formation in Acinetobacter Baumannii: Genotype-Phenotype Correlation. Molecules, 2019, vol. 24, no. 10: 1849. doi: 10.3390/molecules24101849
- Yang J., Toyofuku M., Sakai R., Nomura N. Influence of the alginate production on cell-to-cell communication in Pseudomonas aeruginosa PAO1. Environ. Microbiol. Rep., 2017, vol. 9, no. 3, pp. 239–249. doi: 10.1111/1758-2229.12521
Дополнительные файлы
