Биобанк ФГБУ «НМИЦ онкологии» Минздрава России как ресурс для проведения исследований в области персонифицированной медицины
- Авторы: Кит О.И.1, Тимофеева С.В.2, Ситковская А.О.1, Новикова И.А.1, Колесников Е.Н.1
-
Учреждения:
- ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии» Минздрава России
- ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии» Министерства Здравоохранения Российской Федерации
- Выпуск: Том 24, № 1 (2022)
- Страницы: 6-11
- Раздел: КЛИНИЧЕСКАЯ ОНКОЛОГИЯ
- URL: https://bakhtiniada.ru/1815-1434/article/view/89517
- DOI: https://doi.org/10.26442/18151434.2022.1.201384
- ID: 89517
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Биобанки представляют собой платформу для инновационных биомедицинских исследований в области трансляционной и персонифицированной медицины. Важным аспектом для проведения широкомасштабных исследований в области геномики, транскриптомики, протеомики является наличие выборки задокументированных образцов высокой разрешающей способности. Биобанки решают проблему формирования групп пациентов различных нозологий в пределах интересующей популяции и предоставляют клиническую и лабораторную информацию по каждому образцу. Цель данной статьи – описать работу биобанка ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии» Минздрава России в рамках существующих проектов и собранных коллекций. В обзоре рассмотрены основные этапы систематизированной работы биобанка, описаны методы пробоподготовки различных типов биологического материала, а также приведена статистика собранных коллекций. На сегодняшний день преобладающая часть депозитария состоит из образцов тканей пациентов с диагнозами злокачественных новообразований толстой кишки – 24% и желудка – 23% от общего количества образцов тканей, в то время как количество образцов тканей рака поджелудочной железы составляет 10%, а рака пищевода и рака молочной железы – по 22%. Помимо образцов тканей в биобанке ФГБУ «НМИЦ онкологии» хранятся 24 клеточные линии человеческого происхождения и коллекция из 200 образцов микробиоты, из них 100 – от пациентов с диагнозом рак легкого и 100 – от условно здоровых доноров. В настоящее время на биоматериале из собранных коллекций биобанка выполнены исследования по поиску прогностических биомаркеров и потенциальных мишеней для таргетной терапии методом высокопроизводительного секвенирования у пациентов с диагностированным раком поджелудочной железы и раком мозга. Таким образом, коллекции играют важную роль для исследований в области персонифицированной медицины, обеспечивая раннюю диагностику и эффективные методы лечения каждому пациенту.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Олег Иванович Кит
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии» Минздрава России
Автор, ответственный за переписку.
Email: onko-sekretar@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-3061-6108
д-р мед. наук, проф., чл.-кор. РАН, ген. дир.
Россия, Ростов-на-ДонуСофья Владимировна Тимофеева
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии» Министерства Здравоохранения Российской Федерации
Email: timofeeva.sophia@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-5945-5961
Научный сотрудник лаборатории клеточных технологий
Россия, Ростов-на-ДонуАнастасия Олеговна Ситковская
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии» Минздрава России
Email: grankina.anastasia@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-6035-1756
зав. лаб. клеточных технологий
Россия, Ростов-на-ДонуИнна Арнольдовна Новикова
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии» Минздрава России
Email: novikovainna@yahoo.com
ORCID iD: 0000-0002-6496-9641
канд. мед. наук, зам. ген. дир. по науке
Россия, Ростов-на-ДонуЕвгений Николаевич Колесников
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии» Минздрава России
Email: lkt-rnioi@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-8436-7250
канд. мед. наук, зав. отд-нием абдоминальной онкологии № 1 с группой рентгенэндоваскулярных методов диагностики и лечения
Россия, Ростов-на-ДонуСписок литературы
- Smittenaar CR, Petersen KA, Stewart K, Moitt N. Cancer incidence and mortality projections in the UK until 2035. Br J Cancer. 2016;115(9):1147-155.doi: 10.1038/bjc.2016.304
- Swede H, Stone CL, Norwood AR. National population-based biobanks for genetic research. Genet Med. 2007;9(3):141-9. doi: 10.1097/gim.0b013e3180330039
- Goetz LH, Schork NJ. Personalized medicine: motivation, challenges, and progress. Fertil Steril. 2018;109(6):952-63. doi: 10.1016/j.fertnstert.2018.05.006
- Драпкина О.М. Российская «Национальная ассоциация биобанков и специалистов по биобанкированию» – инструмент интеграции российских биобанков и повышения эффективности биомедицинских исследований. Кардиоваскулярная терапия и профилактика. 2020;19(6):2757 [Drapkina OM. Russian National Association of Biobanks and Biobanking Specialists – a tool for integrating Russian biobanks and increasing the efficiency of biomedical research. Cardiovascular Therapy and Prevention. 2020;19(6):2757 (in Russian)]. doi: 10.15829/1728-8800-2020-2757
- Braun KL, Tsark JU, Powers A, et al. Cancer patient perceptions about biobanking and preferred timing of consent. Biopreserv Biobank. 2014;12(2):106-12. doi: 10.1089/bio.2013.0083
- Patil S, Majumdar B, Awan KH, et al. Cancer oriented biobanks: A comprehensive review. Oncol Rev. 2018;12(1):357. doi: 10.4081/oncol.2018.357
- Coppola L, Cianflone A, Grimaldi AM, et al. Biobanking in health care: evolution and future directions. J Transl Med. 2019;17(1):172. doi: 10.1186/s12967-019-1922-3
- Liu A, Pollard K. Biobanking for Personalized Medicine. Adv Exp Med Biol. 2015;864:55-68. doi: 10.1007/978-3-319-20579-3_5
- Самохина И.В., Сагакянц А.Б. Работа в условиях пандемии COVID-19 – опыт биобанка ФГБУ «НМИЦ онкологии» Минздрава России. Кардиоваскулярная терапия и профилактика. 2020;19(6):2741 [Samokhina IV, Sagakyants AB. Work within the COVID-19 pandemic – the experience of the biobank of the National Medical Research Center of Oncology. Cardiovascular Therapy and Prevention. 2020;19(6):2741 (in Russian)]. doi: 10.15829/1728-8800-2020-2741
- Kotikalapudi R, Patel RK. Comparative study of the influence of EDTA and sodium heparin on long term storage of cattle DNA. Cell J. 2015;17(1):181-6. doi: 10.22074/cellj.2015.526
- Sidstedt M, Hedman J, Romsos EL, et al. Inhibition mechanisms of hemoglobin, immunoglobulin G, and whole blood in digital and real-time PCR. Anal Bioanal Chem. 2018;410(10):2569-83. doi: 10.1007/s00216-018-0931-z
- UK Biobank,2007. Protocol for A Large-Scale Prospective Epidemiological Resource. UK Biobank Coordinating Centre; Stockport, UK: Protocol No: UKBB-PROT-09-06 (Main Phase).
- Nagai A, Hirata M, Kamatani Y, et al. Overview of the BioBank Japan Project: Study design and profile. J Epidemiol. 2017;27(3S):S2-8. doi: 10.1016/j.je.2016.12.005
- Victorian Cancer Biobank,2020. Available at: https://viccancerbiobank.org.au/ Accessed: 30.10.2021.
- Canadian Tissue Repository Network,2020. Available at: https://www.ctrnet.ca/ Accessed: 30.10.2021.
- Terveer EM, van Beurden YH, Goorhuis A, et al. How to: Establish and run a stool bank. Clin Microbiol Infect. 2017;23(12):924-30. doi: 10.1016/j.cmi.2017.05.015
- Pel J, Leung A, Choi WWY, et al. Rapid and highly-specific generation of targeted DNA sequencing libraries enabled by linking capture probes with universal primers. PLoS One. 2018;13(12):e0208283. doi: 10.1371/journal.pone.0208283
- Woo PC, Lau SK, Teng JL, et al. Then and now: use of 16S rDNA gene sequencing for bacterial identification and discovery of novel bacteria in clinical microbiology laboratories. Clin Microbiol Infect. 2008;14(10):908-34.doi: 10.1111/j.1469-0691.2008.02070.x
- Thomas T, Gilbert J, Meyer F. Metagenomics – a guide from sampling to data analysis. Microb Inform Exp. 2012;2(1):3. doi: 10.1186/2042-5783-2-3
- Salter SJ, Cox MJ, Turek EM, et al. Reagent and laboratory contamination can critically impact sequence-based microbiome analyses. BMC Biol. 2014;12:87. doi: 10.1186/s12915-014-0087-z
- Cuthbertson L, Rogers GB, Walker AW, et al. Time between collection and storage significantly influences bacterial sequence composition in sputum samples from cystic fibrosis respiratory infections. J Clin Microbiol. 2014;52(8):3011-6. doi: 10.1128/JCM.00764-14
- Choo JM, Leong LE, Rogers GB. Sample storage conditions significantly influence faecal microbiome profiles. Sci Rep. 2015;5:16350. doi: 10.1038/srep16350
- Smirnova DV, Zalomova LV, Zagainova AV, et al. Cryopreservation of the human gut microbiota: Current state and perspectives. Int J Med Microbiol. 2019;309(5):259-69. doi: 10.1016/j.ijmm.2019.06.001
- Межевова И.В., Ситковская А.О., Кит О.И. Первичные культуры опухолевых клеток: современные методы получения и поддержания in vitro. Южно-российский онкологический журнал. 2020;1(3):36-49 [Mezhevova IV, Sitkovskaya AO, Kit OI. Primary tumor cell cultures: сurrent methods of obtaining and subcultivation. South Russian Journal of Cancer. 2020;1(3):36-49 (in Russian)]. doi: 10.37748/2687-0533-2020-1-3-4
- Шамова Т.В., Ситковская А.О., Росторгуев Э.Е., и др. Получение первичных клеточных линий глиальных опухолей. Пермский медицинский журнал. 2020;37(5):79-89 [Shamova TV, Sitkovskaya AO, Rostorguev EE, et al. Preparation of primary glial tumor cell lines. Permskii meditsinskii zhurnal. 2020;37(5):79-89 (in Russian)]. doi: 10.17816/pmj37579%89
- Кит О.И., Гвалдин Д.Ю., Трифанов В.С., и др. Молекулярно-генетические особенности нейроэндокринных опухолей поджелудочной железы. Генетика. 2020;56(1):142-60 [Kit OI, Gvaldin DY, Trifanov VS, et al. Molecular-genetic features of pancreatic neuroendocrine tumors. Russian Journal of Genetics. 2020;56(1):142-60 (in Russian)]. doi: 10.31857/S001667582002006X
- Кит О.И., Пушкин А.А., Росторгуев Э.Е., и др. Дифференциальная экспрессия 15-ти генов в глиальных опухолях различной степени злокачественности. Современные проблемы науки и образования. 2019;5:230 [Pushkin AA, Timoshkina NN, Rostorguev EЕ, et al. Expression status of 15th genes in glial tumors of the brain. Sovremennye problemy nauki i obrazovaniya. 2019;5:230 (in Russian)].
Дополнительные файлы
