Внутриклеточный уровень HIF-1α — информативный показатель отложенного влияния COVID-19 на метаболизм лимфоцитов периферической крови
- Авторы: Зубаткина О.В.1, Добродеева Л.К.1, Круглов С.Д.1
-
Учреждения:
- Федеральный исследовательский центр комплексного изучения Арктики имени академика Н.П. Лавёрова
- Выпуск: Том 30, № 4 (2023)
- Страницы: 313-320
- Раздел: ОРИГИНАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
- URL: https://bakhtiniada.ru/1728-0869/article/view/254625
- DOI: https://doi.org/10.17816/humeco409527
- ID: 254625
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Обоснование. Инфекция COVID-19 вызывает метаболические изменения, которые играют решающую роль как в репликации SARS-CoV-2, так и в регуляции иммунного ответа. HIF-1α — один из эффекторов пути передачи сигнала PI3K/Akt/mTOR — способствует перепрограммированию метаболизма через усиление аэробного гликолиза.
Цель. Установить информативность внутриклеточного уровня HIF-1α как показателя изменений метаболизма лимфоцитов периферической крови после перенесённой инфекции COVID-19.
Материал и методы. Обследовано 59 волонтёров, из них 38 человек не имели в анамнезе COVID-19 и 21 — перенесли заболевание за 2–8 мес до начала обследования. В сыворотке крови устанавливали наличие антител класса IgG к SARS-CoV-2. В цельной крови измеряли абсолютное содержание лимфоцитов, в лизате лимфоцитов определяли концентрацию HIF-1α методом иммуноферментного анализа. Статистическую обработку полученных данных проводили с применением пакета программного обеспечения IBM SPSS v. 26. Вычисляли средние значения (М), стандартное отклонение (SD). Нормальность распределения оценивали по критерию Колмогорова–Смирнова, для сравнения средних использовали t-критерий Стьюдента, уровень статистической значимости принимали равным p <0,05. Проводили ROC-анализ с построением характеристической кривой для классификатора HIF-1α.
Результаты. Установлено, что содержание HIF-1α в лимфоцитах периферической крови у переболевших инфекцией COVID-19 по сравнению с неболевшими статистически значимо ниже и остаётся таковым на протяжении 5 мес после заболевания. Модель с классификатором HIF-1α имеет высокую прогностическую силу в отношении вероятности изменений метаболизма лимфоцитов после перенесённой инфекции COVID-19. Оптимальному порогу отсечения соответствует внутриклеточное содержание HIF-1α, равное 1,25 нг/106 кл.
Заключение. Внутриклеточный уровень HIF-1α можно использовать для оценки вероятности отложенного влияния COVID-19 на метаболизм лимфоцитов периферической крови и мониторинга метаболических изменений.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Ольга Владимировна Зубаткина
Федеральный исследовательский центр комплексного изучения Арктики имени академика Н.П. Лавёрова
Автор, ответственный за переписку.
Email: ozbiochem@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-5039-2220
SPIN-код: 1581-5178
д.б.н., профессор, старший научный сотрудник
Россия, 163000, Архангельск, проспект Ломоносова, д. 249Лилия Константиновна Добродеева
Федеральный исследовательский центр комплексного изучения Арктики имени академика Н.П. Лавёрова
Email: dobrodeevalk@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-5080-6502
SPIN-код: 4518-6925
д.м.н., профессор
Россия, АрхангельскСергей Дмитриевич Круглов
Федеральный исследовательский центр комплексного изучения Арктики имени академика Н.П. Лавёрова
Email: stees67@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-4085-409X
SPIN-код: 2532-9912
Россия, Архангельск
Список литературы
- Sharma A., Ahmad Farouk I., Lal S.K. COVID-19: a review on the novel coronavirus disease evolution, transmission, detection, control and prevention // Viruses. 2021. Vol. 13, N 2. P. 202. doi: 10.3390/v13020202
- Asselah T., Durantel D., Pasmant E., et al. COVID-19: discovery, diagnostics and drug development // J Hepatol. 2021. Vol. 74, N 1. P. 168–184. doi: 10.1016/j.jhep.2020.09.031
- Almas T., Malik J., Alsubai A.K., et al. Post-acute COVID-19 syndrome and its prolonged effects: an updated systematic review // Ann Med Surg (Lond). 2022. Vol. 80. P. 103995. doi: 10.1016/j.amsu.2022.103995
- Mayer K.A., Stöckl J., Zlabinger G.J., et al. Hijacking the supplies: metabolism as a novel facet of virus-host interaction // Front Immunol. 2019. Vol. 10. P. 1533. doi: 10.3389/fimmu.2019.01533
- Appelberg S., Gupta S., Svensson Akusjärvi S., et al. Dysregulation in Akt/mTOR/HIF-1 signaling identified by proteo-transcriptomics of SARS-CoV-2 infected cells // Emerg Microbes Infect. 2020. Vol. 9, N 1. P. 1748–1760. doi: 10.1080/22221751.2020.1799723
- Тao J.H., Barbi J., Pan F. Hypoxia-inducible factors in T lymphocyte differentiation and function. A review in the theme: cellular responses to hypoxia // Am J Physiol Cell Physiol. 2015. Vol. 309, N 9. P. C580–C589. doi: 10.1152/ajpcell.00204.2015
- Dang E.V., Barbi J., Yang H.Y., et al. Control of T(H)17/T(reg) balance by hypoxia-inducible factor 1 // Cell. 2011. Vol. 146, N 5. P. 772–784. doi: 10.1016/j.cell.2011.07.033
- Loftus R.M., Finlay D.K. Immunometabolism: cellular metabolism turns immune regulator // J Biol Chem. 2016. Vol. 291, N 1. P. 1–10. doi: 10.1074/jbc.R115.693903
- Saravia J., Raynor J.L., Chapman N.M., et al. Signaling networks in immunometabolism // Cell Res. 2020. Vol. 30, N 4. P. 328–342. doi: 10.1038/s41422-020-0301-1
- Fattahi S., Khalifehzadeh-Esfahani Z., Mohammad-Rezaei M., et al. PI3K/Akt/mTOR pathway: a potential target for anti-SARS-CoV-2 therapy // Immunol Res. 2022. Vol. 70, N 3. P. 269–275. doi: 10.1007/s12026-022-09268-x
- Корнеенков А.А., Рязанцев С.В., Вяземская Е.Э. Вычисление и интерпретация показателей информативности диагностических медицинских технологий // Медицинский совет. 2019. № 20. С. 41–47. doi: 10.21518/2079-701X-2019-20-45-51
- Shen X.R., Geng R., Li Q., et al. ACE2-independent infection of T lymphocytes by SARS-CoV-2 // Signal Transduct Target Ther. 2022. Vol. 7, N 1. P. 83. doi: 10.1038/s41392-022-00919-x
- Helal M.A., Shouman S., Abdelwaly A., et al. Molecular basis of the potential interaction of SARS-CoV-2 spike protein to CD147 in COVID-19 associated-lymphopenia // J Biomol Struct Dyn. 2022. Vol. 40, N 3. P. 1109–1119. doi: 10.1080/07391102.2020.1822208
- Wang S., Qiu Z., Hou Y., et al. AXL is a candidate receptor for SARS-CoV-2 that promotes infection of pulmonary and bronchial epithelial cells // Cell Res. 2021. Vol. 31, N 2. P. 126–140. doi: 10.1038/s41422-020-00460-y
- So L., Lee J., Palafox M., et al. The 4E-BP-eIF4E axis promotes rapamycin-sensitive growth and proliferation in lymphocytes // Sci Signal. 2016. Vol. 9, N 430. P. ra57. doi: 10.1126/scisignal.aad8463
- Lionetto L., Ulivieri M., Capi M., et al. Increased kynurenine-to-tryptophan ratio in the serum of patients infected with SARS-CoV2: an observational cohort study // Biochim Biophys Acta Mol Basis Dis. 2021. Vol. 1867, N 3. P. 166042. doi: 10.1016/j.bbadis.2020.166042
- Rees C.A., Rostad C.A., Mantus G., et al. Altered amino acid profile in patients with SARS-CoV-2 infection // Proc Natl Acad Sci U S A. 2021. Vol. 118, N 25. P. e2101708118. doi: 10.1073/pnas.2101708118
- Tanner J.E., Alfieri C. The fatty acid lipid metabolism nexus in COVID-19 // Viruses. 2021. Vol. 13, N 1. P. 90. doi: 10.3390/v13010090
- Chapman N.M., Boothby M.R., Chi H. Metabolic coordination of T cell quiescence and activation // Nat Rev Immunol. 2020. Vol. 20, N 1. P. 55–70. doi: 10.1038/s41577-019-0203-y
- Jia H., Liu C., Li D., et al. Metabolomic analyses reveals new stage-specific features of the COVID-19 // Eur Respir J. 2021. Vol. 59, N 2. P. 2100284. doi: 10.1183/13993003.00284-2021
- Bojkova D., Klann K., Koch B., et al. Proteomics of SARS-CoV-2-infected host cells reveals therapy targets // Nature. 2020. Vol. 583, N 7816. P. 469–472. doi: 10.1038/s41586-020-2332-7
- Bharadwaj S., Singh M., Kirtipal N., et al. SARS-CoV-2 and glutamine: SARS-CoV-2 triggered pathogenesis metabolic reprograming of glutamine in host cells // Front Mol Biosci. 2020. Vol. 7. P. 627842. doi: 10.3389/fmolb.2020.627842
- Wang R., Dillon C.P., Shi L.Z., et al. The transcription factor Myc controls metabolic reprogramming upon T lymphocyte activation // Immunity. 2011. Vol. 35, N 6. P. 871–882. doi: 10.1016/j.immuni.2011.09.021
- Kierans S.J., Taylor C.T. Regulation of glycolysis by the hypoxia-inducible factor (HIF): implications for cellular physiology // J Physiol. 2021. Vol. 599, N 1. P. 23–37. doi: 10.1113/JP280572
- Coutaz M., Hurrell B.P., Auderset F., et al. Notch regulates Th17 differentiation and controls trafficking of IL-17 and metabolic regulators within Th17 cells in a context-dependent manner // Sci Rep. 2016. Vol. 6. P. 39117. doi: 10.1038/srep39117
- Zhao C., Chen J., Cheng L., et al. Deficiency of HIF-1alpha enhances influenza A virus replication by promoting autophagy in alveolar type II epithelial cells // Emerg Microbes Infect. 2020. Vol. 9, N 1. P. 691–706. doi: 10.1080/22221751.2020.1742585
- Shen T., Wang T. Metabolic reprogramming in COVID-19 // Int J Mol Sci. 2021. Vol. 22, N 21. P. 11475. doi: 10.3390/ijms222111475
- Koyasu S., Kobayashi M., Goto Y., et al. Regulatory mechanisms of hypoxia-inducible factor 1 activity: two decades of knowledge // Cancer Sci. 2018. Vol. 109, N 3. P. 560–571. doi: 10.1111/cas.13483
- Man K., Kallies A. Synchronizing transcriptional control of T cell metabolism and function // Nat Rev Immunol. 2015. Vol. 15, N 9. P. 574–584. doi: 10.1038/nri3874
- Gnanaprakasam J.N.R., Sherman J.W., Wang R. MYC and HIF in shaping immune response and immune metabolism // Cytokine Growth Factor Rev. 2017. Vol. 35. P. 63–67. doi: 10.1016/j.cytogfr.2017.03.004
Дополнительные файлы
