Эколого-диагностические аспекты мочеполового шистосомоза, как предракового заболевания (обзор литературы)


Цитировать

Полный текст

Аннотация

В статье освещены вопросы современного подхода при диагностике и лечении больных шистосомозом мочеполовых органов, распространенным паразитарным заболеванием. Результаты многочисленных исследований патогенеза, клинических проявлений и последующего развития мочеполового шистосомоза позволяют рассматривать этот паразитоз как фоновое предраковое состояние. С учетом высоких темпов современной миграции населения, увеличения ареала распространения шистосомоза и молодого возраста пациентов данное направление характеризуется высокой медико-социальной значимостью. Несмотря на развитие современной науки, вопросы диагностики этого заболевания актуальны. Сохраняется неразрешенной проблема верификации скрытых форм, а отсутствие эффективного скрининга затрудняет деятельность медицинской системы стран, расположенных на эндемичных территориях. Насущны вопросы раннего выявления рака мочевого пузыря, ассоциированного с мочеполовым шистосомозом, который проявляется у человека спустя десятилетия после первичного заражения. В статье приведен оригинальный обзор научных работ, выполненных за последние 30 лет и посвященных вопросам эпидемиологии мочеполового шистосомоза, а также специфическим особенностям клинической и лабораторной диагностики рака мочевого пузыря, обусловленного шистосомозом: от клинической симптоматики до высокоточных молекулярных исследований. Определены недостатки существующих методик исследования и намечены пути улучшения верификации мочеполового шистосомоза с учетом высокой канцерогенности возбудителя и роста медико-статистических показателей у больных раком мочевого пузыря среди жителей разных стран мира.

Об авторах

В Ю Старцев

Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет

Email: vlad_startsev@mail.ru
доктор медицинских наук, профессор кафедры онкологии с курсом лучевой диагностики и лучевой терапии ГБОУ ВПО «Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации 194100, г. Санкт-Петербург, ул. Литовская, д. 2

А Ю Колмаков

Клинический госпиталь

г. Лобиту, провинция Бенгела, Республика Ангола

Список литературы

  1. Бронштейн А.М., Малышев Н.А., Жаров С.Н. Острый мочеполовой шистосомоз у туриста, посетившего Уганду и Кению: описание случая и обзор литературы // Эпидемиология и инфекционные болезни. 2012. № 5. С. 47-50.
  2. Катаханова Л.Л., Савин В.А., Исаева Я.В., Болоцкая Т.Г. Случай мочеполового шистосомоза у ребенка 10 лет // Вестник Сургута. 2013. № 1 (15). С. 59-61.
  3. Лопаткин Н.А., Пугачев А.Г., Аполихин О.А. Урология. М.: ГЭОТАР-медиа, 2010. 520 с.
  4. Abdel-Halim R.E., Al-Mashad S., Al-Dabbagh A. Fluoroscopic assessment of bilharzial ureteropathy // Clin. Radiol. 1995. Vol. 31. Р 36-89.
  5. Abdel-Fattah M., Al-Sherbiny M., Osman A. et al. Improving the detection limit of quantitative diagnosis of anti-S. haematobium antibodies using Falcon Assay Screening Test (FAST) ELISA by developing a new standard curve // Parasitol. Res. 2011. Vol. 108. Р 1457-1463.
  6. Abdulamir A.S., Hafidh R.R., Kadhim H.S. et al. Tumor markers of bladder cancers: the schistosomal bladder tumors versus nonschistosomal bladder tumors // J. Exp. Clin. Cancer Res. 2009. Vol. 28. Р. 28-37.
  7. Al-Sherbiny M.M., Osman A.M., Hancock K. et al. Application of immunodiagnostic assays: detection of antibodies and circulating antigens in human schistosomiasis and correlation with clinical findings // Am. J. Trop. Med. Hyg. 1999. Vol. 60. P 960-966.
  8. Ayele B., Erko B., Legesse M. et al. Evaluation of circulating cathodic antigen (CCA) strip for diagnosis of urinary schistosomiasis in Hassoba school children, Afar, Ethiopia // Parasite. 2008. Vol. 15. P. 69-75.
  9. Aryeetey Y.A., Essien-Baidoo S., Larbi I. A. et al. Molecular diagnosis of Schistosoma infections in urine samples of school children in Ghana // Am. J. Trop. Med. Hyg. 2013. Vol. 88. P. 1028-1031.
  10. Baguley B., Barrett-Connor E., Beland F. et al. Biological agents: a review of human carcinogens // Eval. Carcinog. Risks Hum. 2012. Vol. 100. P. 1 - 14.
  11. Bichler K-H., Feil G., Zumbragel A. et al. S. Schistosomiasis: a critical review // Curr. Opin. Urol. 2001. Vol. 11. P. 97-101.
  12. Botelho M., Santos J., Gouveia M. et al. Urinary Estrogen Metabolites and Self-Reported Infertility in Women Infected with Schistosoma haematobium // Plos One J. 2014. Vol. 10. P 32-35.
  13. Braun-Munzinger R.A., Southgate B. A. Repeatability and reproducibility of egg counts of Schistosoma haematobium in urine // Trop. Med. Parasitol. 1992. Vol. 43. P. 149-154.
  14. De Brito P.A., Kazura J.W., Mahmoud A. A. Host granulomatous response in Schistosomiasis mansoni Antibody and cell-mediated damage of parasite eggs in vitro // J. Clin. Invest., 1984. Vol. 74, N 5. P. 1715-1723.
  15. Jonge de N., Kremsner P.G., Krijger F.W. et al. Detection of the schistosome circulating cathodic antigen by enzyme immunoassay using biotinylated monoclonal antibodies // Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. 1990. Vol. 84. P. 815-818.
  16. Doenhoff M.J., Butterworth A. E., Hayes R. J. et al. Seroepidemiology and serodiagnosis of schistosomiasis in Kenya using crude and purified egg antigens of Schistosoma mansoni in ELISA // Transactions of the Royal Society of Tropical Medicine and Hygiene, 1993. Vol. 87. P. 42-48.
  17. Downs J.A., Van Lieshout L., Verweij J.J. Persistence of Schistosome DNA and cervical abnormalities following standard treatment for female urogenital schistosomiasis // Trop. Med. Int. Health. 2013. Vol. 18. P. 28-33.
  18. El-Mawla N.G., El-Bolkainy M.N., Khaled H.M. Bladder cancer in Africa: update // Semin. Oncol. 2001. Vol. 28. P 174-178.
  19. Ghoneim M.A., El-Mekresh M.M., El-Baz M.A. et al. Radical cystectomy for carcinoma of the bladder, critical evaluation of the results in 1026 cases // J. Urol. 1997. Vol. 158, N 2. P. 393-399.
  20. Gouda I., Mokhtar N., Bilal D. et al. Bilharziasis and bladder cancer: a time trend analysis of 9843 patients // J. Egypt. Natl. Canc. Inst. 2007. Vol. 19, N 2. P. 158-162.
  21. Gryseels B., Polman K., Clerinx J. et al. Human schistosomiasis // Lancet. 2006. Vol. 368. P. 1106-1118.
  22. Hasab A.A., El-Nimr N.A., Al-Shibani L.A. et al. Rapid diagnosis of schistosomiasis in Yemen using a simple questionnaire and urine reagent strips // East. Mediterran. Health J. 2014. Vol. 20, N. 4. P. 242-249.
  23. Hicks R.M., James C., Webbe G. Effect of Schistosoma haematobium and N-butyl-N-14-hydroxybutylnitrosamine on the development of urothelial neoplasia in the baboon // Brit. J. Cancer. 1980. Vol. 42, N 5. P. 730-755.
  24. Hugosson C. O. Striation of the renal pelvis and ureter bilharziasis // Clin. Radiol. 1987. Vol. 38. P. 407.
  25. IARC Working Group on the Evaluation of Cardiogenic Risks to Humanos. Schistosomes, liver flukes and Helicobacter pylori // IARC Monogr Eval Carcinog Risks Hum. 1994. Vol. 61. P. 1-241.
  26. Jorulf H., Linstedt E. Urogenital schistosomiasis: CT evaluation // Radiology. 1985. Vol. 157. P. 745-749.
  27. King C.H. Parasites and poverty: the case of schistosomiasis // Acta Trop. 2010. Vol. 113. P. 95-104.
  28. Legesse M., Erko B. Field-based evaluation of a reagent strip test for diagnosis of schistosomiasis mansoni by detecting circulating cathodic antigen (CCA) in urine in low endemic area in Ethiopia // Parasite. 2008. Vol. 15. P. 151 - 155.
  29. Lodh N., Mwansa J.C., Mutengo M.M. et al. Diagnosis of Schistosoma mansoni without the stool: comparison of three diagnostic tests to detect Schistosoma mansoni infection from filtered urine in Zambia // Am. J. Trop. Med. Hyg. 2013. Vol. 89. P. 46-50.
  30. Melman S.D., Steinauer M.L., Cunningham C. et al. Reduced susceptibility to praziquantel among naturally occurring Kenyan isolates of Schistosoma mansoni // PLoS Negl. Trop. Dis. 2009. Vol. 3. P. 73-79.
  31. Navarro-Cabanas G., Garcia-Sànchez N., Rubio-Rubio R. et al. Esquistosomiasis urogenital: un diagnôstico sencillo // An. Esp. Pediatr. 2006. Vol. 64. P. 282-284.
  32. Obeng B.B., Aryeetey Y.A., Dood de C.J., et al. Application of a circulating-cathodic-antigen (CCA) strip test and real-time PCR, in comparison with microscopy, for the detection of Schistosoma haematobium in urine samples from Ghana // Ann. Trop. Med. Parasitol. 2008. Vol. 102. P. 625-633.
  33. Parkin D.M. The global health burden of infection-associated cancers in the year 2002 // Int. J. Cancer. 2006. Vol. 118. P. 3030-3044.
  34. Polman K., Meremarie M., Dirk E. et al. Specificity of circulating antigen detection for schistosomiasis mansoni in Senegal and Burundi // Trop. Med. Intern. Health. 2000. Vol. 5, iss. 8. P. 534-537.
  35. Poggensee G., Feldmeier H., Krantz I. Schistosomiasis of the female genital tract: public health aspects // Parasitol. Today. 1999. Vol. 15. P. 378-381.
  36. Polman K., Stelma F.F., Gryseels B. et al. Epidemiologic application of circulating antigen detection in a recent Schistosoma mansoni focus in northern Senegal // Am. J. Trop. Med. Hyg. 1995. Vol. 53. P. 152-157.
  37. Rashad S.B. Schistosomiasis: Current Status and Recent Updates Urinary Schistosomiasis Review // J. Adv. Res. 2013. Vol. 4. P. 453-459.
  38. Savioli L., Renganathan E., Montresor A. et al. Division of Control of Tropical Diseases, Schistomiasis and Intestinal Parasites Unit, World Health Organization. Control of schistosomiasis - a global picture // Parasitol. Today. 1997. Vol. 13. P. 444-448.
  39. Shiff C., Naples J.M., Isharwal S. et al. Non-invasive methods to detect schistosome-based bladder cancer: Is the association sufficient for epidemiological use? // Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. 2010. Vol. 104, N 1. P. 3-5.
  40. Shiff C., Veltri R., Naples J. et al. Ultrasound verification of bladder damage is associated with known biomarkers of bladder cancer in adults chronically infected with Schistosoma haematobium in Ghana // Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. 2006. Vol. 100. P. 847-854.
  41. Standley C.J., Adriko M., Arinaitwe M. et al. Epidemiology and control of intestinal schistosomiasis on the Sesse Islands, Uganda: integrating malacology and parasitology to tailor local treatment recommendations // Parasit. Vectors. 2010. Vol. 3. P. 64.
  42. Standley C.J., Lwambo N., Lange C. et al. Performance of circulating cathodic antigen (CCA) urine-dipsticks for rapid detection of intestinal schistosomiasis in schoolchildren from shoreline communities of Lake Victoria // Parasit. Vectors. 2010. Vol. 3. P. 7.
  43. Stothard J.R., Sousa-Figueiredo J.C., Standley A. et al. An evaluation of urine-CCA strip test and fingerprick blood SEA-ELISA for detection of urinary schistosomiasis in schoolchildren in Zanzibar // Acta Trop. 2009. Vol. 111. P. 64 - 70.
  44. Tsang V.C., Hancock K., Kelly M.A. et al. Schistosoma mansoni adult microsomal antigens, a serologic reagent. II. Specificity of antibody responses to the S. mansoni microsomal antigen (MAMA) // J. of Immun. 1983. Vol. 130. P. 1366-1370.
  45. Van Dam G.J., Wichers J.H., Ferreira T.M. et al. Diagnosis of schistosomiasis by reagent strip test for detection of circulating cathodic antigen // J. Clin. Microbiol. 2004. Vol. 42. P. 5458-5461.
  46. Van der Werf M.J., Vlas de S.J., Brooker S. et al. Quantification of clinical morbidity associated with schistosome infection in sub-Saharan Africa // Acta Trop. 2003. Vol. 86. P. 125-139.
  47. Van Lieshout L., Polderman A.M., Deelder A.M. Immunodiagnosis of schistosomiasis by determination of the circulating antigens CAA and CCA, in particular in individuals with recent or light infections // Acta Trop. 2000. Vol. 77. P. 69-80.
  48. Van Lieshout L., Polderman A.M., Vlas de S.J. et al. Analysis of worm burden variation in human Schistosoma mansoni infections by determination of serum levels of circulating anodic antigen and circulating cathodic antigen // J. Infect. Dis. 1995. Vol. 172. P. 1336-1342.
  49. Wilson R.A., Curwen R.S., Braschi S. et al. From genomes to vaccines via the proteome // Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 2004. Vol. 99. P. 45-50.
  50. Schistosomiasis. WHO recommendations, updated February 2014: http://www.who.int/mediacentre/factsheets/fs115/en.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Экология человека, 2016


 


Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».