Разработка и валидация хромато-масс-спектрометрической методики количественного определения апигенина, апигетрина и лютеолина в плазме мышей
- Авторы: Попов Н.С.1, Шестопалова Н.Б.2, Фомина Ю.А.2, Калюта Т.Ю.2
-
Учреждения:
- ФГБОУ ВО «Тверской государственный медицинский университет» Минздрава России
- ФГБОУ ВО «Саратовский государственный медицинский университет им. В.И. Разумовского» Минздрава России
- Выпуск: Том 28, № 12 (2025)
- Страницы: 58-68
- Раздел: Фармацевтическая химия
- URL: https://bakhtiniada.ru/1560-9596/article/view/362636
- DOI: https://doi.org/10.29296/25877313-2025-12-07
- ID: 362636
Цитировать
Аннотация
Введение. В настоящее время практический интерес исследователей направлен на изучение биомедицинского потенциала вторичных метаболитов растений с целью создания новых лекарственных средств. Флавоноиды представляют собой многочисленный класс природных фенольных соединений, обладающих широким спектром биологической активности. Особое внимание уделяется способности некоторых флавонов (апигенина и лютеолина, их гликозида апигетрина) к подавлению роста злокачественных опухолей. Однако низкие концентрации этих полифенолов в растительных матриксах не позволяют достоверно оценить фармакокинетику в организме человека. В связи с этим актуальной биоаналитической задачей является разработка точных и воспроизводимых методик с применением высокотехнологичных гибридных методов анализа.
Цель исследования – разработка и валидация хромато-масс-спектрометрической методики количественного определения апигенина, апигетрина и лютеолина в плазме крови мышей.
Материал и методы. Для разработки методики количественного определения флавонов использовали высокоэффективный жидкостной хроматограф Agilent Technologies 1260 Infinity II и масс-спектрометр AB Sciex QTrap 3200 MD. Хроматографическое разделение осуществляли на аналитической колонке Agilent InfinityLab Poroshell 120 EC-C18 с градиентной подвижной фазой, содержащей 0,1%-ную муравьиную кислоту и ацетонитрил. Для детектирования аналиты и внутренний стандарт варфарин ионизировали электрораспылением в режиме отрицательных ионов с использованием мониторинга множественных реакций. Пробоподготовка плазмы крови мышей заключалась в осаждении белков метанолом.
Результаты. Подобраны оптимальные условия обращенно-фазового хроматографического разделения апигенина, апигерина, лютеолина и варфарина с временами удерживания от 5,3 до 7,8 мин. Каждое соединение в оптимальных условиях электрораспылительной ионизации подвергается протонированию с образованием ионов состава [М–Н]- и фрагментации на два характеристических иона-продукта. Разработана методика одновременного количественного ВЭЖХ-МС/МС определения флавонов в плазме крови мышей, характеризующаяся линейностью в широком диапазоне концентраций и низким пределом количественного определения 1,0 нг/мл, значениями степени извлечения аналитов в диапазоне 90,8–100,4%. Валидационные характеристики методики удовлетворяют соответствующим нормативным требованиям селективности, влияния матричного эффекта, межсерийной точности и прецизионности.
Выводы. Результаты валидационных испытаний свидетельствуют о пригодности, разработанной экспрессной и достаточно точной биоаналитической методики количественного определения трех структурно родственных флавонов при совместном присутствии в плазме крови мышей. Метрологические характеристики методики позволяют использовать ее для проведения аналитической части фармакокинетических исследований лекарственных препаратов, содержащих как индивидуальные флавоноиды, так и растительные экстракты.
Ключевые слова
Об авторах
Н. С. Попов
ФГБОУ ВО «Тверской государственный медицинский университет» Минздрава России
Автор, ответственный за переписку.
Email: ns.popov@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-1792-7414
SPIN-код: 1974-7300
кандидат фармацевтических наук, доцент, зав. научно-исследовательской лабораторией, доцент кафедры фармакологии
Россия, 170100, г. Тверь, ул. Советская, д. 4Н. Б. Шестопалова
ФГБОУ ВО «Саратовский государственный медицинский университет им. В.И. Разумовского» Минздрава России
Email: shestopalovanb@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-4254-9478
SPIN-код: 8831-1600
кандидат химических наук, доцент, кафедра общей, биоорганической и фармацевтической химии начальник лаборатории цифровых систем в фармации
Россия, 410012, г. Саратов, ул. Большая Казачья, 112Ю. А. Фомина
ФГБОУ ВО «Саратовский государственный медицинский университет им. В.И. Разумовского» Минздрава России
Email: fominaya@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-7853-0333
SPIN-код: 2361-5388
кандидат химических наук, доцент, зав. кафедрой общей, биоорганической и фармацевтической химии начальник лаборатории по исследованию и контролю качества лекарственных средств
Россия, 410012, г. Саратов, ул. Большая Казачья, 112Т. Ю. Калюта
ФГБОУ ВО «Саратовский государственный медицинский университет им. В.И. Разумовского» Минздрава России
Email: tatianakaluta@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-3172-0804
SPIN-код: 4982-7861
кандидат медицинских наук, доцент, директор научно-образовательного центра клинических и биомедицинских исследований ст. науч. сотрудник, научно-исследовательский институт кардиологии
Россия, 410012, г. Саратов, ул. Большая Казачья, 112Список литературы
- Куркин В.А., Куркина А.В., Авдеева Е.В. Флавоноиды как биологически активные соединения лекарственных растений. Фундаментальные исследования. 2013; (11-9): 1897–1901.
- Jucá M.M., Cysne Filho F.M.S., de Almeida J.C. et al. Flavonoids: biological activities and therapeutic potential. Natural product research. 2020; 34(5): 692–705. doi: 10.1080/14786419.2018.1493588.
- Ullah A., Munir S., Badshah S. L. et al. Important flavonoids and their role as a therapeutic agent. Molecules. 2020; 25(22): 5243. doi: 10.3390/molecules25225243.
- Теплова В.В., Исакова Е.П., Кляйн О.И. и др. Природные полифенолы: биологическая активность, фармакологический потенциал, пути метаболической инженерии (обзор). Прикладная биохимия и микробиология. 2018; 54(3): 215–235. doi: 10.7868/S0555109918030017.
- Зверев Я.Ф. Флавоноиды глазами фармаколога. Особенности и проблемы фармакокинетик. Обзоры по клинической фармакологии и лекарственной терапии. 2017; 15(2): 4–11. doi: 10.17816/RCF1524-11.
- Шестопалова Н.Б., Егорычев П.Л. Сравнительный анализ биологической активности флавонов и флавонолов in silico. Достижения и перспективы создания новых лекарственных растительных препаратов: сборник научных статей по материалам Международного научного Симпозиума «От растения до лекарственного препарата». М.: ФГБНУ ВИЛАР. 2025:696-700. doi: 10.52101/9785870191164-2025-1-696.
- Биджиева А.Э., Шальнев И.О., Чиряпкин А.С. и др. Обзор биологической активности флавоноида апигенина: противовоспалительная, противоопухолевая, нейропротекторная и противовирусная. Бюллетень науки и практики. 2023; 9(10): 117–131. doi: 10.33619/2414-2948/95/11.
- Johnson J.L., Rupasinghe S.G., Stefani F. et.al. Citrus flavonoids luteolin, apigenin, and quercetin inhibit glycogen synthase kinase-3β enzymatic activity by lowering the interaction energy within the binding cavity. Journal of medicinal food. 2011; 14(4): 325–333. doi: 10.1089/jmf.2010.0310.
- Jiang Z.B., Wang W.J., Xu C. et.al. Luteolin and its derivative apigenin suppress the inducible PD-L1 expression to improve anti-tumor immunity in KRAS-mutant lung cancer. Cancer letters. 2011; 515: 36–48. doi: 10.1016/j.canlet.2021.05.019.
- Prasher P., Sharma M., Singh S.K., et.al. Luteolin: a flavonoid with a multifaceted anticancer potential. Cancer Cell International. 2022; 22(1): 386. doi: 10.1186/s12935-022-02808-3.
- Çetinkaya M., Baran Y. Therapeutic potential of luteolin on cancer. Vaccines. 2023; 11(3): 554. doi: 10.3390/vacci-nes11030554.
- Imran M., Rauf A., Abu-Izneid T. et.al. Luteolin, a flavonoid, as an anticancer agent: A review. Biomedicine & Pharmacotherapy. 2019; 112: 108612. doi: 10.1016/j.bio-pha.2019.108612.
- Che D.N., Cho B.O., Kim J.S. et.al. Effect of luteolin and apigenin on the production of IL-31 and IL-33 in lipopolysaccharides-activated microglia cells and their mechanism of action. Nutrients. 2020; 12(3): 811. doi: 10.3390/nu12030811.
- Calderaro A., Patanè G.T., Tellone E. et.al. The Neuroprotective Potentiality of Flavonoids on Alzheimer’s Disease. International Journal of Molecular Sciences. 2022; 23(23): 14835. doi: 10.3390/ijms232314835.
- Лужанин В.Г., Уэйли А.К., Понкратова А.О. и др. Противомикробная активность соединений полифенольной природы. Разработка и регистрация лекарственных средств. 2022;11(2):65–72. doi: 10.33380/2305-2066-2022-11-2-65-72.
- Chiriac E.R., Chiţescu C.L., Geană E.-I. et al. Advanced analytical approaches for the analysis of polyphenols in plants matrices – A review. Separations. 2021; 8(5): 65. doi: 10.3390/separations8050065.
- Писарев Д.И., Новиков О.О., Писарева Н.А. и др. Использование методов масс-спектрометрии для анализа флавоноидов (обзор). Региональные геосистемы. 2012; 21-1(140): 136–142.
- Попов Н.С., Балабаньян В.Ю., Баранов М.С. Разработка и валидация методики количественного определения молсидомина в различных тканях крыс с помощью ВЭЖХ-МС/МС. Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии. 2023; 26(4): 32–42. doi: 10.29296/25877313-2023-04-06.
- Попов Н.С., Егорова Е.Н., Петрова М.Б. и др. Применение ВЭЖХ-масс-спектрометрии для количественного определения 2-этил-6-метил-3-гидроксипиридиния N-ацетил-6-аминогексаноата в плазме крови крыс. Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии. 2021; 24(10): 45–51. doi: 10.29296/25877313-2021-10-06.
- Schmidt J. Negative ion electrospray high‐resolution tandem mass spectrometry of polyphenols. Journal of Mass Spectrometry. 2016; 51(1): 33–43. doi: 10.1002/jms.3712.
Дополнительные файлы
