МикроРНК как диагностический маркер при Т-клеточных лимфомах кожи
- Авторы: Олисова О.Ю.1, Демкин В.В.2, Чернова Н.Г.3, Амшинская Д.Р.1, Казаков А.А.2
-
Учреждения:
- Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова (Сеченовский Университет)
- Институт молекулярной генетики
- Городская клиническая больница № 40
- Выпуск: Том 25, № 1 (2022)
- Страницы: 5-16
- Раздел: ДЕРМАТООНКОЛОГИЯ
- URL: https://bakhtiniada.ru/1560-9588/article/view/106327
- DOI: https://doi.org/10.17816/dv106327
- ID: 106327
Цитировать
Аннотация
Обоснование. В последние годы благодаря развитию методов молекулярно-генетического анализа одним из перспективных маркеров для диагностики многих заболеваний человека становится микроРНК.
Цель ― изучение микроРНК в плазме крови для ранней диагностики грибовидного микоза.
Материал и методы. В исследование были включены 30 пациентов с гистологически подтверждённым диагнозом Т-клеточной лимфомы кожи, у 25 был диагностирован грибовидный микоз, у 5 ― синдром Сезари. Группу контроля составили 10 пациентов с доброкачественными лимфопролиферативными дерматозами. Пациентам проводилось определение микроРНК 223, 16, 326, 663, 423, 711 в плазме крови. Проведено также определение микроРНК в плазме у пациентов с Т-клеточными лимфомами кожи на ранних и поздних стадиях.
Результаты. Выявлена статистически значимая разница микроРНК 223, 16, 326, 711 в плазме крови у пациентов с грибовидным микозом в сравнении с пациентами с доброкачественными лимфопролиферативными дерматозами, микроРНК 663 у пациентов с Т-клеточными лимфомами кожи на ранней и поздней стадиях, а также микроРНК 223, 711 у пациентов с грибовидным микозом на ранней стадии в сравнении с пациентами с доброкачественными лимфопролиферативными дерматозами.
Заключение. Определение микроРНК 223, 16, 326, 711 в плазме крови может быть использовано для ранней диагностики Т-клеточной лимфомы кожи.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Ольга Юрьевна Олисова
Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова (Сеченовский Университет)
Email: olisovaolga@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-2482-1754
SPIN-код: 2500-7989
д.м.н., профессор
Россия, МоскваВладимир Витальевич Демкин
Институт молекулярной генетики
Email: vdemkin@img.ras.ru
ORCID iD: 0000-0002-3408-6100
SPIN-код: 5130-8270
к.м.н.
Россия, МоскваНаталья Геннадьевна Чернова
Городская клиническая больница № 40
Email: ngchernova@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-0827-4052
SPIN-код: 2683-1517
к.м.н.
Россия, МоскваДжессика Рафаэлевна Амшинская
Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова (Сеченовский Университет)
Автор, ответственный за переписку.
Email: dr.jessika@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-3907-2189
SPIN-код: 6770-5019
аспирант
Россия, МоскваАндрей Аркадьевич Казаков
Институт молекулярной генетики
Email: andrey20079@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-5559-6003
Россия, Москва
Список литературы
- Riou-Gotta M.O., Fournier E., Mermet I., et al. Primary cutaneous lymphomas: a population-based descriptive study of 71 consecutive cases diagnosed between 1980 and 2003 // Leuk Lymphoma. 2008. Vol. 49, N 8. Р. 1537–1544. doi: 10.1080/10428190802136368
- Kohnken R., Mishra A. MicroRNAs in cutaneous T-cell lymphoma: the future of therapy // J Investigative Dermatol. 2019. Vol. 139, N 3. Р. 528–534. doi: 10.1016/j.jid.2018.10.035
- Jawed S.I., Myskowski P.L., Horwitz S., et al. Primary cutaneous T-cell lymphoma (mycosis fungoides and Sézary syndrome): part I. Diagnosis: clinical and histopathologic features and new molecular and biologic markers // J Am Acad Dermatol. 2014. Vol. 70, N 2. Р. 205–222. doi: 10.1016/j.jaad.2013.07.049
- Hristov A.C., Tejasvi T., Wilcox R.A. Mycosis fungoides and Sézary syndrome: 2019 update on diagnosis, risk-stratification, and management // Am J Hematol. 2019. Vol. 94, N 9. Р. 1027–1041. doi: 10.1002/ajh.25577
- Ralfkiaer U., Lindahl L.M., Litman T., et al. MicroRNA expression in early mycosis fungoides is distinctly different from atopic dermatitis and advanced cutaneous T-cell lymphoma // Anticancer Res. 2014. Vol. 34, N 12. Р. 7207–7217.
- Shen X., Wang B., Li K., et al. MicroRNA signatures in diagnosis and prognosis of cutaneous T-cell lymphoma // J Invest Dermatol. 2018. Vol. 138, N 9. Р. 2024–2032. doi: 10.1016/j.jid.2018.03.1500
- Горенкова Л.Г., Рыжикова Н.В., Моисеева Т.Н., и др. Т-клеточные лимфомы кожи (грибовидный микоз) в практике гематолога // Гематология и трансфузиология. 2020. Т. 65, № 1. C. 133.
- Da Silva Almeida A.C., Abate F., Khiabanian H., et al. The mutational landscape of cutaneous T-cell lymphoma and Sézary syndrome // Nat Genet. 2015. Vol. 47, N 12. Р. 1465–1470. doi: 10.1038/ng.3442
- Spicknall K.E. Sézary syndrome-clinical and histopathologic features, differential diagnosis, and treatment // Semin Cutan Med Surg. 2018. Vol. 37, N 1. Р. 18–23. doi: 10.12788/j.sder.2018.005
- Dummer R., Heald P.W., Nestle F.O., et al. Sézary syndrome T-cell clones display T-helper 2 cytokines and express the accessory factor-1 (interferon-gamma receptor beta-chain) // Blood. 1996. Vol. 88, N 4. Р. 1383–1389.
- Rodriguez A., Griffiths-Jones S., Ashurst J.L., Bradley A. Identification of mammalian microRNA host genes and transcription units // Genome Res. 2004. Vol. 14, N 10. Р. 1902–1910. doi: 10.1101/gr.2722704
- Kozomara A., Griffiths-Jones S. miRBase: integrating microRNA annotation and deep-sequencing data // Nucleic Acids Res. 2011. Vol. 39. Р. 152–157. doi: 10.1093/nar/gkq1027
- Peterson S.M., Thompson J.A., Ufkin M.L., et al. Common features of microRNA target prediction tools // Frontiers Genetics. 2014. Vol. 5. Р. 23. doi: 10.3389/fgene.2014.00023
- Di Leva G., Garofalo M., Croce C.M. MicroRNAs in cancer // Annu Rev Pathol. 2014. Vol. 9. Р. 287–314. doi: 10.1146/annurev-pathol-012513-104715
- Sadakierska-Chudy A. MicroRNAs: diverse mechanisms of action and their potential applications as cancer epi-therapeutics // Biomolecules. 2020. Vol. 10, N 9. Р. 1285. doi: 10.3390/biom10091285
- Ma L., Teruya-Feldstein J., Weinberg R.A. Tumour invasion and metastasis initiated by microRNA-10b in breast cancer // Nature. 2007. Vol. 449, N 7163. Р. 682–688. doi: 10.1038/nature06174
- Androvic P., Valihrach L., Elling J., et al. Two-tailed RT-qPCR: a novel method for highly accurate miRNA quantification // Nucleic Acids Res. 2017. Vol. 45, N 15. Р. 144. doi: 10.1093/nar/gkx588
- Leti F., DiStefano J.K. miRNA quantification method using quantitative polymerase chain reaction in conjunction with cq method // Methods Mol Biol. 2018. Vol. 1706. Р. 257–265. doi: 10.1007/978-1-4939-7471-9_14
- Pistol Tanase C., Albulescu R., Neagu M. Application of 3D hydrogel microarrays in molecular diagnostics: advantages and limitations // Expert Rev Mol Diagn. 2011. Vol. 11, N 5. Р. 461–464. doi: 10.1586/erm.11.30
- Kappel A., Backes C., Huang Y., et al. MicroRNA in vitro diagnostics using immunoassay analyzers // Clin Chem. 2015. Vol. 61, N 4. Р. 600–607. doi: 10.1373/clinchem.2014.232165
- Ballabio E., Mitchell T., van Kester M.S., et al. MicroRNA expression in Sezary syndrome: identification, function, and diagnostic potential // Blood. 2010. Vol. 116, N 7. Р. 1105–1113. doi: 10.1182/blood-2009-12-256719
- Ralfkiaer U., Hagedorn P.H., Bangsgaard N., et al. Diagnostic microRNA profiling in cutaneous T-cell lymphoma (CTCL) // Blood. 2011. Vol. 118, N 22. Р. 5891–5900. doi: 10.1182/blood-2011-06-358382
- Van Kester M.S., Ballabio E., Benner M.F., et al. miRNA expression profiling of mycosis fungoides // Mol Oncol. 2011. Vol. 5, N 9. Р. 273–280. doi: 10.1016/j.molonc.2011.02.003
- Narducci M.G., Arcelli D., Picchio M.C., et al. MicroRNA profiling reveals that miR-21, miR486 and miR-214 are upregulated and involved in cell survival in Sézary syndrome // Cell Death Dis. 2011. Vol. 2, N 4. Р. 151. doi: 10.1038/cddis.2011.32
- Benner A., Zucknick M., Hielscher T., et al. High-dimensional Cox models: the choice of penalty as part of the model building process // Biom J. 2010. Vol. 52, N 1. Р. 50–69. doi: 10.1002/bimj.200900064
- Flores-Sandoval E., Eklund D.M., Bowman J.L. A Simple auxin transcriptional response system regulates multiple morphogenetic processes in the liverwort marchantia polymorpha // PLoS Genetics. 2015. Vol. 11, N 5. Р. e1005207. doi: 10.1371/journal.pgen.1005207
- Qin J., Li Y., Cai Z., et al. A metagenome-wide association study of gut microbiota in type 2 diabete // Nature. 2012. Vol. 490, N 7418. Р. 55–60. doi: 10.1038/nature11450
- Marstrand T., Ahler C.B., Ralfkiaer U., et al. Validation of a diagnostic microRNA classifier in cutaneous T-cell lymphomas // Leuk Lymphoma. 2014. Vol. 55, N 4. Р. 957–958. doi: 10.3109/10428194.2013.815352
- Hagag N.A., Ali Y.B., Elsharawy A.A., Talaat R.M. Clinical impact of circulated miR-1291 in plasma of patients with liver cirrhosis (LC) and hepatocellular carcinoma (HCC): implication on glypican-3 expression // J Gastrointest Cancer. 2020. Vol. 51, N 1. Р. 234–241. doi: 10.1007/s12029-019-00234-9
- Dusílková N., Bašová P., Polívka J., et al. Plasma miR-155, miR-203, and miR-205 are biomarkers for monitoring of primary cutaneous T-cell lymphomas // Int J Mol Sci. 2017. Vol. 18, N 10. Р. 2136. doi: 10.3390/ijms18102136
- Hassan H., Salami A., Ghssein G., et al. Seroprevalence of Brucella abortus in cattle in Southern Lebanon using different diagnostic tests // Veterinary World. 2020. Vol. 13, N 10. Р. 2234–2242. doi: 10.1080/20008686.2018.1555445
