Induction of Cholinergic Phenotype in Mouse Neuroblastoma Cells Using Nerve Growth Factor

A. A. Koryagina; Корягина А. А.; O. A. Nedogreeva; Недогреева О. А.; A. A. Buyanova; Буянова А. А.; Yu. S. Spivak; Спивак Ю. С.; A. P. Bolshakov; Большаков А. П.; N. V. Gulyaeva; Гуляева Н. В.; M. Yu. Stepanichev; Степаничев М. Ю.

doi:10.31857/S1027813323040131

Индукция холинергического фенотипа в клетках нейробластомы мыши фактором роста нервов

Авторы: Корягина А.А.¹, Недогреева О.А.¹, Буянова А.А.¹, Спивак Ю.С.¹, Большаков А.П.¹, Гуляева Н.В.¹, Степаничев М.Ю.¹
Учреждения:
1. Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт высшей нервной деятельности и нейрофизиологии РАН
Выпуск: Том 40, № 4 (2023)
Страницы: 435-445
Раздел: Экспериментальные работы
URL: https://bakhtiniada.ru/1027-8133/article/view/231952
DOI: https://doi.org/10.31857/S1027813323040131
EDN: https://elibrary.ru/OOFTHU
ID: 231952

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ
Доступ закрыт

Доступ предоставлен
Доступ закрыт

Только для подписчиков

Аннотация
Об авторах
Список литературы
Дополнительные файлы
Статистика

Аннотация

Фактор роста нервов (ФРН) является фактором, определяющим дифференцировку нейронов. ФРН играет важную роль в росте и дифференцировке сенсорных и симпатических нейронов в периферической нервной системе. В зрелом мозге ФРН участвует в поддержании холинергического фенотипа нервных клеток. В работе была исследована возможность индукции холинергического фенотипа в клетках нейробластомы мыши, которые часто используются для моделирования разных физиологических и патологических процессов, протекающих в нервной системе. Клетки нейробластомы линий NB41A3 и Neuro2a чаще всего используются, когда необходимо исследовать свойства холинергических нейронов. В клетках этих линий была обнаружена экспрессия рецепторов TrkA и p75NGFR, которая характерна для холинергических нейронов базальных ядер переднего мозга. Дифференцировку клеток вызывали аппликацией ФРН или 8-Br-цАМФ. ФРН не вызывал выраженной дифференцировки клеток по нейрональному фенотипу. Кроме того, не было обнаружено изменений содержания мРНК и белка холинацетилтрансферазы и везикулярного транспортера ацетилхолина, которые использовали в качестве маркеров холинергического фенотипа. Таким образом, клетки линий NB41A3 и Neuro2a не могут быть рекомендованы для использования в качестве модели холинергических нейронов in vitro, поскольку они не дифференцируются и/или не демонстрируют признаков холинергического фенотипа в ответ на стимуляцию ФРН.

Ключевые слова

фактор роста нервов, нейробластома, дифференцировка, холинацетилтрансфераза, везикулярный транспортер ацетилхолина, ацетилхолинэстераза

Список литературы

Meakin S.O., Shooter E.M. // Trends Neurosci. 1992. V. 15. P. 323–331.
Sofroniew M.V., Howe C.L., Mobley W.C. // Annu. Rev. Neurosci. 2001. V. 24. P. 1217–1281.
Chao M.V. // Nat. Rev. Neurosci. 2003. V. 4. P. 299–309.
Niewiadomska G., Mietelska-Porowska A., Mazurkiewicz M. // Behav. Brain Res. 2011. V. 221. P. 515–526.
Schliebs R., Arendt T. // Behav. Brain Res. 2011. V. 221. P. 555–563.
Tuszynski M.H. // Cell Transplant. 2000. V. 9. P. 629–636.
Dobryakova Y.V., Spivak Y.S., Zaichenko M.I., Koryagina A.A., Markevich V.A., Stepanichev M.Y., Bolshakov A.P. // Front. Neurosci. 2021. V. 15. P. 745050.
Dobryakova Y.V., Zaichenko M.I., Spivak Y.S., Stepaniche M.Y., Markevich V.A., Bolshakov A.P. // Neurochem. J. 2021. V. 15. P. 273–281.
Stepanichev M.Y. // Neurochem. J. 2011. V. 5. P. 159–168.
Tuszynski M.H., Yang J.H., Barb D., U H.S., Bakay R.A., Pay M.M., Masliah E., Conner J.M., Kobalka P., Roy S., Nagahara A.H. // JAMA Neurol. 2015. V. 72. P. 1139–1147.
Tuszynski M.H., Thal L., Pay M., Salmon D.P., U H.S., Bakay R., Patel P., Blesch A., Vahlsing H.L., Ho G., Tong G., Potkin S.G., Fallon J., Hansen L., Mufson E.J., Kordower J.H., Gall C., Conner J. // Nat. Med. 2005. V. 11. P. 551–555.
Ferro M., Doyle A. // Cell Biol. Toxicol. 2001. V. 17. P. 205–212.
Colom L.V., Castaneda M.T., Reyna T., Hernandez S., Garrido-Sanabria E. // Synapse. 2005. V. 58. P. 151–164.
Colom L.V., Castaneda M.T., Aleman D., Touhami A. // Neurosci. Lett. 2013. V. 541. P. 54–57.
Huh C.Y.L., Danik M., Manseau F., Trudeau L.E., Williams S. // J. Neurosci. 2008. V. 28. P. 1404–1409.
Teles-Grilo Ruivo L.M., Mellor J.R. // Front. Synaptic Neurosci. 2013. V. 5. P. 2.
Mangoura D., Vernadakis A. // Dev. Brain Res. 1988. V. 40. P. 25–35.
Latina V., Caioli S., Zona C., Ciotti M.T., Amadoro G., Calissano P. // Front. Cell Neurosci. 2017. V. 11. P. 68.
Antonov S.A., Manuilova E.S., Dolotov O.V., Kobylyansky A.G., Safina D.R., Grivennikov I.A. // Bull. Exp. Biol. Med. 2017. V. 162. P. 679–683.
Ortiz-Virumbrales M., Moreno C.L., Kruglikov I., Marazuela P., Sproul A., Jacob S., Zimmer M., Paull D., Zhang B., Schadt E.E., Ehrlich M.E., Tanzi R.E., Arancio O., Noggle S., Gandy S. // Acta Neuropathol. Commun. 2017. V. 5. P. 77.
Moreno C.L., Guardia L., Della Shnyder V., Ortiz-Virumbrales M., Kruglikov I., Zhang B., Schadt E.E., Tanzi R.E., Noggle S., Buettner C., Gandy S. // Mol. Neurodegener. 2018. V. 13. P. 33.
Campos Cogo S., Gradowski Farias da Costa do Nascimento T., de Almeida Brehm Pinhatti F., de França Junio N., Santos Rodrigues B., Cavalli L.R., Elifio-Esposito S. // Exp. Biol. Med. 2020. V. 245. P. 1637–1647.
Johnsen J.I., Dyberg C., Wickström M. // Front. Mol. Neurosci. 2019. V. 12. P. 9.
Rosenberg R.N., Vandeventer L., De Francesco L., Friedkin M.E. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1971. V. 68. P. 1436–1440.
Blusztajn J.K., Venturini A., Jackson D.A., Lee H.J., Wainer B.H. // J. Neurosci. 1992. V. 12. P. 793–799.
Kumar M., Katyal A. // Data Br. 2018. V. 21. P. 2435–2440.
Thompson J., London E., Johnson Jr.J. // Neuroscience. 1982. V. 7. P. 1807–1815.
Thompson G., Lewis J., Mawdsley D. // 2012. https://www.dst.defence.gov.au/publication/characterisation-cell-culture-system-investigating-nerve-agent-neurotoxicology-part-i
Monsma F.J., Brassard D.L., Sibley D.R. // Brain Res. 1989. V. 492. P. 314–324.
Dziedzicka-Wasylewska M., Solich J. // Mol. Brain Res. 2004. V. 128. P. 75–82.
Pemberton K., Mersman B., Xu F. // J. Undergrad. Neurosci. Educ. 2018. V. 16. P. A186–194.
Zeineldin M., Patel A.G., Dyer M.A. // Neuron. 2022. V. 110. P. 2916–2928.
Chen T., Hinton D., Zidovetzki R., Hofman F. // Lab. Invest. 1998. V. 78. P. 165–174.
Sánchez S., Jiménez C., Carrera A.C., Diaz-Nido J., Avila J., Wandosell F. // Neurochem. Int. 2004. V. 44. P. 231–242.
Aloe L., Rocco M.L., Balzamino B.O., Micera A. // J. Exp. Clin. Cancer Res. 2016. V. 35. P. 1–7.
Martorana F., Gaglio D., Bianco M.R., Aprea F., Virtuoso A., Bonanomi M., Alberghina L., Papa M., Colangelo A.M. // Cell Death Dis. 2018. V. 9. P. 391.
Reichardt L.F. // Philos. Trans. R. Soc. Lond. B. Biol. Sci. 2006. V. 361. P. 1545–1564.
Yeo T.T., Chua-Couzens J., Butcher L.L., Bredesen D.E., Cooper J.D., Valletta J.S., Mobley W.C., Longo F.M. // J. Neurosci. 1997. V. 17. P. 7594–7605.
Sobreviela T., Clary D.O., Reichardt L.F., Brandabur M.M., Kordower J.H., Mufson E.J. // J. Comp. Neurol. 1994. V. 350. P. 587–611.
Wu D., Hersh L.B. // J. Neurochem. 1994. V. 62. P. 1653–1663.
Blume A., Gilbert F., Wilson S., Farber J., Rosenberg R., Nirenberg M. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1970. V. 67. P. 786–792.
Harris A.J., Dennis M.J. // Science. 1970. V. 167. P. 1253–1255.