Влияние свёртывания крови на иммунологическую реактивность клеток крови ex vivo
- Авторы: Пышенко А.А.1, Любавская Т.Я.1, Селедцова И.А.1, Селедцов В.И.1
-
Учреждения:
- Российский научный центр хирургии им. акад. Б.В. Петровского
- Выпуск: Том 163, № 1 (2025)
- Страницы: 49-57
- Раздел: Оригинальные исследования
- URL: https://bakhtiniada.ru/1026-3543/article/view/292733
- DOI: https://doi.org/10.17816/morph.642266
- EDN: https://elibrary.ru/AHNZNZ
- ID: 292733
Цитировать
Аннотация
Обоснование. Взаимодействие системы гемостаза и иммунной системы обеспечивает защиту организма от внешних патогенов. Тем не менее, влияние свёртывания крови на иммунную клеточную реактивность изучено недостаточно.
Цель — исследовать влияние свёртывания крови на её иммунореактивные свойства ex vivo.
Материалы и методы. Образцы донорской крови инкубировали с гепарином (для исследования плазмы) или без гепарина (для исследования сыворотки). Антиоксидантную активность плазмы и сыворотки оценивали по интенсивности хемилюминесценции после добавления перекиси водорода или озонированного физиологического раствора. Содержание цитокинов определяли иммуноферментным методом после инкубации крови с липополисахаридом (ЛПС) в течение 3 или 18 ч.
Результаты. Сыворотка обладала значительно большей антиоксидантной активностью, чем плазма. Процесс свёртывания крови заметно снижал как спонтанную, так и ЛПС-индуцированную секрецию клетками крови фактора некроза опухоли TNF-α, не оказывая при этом существенного влияния на секрецию интерлейкинов IL-1, IL-6, IL-8 и С-реактивного белка. С другой стороны, этот процесс приводил к усилению как спонтанной, так и ЛПС-индуцированной секреции клетками крови фактора роста эндотелия сосудов VEGF. В сывороточных пробах с ЛПС также выявили выраженный прирост содержания прокальцитонина.
Заключение. Cвёртывание крови усиливает антиоксидантные свойства крови, ослабляет воспалительную активность иммунореактивных клеток и, тем самым, способствует развитию регенеративных процессов.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Анатолий Анатольевич Пышенко
Российский научный центр хирургии им. акад. Б.В. Петровского
Email: anatoliy.dr@yandex.ru
ORCID iD: 0009-0002-1117-608X
SPIN-код: 8973-0238
Россия, Москва
Татьяна Яковлевна Любавская
Российский научный центр хирургии им. акад. Б.В. Петровского
Email: rnc2016@mail.ru
ORCID iD: 0009-0002-8106-8148
SPIN-код: 1434-2924
канд. биол. наук
Россия, МоскваИрина Анатольевна Селедцова
Российский научный центр хирургии им. акад. Б.В. Петровского
Email: iax34@yandex.ru
ORCID iD: 0009-0006-0401-1876
SPIN-код: 7001-6428
канд. мед. наук
Россия, МоскваВиктор Иванович Селедцов
Российский научный центр хирургии им. акад. Б.В. Петровского
Автор, ответственный за переписку.
Email: seledtsov@rambler.ru
ORCID iD: 0000-0002-4746-8853
SPIN-код: 6469-9230
д-р мед. наук, профессор
Россия, МоскваСписок литературы
- Pavlov OV, Chepanov SV, Selutin AV, Selkov SA. Platelet-leukocyte interactions: immunoregulatory role and pathophysiological relevance. Medical Immunology (Russia). 2022;24(5):871–888. (In Russ.) EDN: CZUGFZ doi: 10.15789/1563-0625-PLI-2511
- Shakouri SK, Dolati S, Santhakumar J, et al. Autologous conditioned serum for degenerative diseases and prospects. Growth Factors. 2021;39(1–6):59–70. EDN: ICIAEO doi: 10.1080/08977194.2021.2012467
- Łukasik ZM, Makowski M, Makowska JS. From blood coagulation to innate and adaptive immunity: the role of platelets in the physiology and pathology of autoimmune disorders. Rheumatol Int. 2018;38(6):959–974. EDN: UQEPFZ doi: 10.1007/s00296-018-4001-9
- Seledtsov VI, Dorzhieva AB, Seledtsova GV. Antitumor and immunomodulatory effects of oxygen therapy. Medical Immunology (Russia). 2023;25(6):1319–1328. (In Russ.) EDN: IWRVPT doi: 10.15789/1563-0625-AAI-2562
- Bester J, Matshailwe C, Pretorius E. Simultaneous presence of hypercoagulation and increased clot lysis time due to IL- 1β, IL-6 and IL-8. Cytokine. 2018;110:237–242. EDN: VFDSMV doi: 10.1016/j.cyto.2018.01.007
- Antoniak S. The coagulation system in host defense. Res Pract Thromb Haemost. 2018;2(3):549–557. EDN: OWXXZB doi: 10.1002/rth2.12109
- Seledtsov VI, von Delwig AA. Therapeutic stimulation of glycolytic ATP production for treating ROS-mediated cellular senescence. Metabolites. 2022;12(12):1160. EDN: FFUCHE doi: 10.3390/metabo12121160
- Gros A, Ollivier V, Ho-Tin-Noé B. Platelets in inflammation: regulation of leukocyte activities and vascular repair. Front Immunol. 2015;5:678. doi: 10.3389/fimmu.2014.00678
- Li N, Ji Q, Hjemdahl P. Platelet-lymphocyte conjugation differs between lymphocyte subpopulations. J Thromb Haemost. 2006;4(4):874–881. doi: 10.1111/j.1538-7836.2006.01817.x
- Zamora C, Cantó E, Nieto JC, et al. Functional consequences of platelet binding to T-lymphocytes in inflammation. J Leukoc Biol. 2013;94(3):521–529. EDN: ROIDZR doi: 10.1189/jlb.0213074
- Gerdes N, Zhu L, Ersoy M, et al. Platelets regulate CD4⁺ T-cell differentiation via multiple chemokines in humans. Thromb Haemost. 2011;106(2):353–362. doi: 10.1160/TH11-01-0020
- Zhu L, Huang Z, Stålesen R, et al. Platelets provoke distinct dynamics of immune responses by differentially regulating CD4+ T-cell proliferation. J Thromb Haemost. 2014;12(7):1156–1165. doi: 10.1111/jth.12612
- Ciesielska A, Matyjek M, Kwiatkowska K. TLR4 and CD14 trafficking and its influence on LPS-induced pro-inflammatory signaling. Cell Mol Life Sci. 2021;78(4):1233–1261. EDN: NDRLRG doi: 10.1007/s00018-020-03656-y
- Armstrong MT, Rickles FR, Armstrong PB. Capture of lipopolysaccharide (endotoxin) by the blood clot: a comparative study. PLoS One. 2013;8(11):e80192. doi: 10.1371/journal.pone.0080192
- Wilhelm G, Mertowska P, Mertowski S, et al. The Crossroads of the Coagulation System and the Immune System: Interactions and Connections. Int J Mol Sci. 2023;24(16):12563. EDN: AAMMSJ doi: 10.3390/ijms241612563
Дополнительные файлы
