Грибы в источниках грунтовых вод и колодцах в Московском регионе

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Культуральным методом определена численность, видовой состав и таксономическая структура грибной биоты в грунтовых водах нескольких природных источников и колодцев в Московском регионе. Число колониеобразующих единиц (КОЕ) грибов в 1 л воды – невысокое, в среднем от 10 до 300. Из воды одного источника или колодца изолировали 6–16 видов, а всего из 6 таких объектов – 46 видов. Это были представители отдела Mucoromycota класса Mucoromycetes (Absidia cylindrospora var. nigra, Mucor circinelloides, M. hiemalis, Rhizopus stolonifer), Ascomycota классов Eurotiomycetes (15 видов родов Aspergillus и Penicillium), Sordariomycetes (13 видов родов Acremonium, Chaetomium, Fusarium, Myrothecium, Plectosphaerella, Trichoderma), Dothideomycetes (Alternaria alternata, A. nobilis, Amorocoelophoma cassia, Cladosporium cladosporioides, C. sphaerospermum) и Saccharomycetes (Candida solani, C. zeylanoides, Galactomyces pseudocandidus) и отдела Basidiomycota классов Tremellomycetes (Mrakia gelida, Vishniacozyma victoriae) и Agaricomycetes (Phlebia acerina, Psathyrella candolleana, Thanatephorus cucumeris). Таксономическая структура микобиоты в водах природных источников и колодцев Московского мегаполиса была в целом сходна с таковой в грунтовых водах других регионов, в том числе с выявленной в подземных водах на глубинах в несколько сотен метров. Обсуждены механизмы адаптации грибов к существованию в грунтовой воде, пути контаминации и необходимость микологических критериев для оценки качества.

Полный текст

Видовой состав и численность грибов в подземных водах, в их природных источниках (ключах, родниках, колодцах) изучены намного хуже, чем в поверхностных водоемах (озерах, реках, морях) (Воронин, 2013; Пивкин и др., 2006; Jones et al., 2014; Babič et al., 2016, 2017). В то же время знания о разнообразии и плотности популяций грибных организмов необходимы как с научной, так и с практической точки зрения, как правило, в связи с их использованием без какой-либо предварительной подготовки для питья и приготовления пищи (Arvanitidou et al., 1999; Göttlich et al., 2002; Hageskal et al., 2007; Babič et al., 2016, 2017).

Согласно прогностическим расчетам разнообразие грибов в пресных поверхностных водоемах и подземных водах не менее 20 000 видов, а известно только около 5% от их действительного разнообразия (Gessner, van Ryckegem, 2003; Jones et al., 2014).

Недооценено видовое богатство микобиоты грунтовых вод в первую очередь в связи со слабой изученностью, одной из причин этого является отсутствие в санитарно-эпидемиологических нормативах для оценки качества питьевой воды каких-либо грибных показателей (количественных и/или качественных). Это относится к водозаборным водоемам, подземным грунтовым водам, колодцам, природным источникам, системам городского и больничного водоснабжения (Göttlich et al., 2002; Hageskal et al., 2007; Yamaguchi et al., 2007). Такая ситуация сложилась в подавляющем большинстве стран, включая Россию. Поэтому, видимо, столь мало работ по оценке состава и численности грибной биоты в сравнении с исследованиями питьевой воды по физико-химическим и микробиологическим параметрам. Данные по грибной биоте отсутствуют даже для природных источников грунтовых вод в регионах крупных мегаполисов. Для оценки качества питьевой воды давно используют разнообразные физико-химические показатели (мутность, цвет, запах, привкус, рН, содержание нефтепродуктов, ПАВ, неорганических и органических соединений, нитратов, нитритов, тяжелых металлов), до 36 параметров (СанПиН 2.1.3684-21; СанПиН 1.2.3685-21). Принят ряд микробиологических критериев: общее микробное число не допускается более 50 колониеобразующих единиц (КОЕ) в 100 см3 и не должно быть колиформных бактерий и термотолерантных колиформных бактерий в 100 см3 воды (СанПиН 2.1.3684-21; СанПиН 1.2.3685-21).

Вместе с тем известно, что существуют грибы, которые способны придать воде неприятный привкус и запах и продуцировать аллергены и микотоксины (Sammon, Harrower, 2008). Все большее признание получают факты, что споры, переносимые водой, могут быть причиной инвазивных оппортунистических грибных инфекций у пациентов с ослабленным иммунитетом (Anaissie et al., 2003; Sammon, Harrower, 2008; Sammon et al., 2011). Один из путей привлечь внимание к этой проблеме – активное исследование состава и плотности популяций грибов в питьевой воде в разных регионах и странах, что позволит разработать критерии микологического контроля воды. Планировавшееся включение микроспоридий в показатели качества воды в США не было реализовано (Babič et al., 2017). В Чехии и Венгрии рекомендуют проводить микроскопию водных проб после их концентрирования фильтрованием для выявления общего числа клеток эукариот и цианобактерий (Babič et al., 2017). Пока количественные микологические показатели качества воды по оценке КОЕ грибов имеются только в Швеции (Hageskal et al., 2007; Babič et al., 2017).

Целью работы было изучение видового разнообразия и численности грибов в источниках грунтовых вод и колодцев, используемых для питья, которые расположены на территории Москвы и Московской области.

Материалы и методы

Образцы пресной грунтовой воды были отобраны из колодцев и природных источников (выходов грунтовой воды на поверхность): общественного колодца в деревне Аладьино Серпуховского района Московской области (МО), частного колодца (закрытого от внешней среды и редко используемого) в садовом товариществе (СНТ) “Тарасково” Наро-Фоминского района Московской области, в источнике в городе Мытищи Московской области, источнике “Кадочка” в парке “Коломенское” в Голосовом овраге (г. Москва), источнике в усадьбе “Знаменское-Садки”, где расположен ФГБУ “ВНИИ Экология” (г. Москва), и источнике в Битцевском парке в Москве. Отбор воды проводили в стерильные стеклянные емкости объемом 0,5–2 л (в 3 повторностях). Отбирали также грунт со дна источников в местах выхода грунтовой воды на поверхность почвы. Температура воды в источниках и колодцах в период отбора проб (июнь – июль 2021 г.) была +5…+8°C, воздуха +22…+31°C днём и +16…+19°C ночью.

Пробы воды транспортировали в лабораторию в термосумке с охлаждающими элементами и хранили в холодильнике при +5…+8°C. Посевы на питательные среды проводили в те же или на следующие сутки. Оборудование для отбора проб соответствовало рекомендуемому ГОСТу 31942–2012.

Посев проводили на стандартные среды сусло-агар и Чапек-агар. Для подавления роста бактерий в расплавленную остывшую среду добавляли антибиотик цефотаксим в количестве 50 мг на 500 мл среды. Выделение чистых культур из появляющихся колоний начинали после трех-пяти суток инкубации чашек и продолжали в течение 2–3 недель. Посев из грунта проводили путем нанесения его комочков на поверхность среды стерильным ланцетом и сверху дополнительно посыпали порошком цефотаксима.

Проводили глубинный посев воды в аликвотах 0,5, 1, 2 и 3 мл в стерильные чашки Петри, после чего в них заливали питательную среду и оборачивали пленкой для предохранения контаминации среды и высыхания. При таком посеве на большинстве чашек отсутствовали колонии грибов. Только в редких случаях на 1–2 чашках из 10 вырастали одна-две колонии вне зависимости от источника и колодца. Поэтому изучение состава и численности КОЕ грибов в этих объектах было продолжено путем фильтрации воды для концентрации грибных пропагул на фильтрах. Использовали целлюлозные фильтры (синяя лента, диаметр пор 2–3 мкм), а также мембранные фильтры из нитрата целлюлозы (поры 0,45 мкм) в шприце (производство Millipore, Germany). Фильтр (синяя лента) помещали на стеклянную воронку, которая была вставлена в колбу, закрывали сверху стерильной фильтровальной бумагой и профильтровывали нужный объем воды, установленный в предварительных экспериментах (как правило, 100 или 250 мл, реже 0,5 и 0,75 л). При таком посеве число колоний в чашках было оптимальное – в подавляющем большинстве случаев в диапазоне 7–20.

Фильтры разрезали простерилизованными в пламени газовой горелки ножницами на 4 равные части или же использовали целиком, если они были малого размера, и помещали на поверхность питательных сред. Проводили также посевы из профильтрованной воды, чтобы полнее выявить число и состав грибов, и эти данные учитывали при оценке видового богатства грибов в пробах.

Посевы провели из отобранной пробы не менее чем на 10 чашек Петри, и общая повторность составила 30–40 чашек Петри из каждого водного объекта. Подсчёт грибных колоний и выделение изолятов проводили через 10–14 суток инкубации посевов при +10…+12°C.

Для видовой идентификации отбирали по несколько колоний разного морфотипа. Если были сомнения, что колонии могут принадлежать не к одному, а к разным видам, то изолировали культуры из обеих колоний. Для каждого варианта (водного объекта) подсчитывали общее количество колоний и количество колоний каждого культурально-морфологического типа. Из проб каждого водного объекта были выделены все морфотипы, что составляло из каждого варианта не менее 40 культур, часть из которых были одного вида.

Идентификация штаммов грибов была проведена с использованием культурально-морфологических и молекулярно-генетических подходов. Описание культур проводили на сусло-агаре и среде Чапека с использованием рекомендуемых для соответствующего таксона определителей (Raper, Fennell, 1965; Raper et al., 1968; Rifai, 1969; Schipper, 1978; Klich, 2002; Crous et al., 2007; Domsch et al., 2007; Samson, Haubraken, 2011; Seifert et al., 2011) и по генетическим признакам с помощью ПЦР и дальнейшего секвенирования ITS-региона рДНК. ДНК выделяли из 3-суточных культур дрожжей и 5–7-суточных мицелиальных грибов, выращенных на сусло-агаре. Использовали набор “Проба-Экспресс” (“Синтол”, кат. номер ЕХ-517) и следующий протокол: 50–100 мг грибной биомассы поместить в пробирку объемом 1,5 мкл и гомогенизировать; добавить 300 мкл лизирующего буфера и тщательно перемешать; поместить в термостат на 95°С на 10 минут; добавить 30 мкл осаждающего раствора и тщательно перемешать; центрифугировать 13 000 об/мин в течение 1 минуты; отобрать супернатант в чистую маркированную пробирку. Для постановки ПЦР использовали готовую реакционную смесь производства “Синтол” (кат. номер М-428) и универсальные праймеры ITS1 (TCCGTAGGTGAACCTGCGG) и ITS4 (TCCTCCGCTTATTGATATGC). Реакцию проводили по следующей циклограмме: 96°С – 5 минут; 30 циклов: 94°С – 20 секунд; 57°С – 30 секунд; 72°С – 1 минута. Качественную и количественную оценку результатов ПЦР выполняли с помощью электрофореза в агарозном геле. Очистку реакционной смеси от остатков праймеров и свободных трифосфатов проводили смесью ферментов ExoI и FastSAP (Fermentas). Секвенирование ITS рДНК по Сенгеру выполняли на генетическом анализаторе ABI 3130xl в компании “Синтол” (Москва) с использованием набора BigDye v3.1 (ThermoFisher) согласно руководству пользователя и инструкции к набору. Видовую принадлежность полученных последовательностей определяли в сервисе BLAST на сайте NCBI (https://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi).

Современное таксономическое положение видов дано по базе данных: Index Fungorum (http://www.indexfungorum.org/Names/Names.asp).

Во всех опытах подсчитывали число колониеобразующих единиц (КОЕ) грибов в 1 л воды и относительное обилие видов (доля КОЕ определенного вида от общего числа других видов в данной пробе или водном объекте). Рассчитывали средние значения данных и коэффициент вариации данных (отношение стандартного отклонения к среднему значению) (Excel 2016). Для оценки сходства и различий видового состава грибов в грунтовой воде рассчитывали коэффициент Съеренсена (Mэгарран, 1992).

Результаты

Численность грибов в воде источников и колодцев Московского региона варьировала в диапазоне от 10 до 530 КОЕ в 1 л (табл. 1). Согласно санитарно-эпидемиологическим рекомендациям для питьевой воды, принятым в Швеции (не более 1000 КОЕ грибов в 1 л), вода из исследованных водных объетов не превышают допустимую норму (NFA, SLVFS 2001:30).

 

Таблица 1. Количество КОЕ грибов в воде источников и колодцев

Объект

Местоположение

Диапазон варьирования КОЕ грибов в 1 л

Среднее число КОЕ грибов в 1 л

Источник

Парк “Коломенское”, Москва

35–530

310 ± 160

Источник

Битцевский парк, Москва

60–100

80 ± 20

Источник

Парк в усадьбе “Знаменское-Садки” на территории ВНИИ Экология, Москва

10–20

13 ± 7

Источник

Мытищи, МО

40–200

123 ± 60

Колодец

д. Аладьино, Серпуховской р-н, МО

34–236

123 ± 77

Колодец

СНТ “Тарасково”, Наро-Фоминский р-н, МО

30–50

35 ± 15

 

Минимальное число КОЕ грибов установлено в воде источника в малопосещаемом парке усадьбы “Знаменское-Садки” на территории ВНИИ Экология (Москва) и в колодце на частном участке в садовом товариществе “Тарасково” Наро-Фоминского района МО. Грунтовая вода в колодце в деревне Аладьино МО и других источниках (парк в “Коломенском” и Битце) имели более высокую численность грибов. Связано это, видимо, со значительно большей известностью и доступностью данных источников. Они активно используются москвичами, а общественный колодец в Аладьино больше времени находится в открытом состоянии, из него намного чаще набирают воду, чем из частного колодца в СНТ “Тарасково”. Это приводит к увеличению взмученности воды, попаданию грибов из грунта, с которым контактирует грунтовая вода источников и в меньшей мере в колодцах. Из атмосферы попадание грибов в воду, конечно, не исключается. Но следует подчеркнуть, что новая грунтовая вода поступает непрерывно в источники и колодцы, и они расположены в чистых районах (парках), а колодцы содержат в закрытом виде. Роль каждого из этих факторов в определении состава и количества грибов в воде может существенно варьировать и в каждом случае требует дальнейших исследований.

Из воды колодцев, источников и донного грунта изолировано 118 и 45 чистых культур грибов разных морфотипов соответственно. После исключения повторных изолятов одного морфотипа для видовой идентификации взято 65 штаммов. Все они были определены до вида на основе культурально-морфологических признаков, а 48 из них также на основе секвенирования ITS рДНК (табл. 2–5).

В табл. 2 приведены результаты молекулярно-генетической идентификации 34 штаммов и их номера депонирования в Генбанке.

 

Таблица 2. Филогенетическая принадлежность штаммов грибов на основе нуклеотидной последовательности ITS рДНК

№ штамма

Вид

№ в Генбанке

Сходство, %

Объект, расположение

SH2

Thanatephorus cucumeris (A. B. Frank) Donk

OP596489

98.75

Водный источник, Мытищи, МО

SH3

Aspergillus flavus Link

OP596490

98.33

Грунт в водном источнике, Мытищи, МО

SH4

Thanatephorus cucumeris

OP596491

98.82

Грунт в водном источнике, Мытищи, МО

SH5

Mrakia gelida (Fell, Statzell, I. L. Hunter & Phaff) Y. Yamada & Komag.

OP596492

99.68

Водный источник, Мытищи, МО

SH6

Trichoderma atroviride P. Karst.

OP596493

98.34

Водный источник, Мытищи, МО

SH8

Penicillium sacculum E. Dale

OP596494

99.82

Водный источник, Мытищи, МО

SH9

Myrothecium cinctum (Corda) Sacc.

OP596495

98.04

Водный источник, Мытищи, МО

SH10

Vishniacozyma victoriae (M. J. Montes, Belloch, Galiana, M. D. García, C. Andrés, S. Ferrer, Torr.-Rodr. & J. Guinea) Xin Zhan Liu, F. Y. Bai, M. Groenew. & Boekhout

OP596496

98.61

Водный источник, Мытищи, МО

SH11

Trichoderma atroviride

OP596497

99.64

Водный источник, Мытищи, МО

SH12

T. longibrachiatum Rifai

OP596498

99.83

Водный источник, Мытищи, МО

SH13

T. citrinoviride Bissett

OP596499

98.15

Колодец, д. Аладьино, Серпуховской р-н, МО

SH14

Mrakia gelida

OP596500

98.95

Колодец, д. Аладьино, Серпуховской р-н, МО

SH15

Phlebia acerina Peck

OP596501

99.99

Колодец, д. Аладьино, Серпуховской р-н, МО

SH16

Aspergillus versicolor (Vuill.) Tirab.

OP596502

100

Колодец, д. Аладьино, Серпуховской р-н, МО

SH17

A. oryzae (Ahlb.) Cohn

OP596503

99.65

Колодец, д. Аладьино, Серпуховской р-н, МО

SH18

Penicillium corylophilum Dierckx

OP596504

99.40

Колодец, д. Аладьино, Серпуховской р-н, МО

SH19

Cytospora leucostoma (Pers.) Sacc.

OP596505

99.66

Водный источник, парк “Коломенское”, Москва

SH20

Penicillium expansum Link

OP596506

98.64

Водный источник, парк “Коломенское”, Москва

SH21

Mucor hiemalis Wehmer

OP596507

99.35

Водный источник, парк “Коломенское”, Москва

SH23

Penicillium restrictum J. C. Gilman & E. V. Abbott

OP596508

99.81

Водный источник, парк “Коломенское”, Москва

SH24

Fusarium tricinctum (Corda) Sacc.

OP596509

99.82

Водный источник, парк “Коломенское”, Москва

SH27

Cladosporium sphaerospermum Penz.

OP596510

100.00

Водный источник, Битцевский парк, Москва

SH28

Mrakia gelida

OP596511

100.00

Водный источник, Битцевский парк, Москва

SH30

Fusarium oxysporum Schltdl.

OP596512

99.80

Водный источник, Битцевский парк, Москва

 

№ штамма

Вид

№ в Генбанке

Сходство, %

Объект, расположение

SH32

F. oxysporum

OP596513

100.00

Водный источник, Парк в усадьбе “Знаменское-Садки”, Москва

SH33

Myrothecium leucotrichum (Peck) M. C. Tulloch

OP596514

99.47

Водный источник, парк в усадьбе “Знаменское-Садки”, Москва

SH34

Candida zeylanoides (Castell.) Langeron & Guerra

OP596515

99.66

Водный источник, парк в усадьбе “Знаменское-Садки”, Москва

SH35

Phoma herbarum Westend.

OP596516

98.28

Водный источник, парк в усадьбе “Знаменское-Садки”, Москва

SH36

Mucor hiemalis

OP596517

98.73

Водный источник, парк в усадьбе “Знаменское-Садки”, Москва

SH39

Trichoderma harzianum Rifai

OP596518

99.12

Водный источник, парк в усадьбе “Знаменское-Садки”, Москва

SH41

Penicillium goetzii J. Rogers, Frisvad, Houbraken & Samson

OP596519

99

Водный источник, парк в усадьбе “Знаменское-Садки”, Москва

SH43

Trichoderma citrinoviride Bissett

OP596520

100

Колодец, СНТ “Тарасково”, Наро-Фоминский р-н, МО

SH44

Penicillium chrysogenum Thom

OP596521

100

Колодец, СНТ “Тарасково”, Наро-Фоминский р-н, МО

SH47

Trichoderma harzianum

OP596522

99.83

Колодец, СНТ “Тарасково”, Наро-Фоминский р-н, МО

Sh7

Alternaria alternata (Fr.) Keissl.

–*

97.34

Водный источник, Мытищи, МО

Sh26

Candida solani Lodder & Kreger

97.25

Водный источник, Битцевский парк, Москва

Sh29

Galactomyces pseudocandidum de Hoog & M. T. Sm.

95.45

Водный источник, Битцевский парк, Москва

SH31

Absidia cylindrospora var. nigra Hesselt. & J. J. Ellis

94.45

Водный источник, парк в усадьбе “Знаменское-Садки”, Москва

Sh42

Penicillium goetzii

97.35

Колодец, СНТ “Тарасково”, Наро-Фоминский р-н, МО

Sh46

Trichoderma citrinoviride

97.55

Колодец, СНТ “Тарасково”, Наро-Фоминский р-н, МО

Sh48

T. citrinoviride

97.33

Колодец, СНТ “Тарасково”, Наро-Фоминский р-н, МО

* Нуклеотидные последовательности штаммов не депонировали в Генбанк.

 

У части изолятов из воды и грунта видовая принадлежность была установлена на основе культурально-морфологических признаков. Это были штаммы Alternaria nobilis (Vize) E. G. Simmons (АИ 2.2), Penicillium citronigrum Dierckx (АИ 0,25 1.1), Cladosporim cladosporoides (Fresen.) G.A. de Vries (МРИ 1.8), Aspergillus niger Tiegh. (МР 0,75 1.1), Plectosphaerella plurivora A.J.L. Phillips, A. Carlucci & M. L. Raimondo (МРИ 1.7), Fusarium moniliforme J. Sheld. (АИ 0,25 1.3), Aspergillus niger (АИ 0,25 2.1), Rhizopus stolonifer (Ehrenb.) Vuill. (АИ 0,25 2.5; АИ 0,25 4.2), Aspergillus fumigatus Fresen. (АИ 0,25 2.4), A. flavus (МРИ 3.1 и 3.2), Acremonium potronii Vuill. (МРИ 3.3), Penicillium chrysogenum (АИ 0,25 3.3 и МРИ 1.1), Chaetomium sp. Kunze (АИ 0,75 4), Mucor circinelloides Tiegh. (Тар) и ряд других. В итоге в грунтовой воде источников и колодцев было выявлено 46 видов и 22 вида грибов в грунте со дна 3 источников (табл. 3–6).

Таксономическая структура микобиоты в грунтовых водах колодцев и природных источников Москвы и Московской области представлена видами отдела Mucoromycota класса Mucoromycetesотдела Ascomycota классов Eurotiomycetes, Sordariomycetes, Dothideomycetes, Saccharomycetes и отдела Basidiomycota классов Agaricomycetes, Tremellomycetes (табл. 3). Наибольшее число видов (37) в грунтовых водах источников и колодцев принадлежало к отделу Ascomycota. Максимальным разнообразием – 15 видами родов Aspergillus P. Micheli ex Haller и Penicillium Link – характеризовался класс Eurotiomycetes и 13 видами родов Acremonium Link, Chaetomium, Fusarium Link, Myrothecium Tode, Plectosphaerella Kleb., Trichoderma Pers. класс Sordariomycetes. Затем следовал класс Dothideomycetes с 6 видами и класс Saccharomycetes с 3 видами (Candida solani, C. zeylanoides, Galactomyces pseudocandidus) (табл. 3). Выявленные в этих водных объектах представители отдела Basidiomycota относились к классу Tremellomycetes (Mrakia gelida, Vishniacozyma victoriae) и классу Agaricomycetes (Phlebia acerina, Psathyrella candolleana (Fr.) Maire, Thanatephorus cucumeris). Грибы отдела Mucoromycota класса Mucoromycetes были представлены 4 видами – Absidia cylindrospora var. nigra, Mucor circinelloides, M. hiemalis и Rhizopus stolonifer (табл. 3).

 

Таблица 3. Таксономическая принадлежность грибов в природных источниках грунтовых вод и колодцах

Вид

Класс

Отдел

Absidia cylindrospora var. nigra

Mucoromycetes

Mucoromycota

Mucor circinelloides

M. hiemalis

Rhizopus stolonifer

Alternaria alternata

Dothideomycetes

Ascomycota

A. nobilis

Amorocoelophoma cassia Jayasiri, E.B.G. Jones & K. D. Hyde

Cladosporium cladosporioides

C. sphaerospermum

Phoma herbarum

Aspergillus flavus

Eurotiomycetes

A. fumigatus

A. niger

A. oryzae

A. versicolor

Penicillium brevicompactum Dierckx

P. chalabudae Visagie

P. chrysogenum

P. citreonigrum

P. corylophilum

P. glabrum (Wehmer) Westling

P. goetzii

P. expansum

P. restrictum

P. sacculum

Candida solani

Saccharomycetes

C. zeylanoides

Galactomyces pseudocandidus

Acremonium potronii

Sordariomycetes

Chaetomium sp.

Cytospora leucostoma

Fusarium moniliforme

F. oxysporum

F. tricinctum

Myrothecium cinctum

M. leucotrichum

Plectosphaerella plurivora

Trichoderma atroviride

T. citrinoviride

T. harzianum

T. longibrachiatum

Mrakia gelida

Tremellomycetes

Basidiomycota

Vishniacozyma victoriae

Phlebia acerina

Agaricomycetes

Psathyrella candolleana

Thanatephorus cucumeris

 

Таблица 4. Видовой состав грибов в грунтовой воде из источников и колодцев

Вид

Номера источников и колодцев*

1

2

3

4

5

6

Absidia cylindrospora var. nigra

–**

+

Acremonium potronii

+

Alternaria alternata

+

A. nobilis

+

Amorocoelophoma cassiae

+

Aspergillus flavus

+

+

+

A. fumigatus

+

A. niger

+

+

+

+

+

A. oryzae

+

A. versicolor

+

Candida solani

+

C. zeylanoides

+

Chaetomium sp.

+

Cladosporium cladosporioides

+

+

+

+

C. sphaerospermum

+

Cytospora leucostoma

+

Fusarium moniliforme

+

F. oxysporum

+

+

F. tricinctum

+

Galactomyces pseudocandidus

+

Mrakia gelida

+

+

+

+

+

+

Mucor circinelloides

 

+

M. hiemalis

+

+

+

Myrothecium cinctum

+

M. leucotrichum

+

Penicillium brevicompactum

+

P. chalabudae

+

P. chrysogenum

+

+

+

P. citreonigrum

+

P. corylophilum

+

P. glabrum

+

P. goetzii

+

P. expansum

+

P. restrictum

+

P. sacculum

+

Phlebia acerina

+

Phoma herbarum

+

Plectosphaerella plurivora

+

Psathyrella candolleana

+

Rhizopus stolonifer

+

+

+

Thanatephorus cucumeris

+

Trichoderma atroviride

+

T. citrinoviride

+

+

T. harzianum

+

+

T. longibrachiatum

+

Vishniacozyma victoriae

+

Число видов

16

16

10

11

10

6

* 1 – источник, г. Мытищи, МО, 2 – колодец, д. Аладьино, Серпуховской район, МО, 3 – источник, парк “Коломенское”, г. Москва, 4 – источник, Битцевский парк, г. Москва, 5 – источник, парк в усадьбе “Знаменское-Садки”, г. Москва, 6 – колодец, СНТ “Тарасково” Наро-Фоминского района МО, ** выявлен вид +, не обнаружен –.

 

Сравнительный анализ состава видов в исследованных источниках и колодцах показал, что характерными для этих экотопов, выявленными в большинстве из них, являются грибы Mrakia gelida, родов Aspergillus (A. niger), Cladosporium Link, Penicillium (P. chrysogenum), Fusarium (F. oxysporum), Trichoderma (T. harzianum), Candida Berkhout, Alternaria Nees и порядка Mucorales (Mucor hiemalis, Rhizopus stolonifer) (табл. 3). Виды Penicillium chrysogenum, Cladosporium cladosporioides, Rhizopus stolonifer, Mucor hiemalis, Trichoderma harzianum, T. atroviride, T. citrinoviride, Aspergillus spp., Fusarium oxysporum, Candida zeylanoides, Mrakia gelida характеризовались наибольшим относительным обилием в пробах воды из источников и колодцев. Число КОЕ этих таксонов грибов варьировало в диапазоне от единиц до двух десятков КОЕ в 1 л в разных водных объектах (табл. 5).

 

Таблица 5. Численность грибов часто встречающихся таксонов в воде источников и колодцев

Таксон

Номера источников и колодцев*

1

2

3

4

5

6

КОЕ/л

Aspergillus spp.

12

25

1

4

2

 

Candida zeylanoides

**

  

3

  

Cladosporium cladosporioides

1

1

1

1

  

Fusarium oxysporum

 

3

  

4

4

Mrakia gelida

6

6

1

2

1

4

Mucor spp., Rhizopus stolonifer

1

4

9

3

2

1

Penicillium spp.

18

21

20

7

6

7

Trichoderma spp.

12

7

  

4

5

* 1 – источник, г. Мытищи, МО, 2 – колодец, д. Аладьино, Серпуховской район МО, 3 – источник, парк “Коломенское”, г. Москва, 4 – источник, Битцевский парк, г. Москва, 5 – источник, парк в усадьбе “Знаменское-Садки”, г. Москва, 6 – колодец, СНТ “Тарасково” Наро-Фоминского района МО.

** пустая клетка – вид не обнаружен или его численность ниже 1 КОЕ/л

 

Между данными водными объектами обнаружены заметные отличия. Они выражаются как в составе грибов, так и в их видовом разнообразии в источниках и колодцах. Это подтверждают коэффициенты сходства Съеренсена между микобиотой изученных экотопов, они не превышают 20–35% в большинстве случаев. Так, в воде колодца д. Аладьино и “Тарасково” отмечено выше, чем в других водных объектах, разнообразие микромицетов рода Trichoderma, в колодце д. Аладьино также больше видов родов AspergillusPenicillium, в источниках в г. Мытищи рода Cladosporium (табл. 3). Многие виды были обнаружены только в определенном источнике или колодце. По числу КОЕ разных таксонов изученные объекты также различаются, что ясно демонстрируют данные табл. 5.

Различия в видовом богатстве грибов в целом соответствовали тем, что были обнаружены в их общей численности в этих водных объектах. В тех пробах грунтовой воды, где выше общее число КОЕ грибов, как правило, видовое разнообразие было больше.

Максимальное разнообразие грибов выявлено в пробах грунтовой воды из источников в г. Мытищи МО и из колодца в деревне Аладьино Серпуховского района МО – по 16 видов (табл. 3). Наименьшее количество видов было в пробах воды из колодца с частного участка в садовом товариществе “Тарасково” Наро-Фоминского района МО – 6 видов. Из воды источника в парке “Знаменское-Садки” в Москве выделено 10 видов, а из источников в парке “Коломенское” и Битцевском парке Москвы по 10 и 11 видов соответственно.

Состав грибов в воде в значительной мере сходен с таковым в грунте источника, об этом свидетельствуют данные в табл. 3 и 6, и подтверждают довольно высокие (не менее 60%) коэффициенты сходства Съеренсена. Это указывает на донный грунт как существенный источник контаминации грибами воды.

Обсуждение результатов

В обследованных источниках грунтовых вод и колодцах Москвы и Московской области количество культивируемых грибов варьировало в среднем от 10 до 300 КОЕ в 1 л. Эти значения не превышают, а в несколько раз ниже показателей числа КОЕ грибов в 1 л питьевой воды, принятых в Швеции (Babič et al., 2017). В России, как и большинстве стран, количественные микологические критерии для такой оценки воды отсутствуют.

В составе микобиоты в изученных источниках грунтовых вод и колодцев не обнаружено первично водных зооспоровых грибов отделов Chytridiomycota, Rozellomycota и родственных таксонов. Это, возможно, связано с тем, что в работе не использовали необходимые для их выделения специальные среды и методы приманок и метагеномный подход. Вместе с тем эти грибы к тому же и не могут быть обильно представлены в подземных водах. Многие из них паразиты на других организмах или используют для питания специфические субстраты (Gleason et al., 2010). Это подтверждают и данные по изучению микобиоты в источниках грунтовых вод в Исландии с использованием ДНК-баркодинга (Wurzbacher еt al., 2020). Применение метагеномного подхода показало, что число операционных таксономических единиц (ОТЕ) представителей отделов Chytridiomycota и Rozellomycota в них в отличие от поверхностных вод, было крайне мало или их не обнаруживали (Wurzbacher еt al., 2020). Сходные результаты о хитридиомицетах получены для грунтовых вод с больших глубин (Sohlberg et al., 2015).

Среди грибов, выявленных нами в источниках грунтовых вод и колодцах, подавляющее большинство – наземные виды, но есть ряд таких, которые регулярно встречаются в подземных водах, водоемах и реках. Наиболее часто из грунтовой воды мы изолировали Penicillium chrysogenum, Trichoderma atroviride, T. citrinoviride, Cladosporium cladosporioides, T. harzianum, Aspergillus niger, Fusarium oxysporum, Candida zeylanoidesреже родов Absidia Tiegh., Acremonium, Alternaria, Galactomyces Redhead & Malloch, Phoma Sacc. и ряд других. Наряду с аскомицетами постоянно выделяли из грунтовых вод виды отдела Mucoromycota – Mucor hiemalis, M. circinelloides, Rhizopus stolonifer, Absidia cylindrospora var. nigraИз базидиомицетов были обнаружены тремеломицеты (Mrakia gelida, Vishniacozyma victoriae), выявление агарикомицетов обусловлено, по всей очевидности, нахождением источников в крупных парковых зонах, где эти грибы обитают и их пропагулы попадают в воду.

Грибы данных таксонов выделяли из грунтовых вод в других регионах мира (Babič et al., 2017). В первую очередь, как и в нашем случае, грибы аскомицетного аффинитета родов Acremonium, Alternaria, Aspergillus, Beauveria Vuill., Chrysosporium Corda, Cladosporium, Fusarium, Geomyces Traaen, Geotrichum Link, Gliocladium Corda, Graphium Corda, Paecilomyces Bainier, Penicillium, Scedosporium Sacc. ex Castell. & Chalm., Scopulariopsis Bainier, Sepedonium Link, Stachybotrys Corda, Trichoderma и Verticillium Nees (Wurzbacher et al., 2011; Krauss et al., 2011), отдела Mucoromycota родов Absidia, Mortierella Coem., Mucor Fresen., Rhizopus Ehrenb. и Umbelopsis Amos & H. L. Barnett (Frankova, Horecka, 1995; Arvanitidou et al.,1999; Göttlich et al., 2002; Goncalves et al., 2006; Hayette et al., 2010; Oliveira et al., 2013; Babič et al., 2016), а из базидиомицетов – тремеломицетов и дрожжей (Frankova, Horecka, 1995; Arvanitidou et al., 1999; Göttlich et al., 2002; Pereira et al., 2010).

Обнаруженные нами таксоны грибов были выявлены в подземных водах и на очень больших глубинах – 296–798 м – в Финляндии (Sohlberg еt al., 2015). Большинство нуклеотидных последовательностей грибов в грунтовой воде на этих глубинах принадлежало к отделу Ascomycota, в меньшей мере отделу Basidiomycota и редко – Chytridiomycota. Доминирующими классами аскомицетов в глубоких водоносных горизонтах коренных пород были Sordariomycetes, Eurotiomycetes, Dothideomycetes, а среди базидиомицетов виды классов Microbotryomycetes и Tremellomycetes (Sohlberg еt al., 2015). Эти данные почти полностью соответствуют той таксономической структуре грибной биоты, что установлена нами в грунтовых водах природных источников и колодцев Московского региона (табл. 3).

Грунтовые воды имеют определенную специфику в физико-химических условиях, к которым должны приспосабливаться грибы. Они характеризуются олиготрофными, низкотемпературными условиями, ограниченным поступлением кислорода и органических веществ фототрофов (растений, водорослей), но в них может быть больше, чем в поверхностных водоемах, содержание неорганических соединений. Однако небольшие количества в основном моно- или полисахаридами попадают в грунтовые воды из остатков бактериальных биопленок (Sohlberg еt al., 2015).

Вышеуказанные виды в большинстве своем обнаруживают не только в грунтовых водах и водоемах, но чаще в почвах разных типов, растениях, субстратах животного происхождения (Domsch еt al., 2007). Но многие из них при попадании в воду способны там длительно существовать и функционировать, адаптированы к анаэробным и олиготрофным условиям и гипоксии, повышенному содержанию диоксида углерода, способны к спиртовому брожению, могут переходить к дрожевому росту (Кураков и др., 2007; 2011; Головченко и др., 2013; Domsch еt al., 2007). Важный факт – это наличие грибов в грунтовых водах даже на большой глубине (Sohlberg еt al., 2015). Исследование физиологических свойств грибов, выделенных традиционными методами культивирования из этих экотопов, указывает на то, что они адаптированы и способны расти в подземной водной среде (Ekendahl et al., 2003). Известно, что виды рода Fusarium присутствуют в воде в составе биопленок. Они не только выдерживают недостаток кислорода, но и растут в анаэробных условиях путем адаптации своего метаболизма и формы роста (Кураков и др., 2007; Wurzbacher et al., 2011). Виды из родов AspergillusTrichodermaNectria (Fr.) Fr., Fusarium и Penicillium, растущие как факультативные анаэробы, используют нитрат или нитрит в качестве альтернативных конечных акцепторов электронов в отсутствие кислорода (Кураков и др., 1997; Shoun et al., 1992). Некоторые виды Mucor переходят в дрожжеподобную форму в анаэробных условиях (Кураков и др., 2007; Domsch еt al., 2007). Mrakia gelida, характерный для грунтовых вод Московского региона, является психрофильным видом, широко распространен в холодных местообитаниях, в арктических, альпийских водных и наземных экосистемах. Обнаружено, что грибы активны и продуцируют рибосомы в подземной олиготрофной водной среде (Miettinen et al., 2015).

Знание специфики микобиоты в этой подземной водной эконише и путей грибной контаминации воды актуально как с научной, так и санитарно-эпидемиологической точки зрения, и необходимы дальнейшие исследования в этом направлении.

Многие виды грибов могут попасть в воду из грунта, через который проходит водоток, о чем свидетельствуют данные посевов из них (табл. 6). В большей мере это происходит, если источник довольно энергично выбрасывает воду и поднимает со дна различные минеральные и органические частицы с сорбируемыми на них микроорганизмами. В колодцах воды часто чище, так как частицы грунта постепенно осаждаются на дно. Определенный вклад в состав микобиоты вносят и виды из воздуха, но при отборе только что вышедшей на поверность грунтовой воды или в случае закрытых колодцев он, видимо, небольшой.

 

Таблица 6. Видовой состав грибов в грунте со дна источников

Вид

Номера источников*

1

3

5

Absidia cylindrospora var. nigra

–**

+

Acremonium potronii

+

Amorocoelophoma cassiae

+

Aspergillus flavus

+

+

Candida zeylanoides

+

Cladosporium cladosporioides

+

+

Fusarium oxysporum

+

Mucor hiemalis

+

+

Myrothecium cinctum

+

M. leucotrichum

+

Penicillium brevicompactum

+

P. chalabudae

+

P. chrysogenum

+

+

P. expansum

+

P. restrictum

+

P. sacculum

+

Phoma herbarum

+

Plectosphaerella plurivora

+

Psathyrella candolleana

+

Thanatephorus cucumeris

+

Trichoderma harzianum

+

Vishniacozyma victoriae

+

* 1 – источник, г. Мытищи, МО, 3 – источник в парке “Коломенское”, г. Москва, 5 – источник в парке “Знаменское-Садки”, г. Москва, ** – вид не обнаружен, + вид выявлен.

 

Для установления, насколько меняется микобиота в отбираемых пробах питьевой воды в источниках и колодцах от той, что есть исходно в грунтовых водах под землей, и насколько значима контаминация её грибами из грунта, почвы и воздуха в месте выхода на поверхность, нужны дополнительные исследования. Это важно, так как в воде источников и колодцев, как и в нашем случае, регулярно выявляются виды, потенциально опасные для иммунокомпетенных людей.

Условно-патогенные грибы быстро используют в своих интересах ослабленную иммунную систему, вызванную такими заболеваниями, как ВИЧ/СПИД, или медикаментозной терапией, связанной, например, с трансплантацией органов и лечением рака (Sammon, Harrover, 2008). Наличие в воде микромицетов родов Acremonium и Penicillium способно изменить ее вкус и запах. Грибы Aspergillus, Penicillium, Candida, Fusarium, мукоровые, встречающиеся часто в водных источниках, могут у иммунокомпетентных людей вызвать заболевания почек, расстройств печени, ухудшение состояния ожогов, усиление отитов и способны вызывать аллергии, астму и другие заболевания человека (Babič et al., 2017). Виды фузариоза вызывают широкий спектр инфекций у людей, включая поверхностные и локально инвазивные заболевания. Основными воротами проникновения для Fusarium spp. являются дыхательные пути, за которыми следует кожа в месте разрушения тканей и, возможно, слизистые оболочки. Установлено, что принятие душа водой, контаминированной грибами родов Alternaria, Acremonium, Aspergillus, Cladosporium, Fusarium, Paecilomyces и Penicillium, регулярно вызывало проявление астмы и раздражение кожи у пациентов (Anaissie et al., 2003).

Отсутствие интереса к этим проблемам, возможно, связано и с коварной природой оппортунистических грибных инфекций человека (не столь явной на начальной стадии) по сравнению с передаваемыми через воду эпидемическими заболеваниями, вызываемыми патогенными бактериями, вирусами и протистами. Для скорейшего их признания, а тенденция этого в мире существует, и введения микологических критериев в оценку качества воды необходимы как дальнейшие исследования, так и заинтересованность санитарной службы, организаторов системы здравоохранения.

Работа выполнена при финансовой поддержке Министерства науки и высшего образования Российской Федерации (соглашение 075-15-2021-1396).

Бюджетная тема «Экофизиология, цитология и генетика грибов как основа разумной природы менеджмент и биотехнологии» Государственная регистрация № (ЕГИСУ НИОКР) 121032300079-4, грант РФФИ (Проект № 18-29-25073).

Этическое одобрение

Эта работа не содержит каких-либо исследований с участием людей и животных.

Конфликт интересов

Авторы данной работы заявляют, что у них нет конфликта интересов.

×

Об авторах

А. В. Кураков

Московский государственный университет имени М. В. Ломоносова

Email: kurakov57@mail.ru

биологический факультет

Россия, ул. Колмогорова, 1 строение 12, Москва, 119234

А. А. Шумакова

Московский государственный университет имени М. В. Ломоносова

Email: kurakov57@mail.ru

биологический факультет

Россия, ул. Колмогорова, 1 строение 12, Москва, 119234

М. Д. Федорова

Московский государственный университет имени М. В. Ломоносова

Автор, ответственный за переписку.
Email: kurakov57@mail.ru

биологический факультет

Россия, ул. Колмогорова, 1 строение 12, Москва, 119234

Список литературы

  1. Воронин Л.В. Оппортунистические грибы в пресноводных экосистемах // Ярославский педагогический вестник. 2013. Т. 3 (Естественные науки). № 2. С. 67–74.
  2. Головченко А.В., Кураков А.В., Семенова Т.А., Звягинцев Д.Г. Обилие, разнообразие, жизнеспособность и факторная экология грибов в торфяниках // Почвоведение. 2013. № 1. С. 80–97.
  3. ГОСТ 31942–2012. Вода. Отбор проб для микробиологического анализа. Официальное издание. М.: Стандартинформ, 2019. 23 с.
  4. Кураков А.В., Лаврентьев Р.Б., Соина В.С. Культурально-морфологические особенности роста мицелиальных микроскопических грибов в анаэробных условиях // Микология и фитопатология. 2007. Т. 41, вып. 6. С. 526–535.
  5. Кураков А.В., Пахненко О.А., Костина Н.В., Умаров М.М. Образование закиси азота микроскопическими грибами на питательных средах и в стерильной почве // Почвоведение. 1997. № 12. C. 1497–1503.
  6. Кураков А.В., Хидиров К.С., Садыкова В.С., Звягинцев Д.Г. Способность к анаэробному росту и активность спиртового брожения у микроскопических грибов // Прикладная биохимия и микробиология. 2011. Т. 47. № 2. С. 169–173.
  7. Мэгарран Э. Экологическое разнообразие и его измерение. Пер. с англ. М.: Мир, 1992. 184 с.
  8. Пивкин М.В., Кузнецова Т.А., Сова В.В. Морские грибы и их метаболиты. Владивосток: Дальнаука, 2006. 286 с.
  9. СанПиН 1.2.3685-21. Гигиенические нормативы и требования к обеспечению безопасности и (или) безвредности для человека факторов среды обитания. Официальное издание. М.: Стандартинформ, 2021. 365 с.
  10. СанПиН 2.1.3684-21. Санитарно-эпидемиологические требования к содержанию территорий городских и сельских поселений, к водным объектам, питьевой воде и питьевому водоснабжению атмосферному воздуху, почвам, жилым помещениям, эксплуатации производственных, общественных помещ. Официальное издание. М.: Стандартинформ, 2021. 75 с.
  11. Anaissie E.J., Stratton S.L., Dignani M.C., Lee C., Summerbell R.C., Rex J.H. Pathogenic molds (including Aspergillus species) in hospital water distribution systems: a 3-year prospective study and clinical implications for patients with hematologic malignancies // Blood. 2003. V. 101. P. 2542–2546.
  12. Arvanitidou M., Kanellou K., Constantinides T.C., Katsouyannopoulos V. The occurrence of fungi in hospital and community potable waters // Letters in Applied Microbiology. 1999. V. 29. P. 81–84.
  13. Babič M., Zalar P., Ženko B., Džeroski S., Gunde-Cimerman N. Yeasts and yeast-like fungi in tap water and groundwater, and their transmission to household appliances // Fungal Ecol. 2016. V. 20. P. 30–39.
  14. Babič M.N., Gunde-Cimerman N., Vargha M., Tischner Z., Magyar D., Veríssimo C., Sabino R., Viegas C., Meyer W., Brandão J. Fungal Contaminants in Drinking Water Regulation? A Tale of Ecology, Exposure, Purification and Clinical Relevance // Int. J. Environ. Res. Public Health. 2017. V. 14. № . 6. P. 636.
  15. Crous P.W., Braun U., Schubert K., Groenewald J.Z. The genus Cladosporium and similar dematiaceous hyphomycetes // Stud. Mycol. 2007. V. 58. P. 1–253.
  16. Domsch K.H., Gams W., Anderson T.H. Compendium of Soil Fungi, 2nd ed. Eching: IHW-Verlag, 2007. 672 p.
  17. Ekendahl S., O’Neill A.H., Thomsson E., Pedersen K. Characterisation of Yeasts Isolated from Deep Igneous Rock Aquifers of the Fennoscandian Shield // Microbial Ecology. 2003. V. 46. № 4. P. 416–428.
  18. Frankova E., Horecka M. Filamentous soil fungi and unidentified bacteria in drinking water from wells and water mains near Bratislava // Microbiol. Res. 1995. V. 150. P. 311–313. 7
  19. Gessner M., van Ryckegem G. Water Fungi as Decomposers in Freshwater Ecosystems. In Encyclopedia of Environmental Microbiology. Bitton G. (Ed.). New York: Wiley, 2003. P. 1–38.
  20. Gleason F., Schmidt K., Marano V. Can zoosporic true fungi grow or survive in extreme or stressful environments? // Extremophiles. 2010. V. 14. P. 417–425.
  21. Gonçalves A.B., Paterson R.R.M., Lima N. Survey and significance of filamentous fungi from tap water // Int. J. Hyg. Environ. Health. 2006. V. 209. P. 257–264.
  22. Göttlich E., van der Lubbe W., Lange B., Fiedler S., Melchert I., Reifenrath M., Flemming H.-C., de Hoog S. Fungal flora in groundwater-derived public drinking water // International Journal of Hygiene and Environmental Health. 2002. V. 200. P. 269–279. 11
  23. Hageskal G., Gaustad P., Heier B.T., Skaar I. Occurrence of moulds in drinking water // Journal of Applied Microbiology. 2007. V. 102. P. 774–780.
  24. Hayette M.-P., Christiaens G., Mutsers J., Barbier C., Huynen P., Meli P., de Mol P. Filamentous fungi recovered from the water distribution system of a Belgian university hospital // Med. Mycol. 2010. V. 48. P. 969–974.
  25. Jones E.B.G., Hyde K.D., Pang K.L. Freshwater Fungi and Fungal-like Organisms. Berlin; Boston: Walter de Gruyter GmbH, 2014. 496 p.
  26. Klich M.A. Identification of common Aspergillus species. Utrecht: Centraalbureau voor Schimmelcultures, 2002. 116 p.
  27. Krauss G.-J., Solé M., Krauss G., Schlosser D., Wesenberg D., Bärlocher F. Fungi in freshwaters: Ecology, physiology and biochemical potential // FEMS Microbiol. Rev. 2011. V. 35. P. 620–651.
  28. Miettinen H., Kietäväinen R., Sohlberg E., Numminen M., Ahonen L., Itävaara M. Microbiome composition and geochemical characteristics of deep subsurface high-pressure environment, Pyhäsalmi mine Finland // Front. Microbiol. 2015. V. 6. № 1203. P. 1–16.
  29. NFA. Livsmedelsverkets Föreskrifter om Dricksvatten, SLVFS 2001:30, 1st ed. Uppsala, Sweden: National Food Administration, 2001. P. 33.
  30. Oliveira B.R., Crespo M.T., San Romão M.V., Benoliel M.J., Samson R.A., Pereira V.J. New insights concerning the occurrence of fungi in water sources and their potential pathogenicity // Water Res. 2013. V. 47. P. 6338–6347.
  31. Pereira V.J., Fernandes D., Carvalho G., Benoliel M.J., San Romão M.V., Barreto Crespo M.T. Assessment of the presence and dynamics of fungi in drinking water sources using cultural and molecular methods // Water Res. 2010. V. 44. P. 4850–4859.
  32. Raper K.B., Fennell D.I. The Genus Aspergillus. Baltimore: The Williams and Wilkins Company, 1965. 686 p.
  33. Raper K.B., Thom C., Fennell D.I. A Manual of the Penicillia. New York–London: Hafner Publishing Company, 1968. 875 p.
  34. Rifai M.A. A revision on the genus Trichoderma // Mycol. Pap. 1969. V. 116. P. 1–56.
  35. Sammon N.B., Harrower K.M. Microfungal Contamination of Municipal Water Supplies – A Review // Water. 2008. V. 35. P. 98–102.
  36. Sammon N.B., Harrower K.M., Fabbro L.D., Rob H. Reed Three Potential Sources of Microfungi in a Treated Municipal Water Supply System in Sub-Tropical Australia // International Journal of Environmental Research and Public Health. 2011. V. 8. P. 713–732.
  37. Samson R.A., Houbraken J. Phylogenetic and taxonomic studies on the genera Penicillium and Talaromyces // Stud. Mycol. 2011. V. 70. P. 1–183.
  38. Schipper M.A. On certain species of Mucor with a key to all accepted species: 2. On the genera Rhizomucor and Parasitella // Stud. Mycol. 1978. V. 17. P. 1–71.
  39. Seifert K., Morgan-Jones G., Gams W., Kendrick B. The genera of hyphomycetes. CBS Biodiversity Series 9. Utrecht: CBS-KNAW Fungal Biodiversity Centre, 2011. 997p.
  40. Shoun H., Kim D.H., Uchiyama H., Sugiyma J. Denitrification by fungi. FEMS Microbiol. Lett. 1992. Vol. 92. P. 277–282.
  41. Sohlberg E., Bomberg M., Miettinen H., Nyyssönen M., Salavirta H., Vikman M., Itävaara M. Revealing the unexplored fungal communities in deep groundwater of crystalline bedrock fracture zones in Olkiluoto, Finland // Front. Microbiol. 2015. V. 6. № 573. P. 1–11.
  42. Wurzbacher C., Kerr J., Grossart H.-P. Aquatic fungi. In The Dynamical Processes of Biodiversity: Case Studies of Evolution and Spatial Distribution, 1st ed. Grillo O., Venora G. (Eds). Rijeka: InTech, 2011. V. 1. P. 227–258.
  43. Wurzbacher C., Kreiling A.-K., Svantesson S., den Wyngaert S., Larsson E., Heeger F., Nilsson H., Pálsson S. Fungal communities in groundwater springs along the volcanic zone of Iceland // Inland Waters. 2020. V. 10. № 3. P. 418–427.
  44. Yamaguchi M.U., Rampazzo R.C.P., Yamada-Ogatta S.F., Nakamura C.V., Ueda-Nakamura T., Filho B.P.D. Yeasts and filamentous fungi in bottled mineral water and tap water from municipal supplies // Brazilian Archives of Biology and Technology. 2007. V. 50. P. 1–9.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Российская академия наук, 2024

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».