Сравнительный анализ эффективности протоколов очистки костного матрикса
- Авторы: Смоленцев Д.В.1, Лукина Ю.С.1,2, Бионышев-Абрамов Л.Л.1, Сережникова Н.Б.1,3, Васильев М.Г.1
-
Учреждения:
- Национальный медицинский исследовательский центр травматологии и ортопедии им. Н.Н. Приорова
- Российский химико-технологический университет им. Д.И. Менделеева
- Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова (Сеченовский университет)
- Выпуск: Том 31, № 3 (2024)
- Страницы: 367-380
- Раздел: Оригинальные исследования
- URL: https://bakhtiniada.ru/0869-8678/article/view/290880
- DOI: https://doi.org/10.17816/vto634164
- ID: 290880
Цитировать
Аннотация
Обоснование. Данная статья описывает протокол очистки ксеногенного костного матрикса, испытанный коллективом авторов в статье «Определение эффективности протокола децеллюляризации ксеногенного костного матрикса в исследованиях in vitro и in vivo» (результаты испытаний были описаны в журнале «Вестник травматологии и ортопедии им. Н.Н. Приорова», 2023, том 30, № 4, с. 435–447, doi: https://doi.org/10.17816/vto622849).
Цель. Провести сравнительный анализ методов физической и химической очистки ксеногенной спонгиозной костной ткани посредством томографического, морфологического исследований.
Материалы и методы. Ксеногенную спонгиозную ткань бедренных костей крупного рогатого скота фрагментировали до размеров 10×10×10 мм и обрабатывали водой, гипертоническим, гипотоническим растворами и 3% или 6% раствором перекиси водорода в различных сочетаниях. Затем применяли глубокую вторичную очистку органическими растворителями или методом сверхкритической флюидной экстракции, после чего проводили ЯМР 1Н с целью определения следов реагентов. Эффективность оптимального протокола определяли с помощью гистологического и томографического исследований с расчётом коэффициента очистки по денситометрическим показателям.
Результаты. В соответствии с расчётным по денситометрическим показателям коэффициентом очистки, межтрабекулярное пространство костной ткани после воздействия проточной водой и гипо- и гипертоническими растворами с последующей очисткой 3% раствором H2O2 недостаточно очищено, гистологический анализ показал наличие от 0 до 60% остеоцитов для разных протоколов очистки. При замене на 6% раствор H2O2 коэффициент очистки выше, однако наблюдается деструкция костной ткани. Дополнительная глубокая очистка позволяет добиться высокой степени очистки при сохранности структуры, но при применении органических растворителей их следы обнаруживаются в матриксе, в связи с чем более эффективным является использование сверхкритической флюидной экстракции.
Заключение. Последовательное использование проточной воды, 0,5% раствора NaCl, 3% раствора H2O2 с последующей обработкой в ск-CO2 является эффективным протоколом очистки ксеногенной спонгиозной костной ткани.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Дмитрий Владимирович Смоленцев
Национальный медицинский исследовательский центр травматологии и ортопедии им. Н.Н. Приорова
Автор, ответственный за переписку.
Email: SmolentsevDV@cito-priorov.ru
ORCID iD: 0000-0001-5386-1929
SPIN-код: 3702-1955
Scopus Author ID: 5720113218
ResearcherId: AAI-2081-2020
Россия, 127299, Москва, ул. Приорова, 10
Юлия Сергеевна Лукина
Национальный медицинский исследовательский центр травматологии и ортопедии им. Н.Н. Приорова; Российский химико-технологический университет им. Д.И. Менделеева
Email: lukina_rctu@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-0121-1232
SPIN-код: 2814-7745
кандидат технических наук
Россия, 127299, Москва, ул. Приорова, 10; МоскваЛеонид Львович Бионышев-Абрамов
Национальный медицинский исследовательский центр травматологии и ортопедии им. Н.Н. Приорова
Email: sity-x@bk.ru
ORCID iD: 0000-0002-1326-6794
SPIN-код: 1192-3848
Россия, 127299, Москва, ул. Приорова, 10
Наталья Борисовна Сережникова
Национальный медицинский исследовательский центр травматологии и ортопедии им. Н.Н. Приорова; Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова (Сеченовский университет)
Email: natalia.serj@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-4097-1552
SPIN-код: 2249-9762
кандидат биологических наук
Россия, 127299, Москва, ул. Приорова, 10; МоскваМаксим Геннадьевич Васильев
Национальный медицинский исследовательский центр травматологии и ортопедии им. Н.Н. Приорова
Email: VasilevMG@cito-priorov.ru
ORCID iD: 0000-0001-9810-6513
SPIN-код: 7954-6710
кандидат медицинских наук
Россия, 127299, Москва, ул. Приорова, 10Список литературы
- Dickson G., Buchanan F., Marsh D., et al. Orthopaedic tissue engineering and bone regeneration // Technol Health Care. 2007. Vol. 15, № 1. Р. 57–67.
- Brydone A.S., Meek D., Maclaine S. Bone grafting, orthopaedic biomaterials, and the clinical need for bone engineering // Proceedings of the Institution of Mechanical Engineers, Part H: Journal of Engineering in Medicine. 2010. Vol. 224, № 12. Р. 1329–1343. doi: 10.1243/09544119jeim770
- Vo T.N., Kasper F.K., Mikos A.G. Strategies for controlled delivery of growth factors and cells for bone regeneration // Advanced Drug Delivery Reviews. 2012. Vol. 64, № 12. Р. 1292–1309. doi: 10.1016/j.addr.2012.01.016
- Belthur M.V., Conway J.D., Jindal G., Ranade A., Herzenberg J.E. Bone graft harvest using a new intramedullary system // Clin Orthop. 2008. Vol. 466, № 12. Р. 2973–2980. doi: 10.1007/s11999-008-0538-3
- Conway J.D. Autograft and nonunions: morbidity with intramedullary bone graft versus iliac crest bone graft // Orthop Clin North Am. 2010. Vol. 41, № 1. Р. 75–84. doi: 10.1016/j.ocl.2009.07.006
- Schwartz C.E., Martha J.F., Kowalski P., et al. Prospective evaluation of chronic pain associated with posterior autologous iliac crest bone graft harvest and its effect on postoperative outcome // Health Qual Life Outcomes. 2009. Vol. 7. Р. 49. doi: 10.1186/1477-7525-7-49
- Sen M.K., Miclau T. Autologous iliac crest bone graft: should it still be the gold standard for treating nonunions? // Injury. 2007. Vol. 38, suppl 1. Р. S75–S80. doi: 10.1016/j.injury.2007.02.012
- Thangarajah T., Shahbazi S., Pendegrass C.J., et al. Tendon Reattachment to Bone in an Ovine Tendon Defect Model of Retraction Using Allogenic and Xenogenic Demineralised Bone Matrix Incorporated with Mesenchymal Stem Cells // PLoS One. 2016. Vol. 11, № 9. Р. e0161473. doi: 10.1371/journal.pone.0161473
- Musson D.S., Gao R., Watson M., et al. Bovine bone particulates containing bone anabolic factors as a potential xenogenic bone graft substitute // J Orthop Surg Res. 2019. Vol. 14, № 1. Р. 60. doi: 10.1186/s13018-019-1089-x
- Sackett S.D., Tremmel D.M., Ma F., et al. Extracellular matrix scaffold and hydrogel derived from decellularized and delipidized human pancreas // Sci Rep. 2018. Vol. 8, № 1. Р. 1–16. doi: 10.1038/s41598-018-28857-1
- Hussey G.S., Dziki J.L., Badylak S.F. Extracellular matrix-based materials for regenerative medicine // Nat Rev Mater. 2018. Vol. 3, № 7. Р. 159–73. doi: 10.1038/s41578-018-0023-x
- Hillebrandt K.H., Everwien H., Haep N., et al. Strategies based on organ decellularization and recellularization // Transpl Int. 2019. Vol. 32, № 6. Р. 571–85. doi: 10.1111/tri.13462
- Saldin L.T., Cramer M.C., Velankar S.S., White L.J., Badylak S.F. Extracellular matrix hydrogels from decellularized tissues: Structure and function // Acta Biomater. 2017. Vol. 49. Р. 1–15. doi: 10.1016/j.actbio.2016.11.068
- Gardin C., Ricci S., Ferroni L., et al. Decellularization and Delipidation Protocols of Bovine Bone and Pericardium for Bone Grafting and Guided Bone Regeneration Procedures // PLoS One. 2015. Vol. 10, № 7. Р. e0132344. doi: 10.1371/journal.pone.0132344
- Amirazad H., Dadashpour M., Zarghami N. Application of decellularized bone matrix as a bioscaffold in bone tissue engineering // Journal of biological engineering. 2022. Vol. 16, № 1. Р. 1–18. doi: 10.1186/s13036-021-00282-5
- Carvalho M.S., Cabral J.M.S., da Silva C.L., Vashishth D. Bone matrix non-collagenous proteins in tissue engineering: creating new bone by mimicking the extracellular matrix // Polymers. 2021. Vol. 13, № 7. Р. 1095. doi: 10.3390/polym13071095
- Keane T.J., Swinehart I.T., Badylak S.F. Methods of tissue decellularization used for preparation of biologic scaffolds and in vivo relevance // Methods. 2015. Vol. 84. Р. 25–34. doi: 10.1016/j.ymeth.2015.03.005
- Nonaka P.N., Campillo N., Uriarte J.J., et al. Effects of freezing/thawing on the mechanical properties of decellularized lungs // J Biomed Mater Res — Part A. 2014. Vol. 102, № 2. Р. 413–419. doi: 10.1002/jbm.a.34708
- Lu H., Hoshiba T., Kawazoe N., Chen G. Comparison of decellularization techniques for preparation of extracellular matrix scaffolds derived from three-dimensional cell culture // J Biomed Mater Res — Part A. 2012. Vol. 100A, № 9. Р. 2507–2516. doi: 10.1002/jbm.a.34150
- Crapo P.M., Gilbert T.W., Badylak S.F. An overview of tissue and whole organ decellularization processes // Biomaterials. 2011. Vol. 32, № 12. Р. 3233–3243. doi: 10.1016/j.biomaterials.2011.01.057
- Burk J., Erbe I., Berner D., et al. Freeze-thaw cycles enhance decellularization of large tendons // Tissue Eng Part C Methods. 2014. Vol. 20, № 4. Р. 276–284. doi: 10.1089/ten.tec.2012.0760
- Xu H., Xu B., Yang Q., et al. Comparison of decellularization protocols for preparing a decellularized porcine annulus fibrosus scaffold // PLoS One. 2014. Vol. 9, № 1. Р. e86723. doi: 10.1371/journal.pone.0086723
- Smith C.A., Board T.N., Rooney P., et al. Correction: human decellularized bone scaffolds from aged donors show improved osteoinductive capacity compared to young donor bone // PLoS One. 2017. Vol. 12, № 11. Р. e0177416. doi: 10.1371/journal.pone.0187783
- Cox B., Emili A. Tissue subcellular fractionation and protein extraction for use in mass-spectrometry-based proteomics // Nat Protoc. 2006. Vol. 1, № 4. Р. 1872e8. doi: 10.1038/nprot.2006.273
- Xu C.C., Chan R.W., Tirunagari N. A biodegradable, acellular xenogeneic scaffold for regeneration of the vocal fold lamina propria // Tissue Eng. 2007. Vol. 13, № 3. Р. 551e66. doi: 10.1089/ten.2006.0169
- Liao J., Xu B., Zhang R., et al. Applications of decellularized materials in tissue engineering: advantages, drawbacks and current improvements, and future perspectives // Journal of Materials Chemistry B. 2020. Vol. 8, № 44. Р. 10023–10049. doi: 10.1039/d0tb01534b
- Fulmer G.R., Miller A.J.M., Sherden N.H., et al. NMR Chemical Shifts of Trace Impurities: Common Laboratory Solvents, Organics, and Gases in Deuterated Solvents Relevant to the Organometallic Chemist // Organometallics. 2010. Vol. 29, № 9. Р. 2176–2179. doi: 10.1021/om100106e
- Antons J., Marascio M.G., Aeberhard P. Decellularised tissues obtained by a CO2-philic detergent and supercritical CO2 // Eur Cell Mater. 2018. Vol. 36. Р. 81–95. doi: 10.22203/eCM.v036a07/
- Smolentsev D.V., Gurin A.A., Venediktov A.A., Evdokimov S.V., Fadeev R.A. Purification of xenogeneic bone matrix by extractionwith supercritical carbon dioxide and evaluation of the obtained material // Russ J Phys Chem B. 2017. Vol. 11, № 8. Р. 1283–1287. doi: 10.1134/S1990793117080115
- Bernhardt A., Wehrl M., Paul B. Improved sterilization of sensitive biomaterials with supercritical carbon dioxide at low temperature // PLoS One. 2015. Vol. 10, № 6. Р. e0129205. doi: 10.1371/journal.pone.0129205
Дополнительные файлы
