Оценка элементного состава и рентгенологической плотности костной ткани при замещении метафизарного дефекта биокерамическими фосфат-силикатными гранулами (экспериментальное исследование)
- Авторы: Рождественский А.А.1, Дзюба Г.Г.1, Полонянкин Д.А.2
-
Учреждения:
- Омский государственный медицинский университет
- Омский государственный технический университет
- Выпуск: Том 31, № 3 (2024)
- Страницы: 351-366
- Раздел: Оригинальные исследования
- URL: https://bakhtiniada.ru/0869-8678/article/view/290879
- DOI: https://doi.org/10.17816/vto624522
- ID: 290879
Цитировать
Аннотация
Обоснование. Известно, что биокерамические имплантаты, изолированно содержащие различные соединения кальция или кремния, демонстрируют остеокондуктивный эффект при замещении посттравматических дефектов костной ткани. Совместное использование этих элементов в едином материале должно потенцировать органотипическое заполнение костной полости путём создания благоприятного ионного микроокружения и стадийной биодеградации.
Цель. Выявить корреляцию рентгенологических показателей плотности новообразованной ткани и содержания микро- и макроэлементов в костном дефекте при его замещении биокерамикой с различным массовым соотношением фосфата и силиката кальция.
Материалы и методы. Исследование выполнялось на кроликах-самцах породы белый великан, у которых после получения стандартизированного отграниченного метафизарного костного дефекта для его замещения использовали имплантаты с варьируемым соотношением фосфата кальция и силиката кальция (в пропорциях 40/60, 50/50 и 60/40 масс.%). Оценка результатов проводилась методами мультиспиральной компьютерной томографии и растровой электронной микроскопии и энергодисперсионного анализа с выявлением методом корреляционного анализа возможных связей между полученными данными.
Результаты. Количественные показатели содержания кальция и фосфора в костном регенерате во всех группах нарастали преимущественно в сроки от 30 до 60 суток, а показатели кремния, достигая максимума к 30-м суткам эксперимента, в дальнейшем монотонно снижались, что свидетельствовало об участии этого микроэлемента в пусковых регенераторных процессах, а его снижение служило маркером органотипической перестройки. В ходе элементного анализа новообразованной костной ткани при имплантации биокерамики, содержащей фосфат и силикат кальция в пропорции 60/40 масс.%, были отмечены наибольшее количество кальция, фосфора и кремния и наибольшая плотность новообразованной костной ткани, что имело прямую корреляционную связь, причём эта закономерность наблюдалась как в ранние сроки (30 суток), так и на протяжении всего экспериментального исследования.
Заключение. Анализируя полученные данные, можно сделать вывод о целесообразности изучения особенностей течения репаративного остеогенеза в зависимости от ионного окружения, а также высоком потенциале использования синтетической биокерамики в целом и перспективности применения имплантатов на основе фосфатно-силикатных композитов для замещения костных дефектов.
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Андрей Александрович Рождественский
Омский государственный медицинский университет
Автор, ответственный за переписку.
Email: Rozhdestvensky@bk.ru
ORCID iD: 0000-0002-9566-6926
SPIN-код: 3348-5229
MD
Россия, 644020, Омск, ул. Серова, 56Герман Герман Дзюба
Омский государственный медицинский университет
Email: germanort@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-4292-213X
SPIN-код: 3290-2830
доктор медицинских наук, доцент
Россия, 644020, Омск, ул. Серова, 56Денис Андреевич Полонянкин
Омский государственный технический университет
Email: apolonyankin@omgtu.ru
ORCID iD: 0000-0001-6799-3105
SPIN-код: 8251-9838
кандидат педагогических наук
Россия, ОмскСписок литературы
- Штейнле А.В. Посттравматическая регенерация костной ткани (часть 1) // Сибирский медицинский журнал. 2009. Т. 4, № 1. С. 101–108. EDN: KZFTDH
- Борзунов Д.Ю. Несвободная костная пластика по Г.А. Илизарову в проблеме реабилитации больных с дефектами и ложными суставами длинных костей // Гений ортопедии. 2011. № 2. С. 21–26. EDN: OGCTHL
- Bokov A.E., Mlyavykh S.G., Shirokova N.Y., Davydenko D.V., Orlinskaya N.Y. Current Trends in the Development of Materials for Bone Grafting and Spinal Fusion (Review) // Modern Technologies in Medicine. 2018. Vol. 10, № 4. P. 203–219. doi: 10.17691/stm2018.10.4.24
- Путляев В.И. Современные биокерамические материалы // Соровский образовательный журнал. 2004. Т. 8, № 1. С. 44–50.
- Zhou P., Xia D., Ni Z., et al. Calcium silicate bioactive ceramics induce osteogenesis through oncostatin M // Bioact Mater. 2020. Vol. 6, № 3. P. 810–822. doi: 10.1016/j.bioactmat.2020.09.018
- Persikov A.V., Brodsky B. Unstable molecules form stable tissues // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 2002. Vol. 99, № 3. P. 1101–1103. doi: 10.1073/pnas.042707899
- Громова О.А., Торшин И.Ю., Лиманова О.А. Кальций и его синергисты в поддержке структуры соединительной и костной ткани // Лечащий врач. 2014. № 5. С. 69. EDN: SCPKLN
- Mu Y., Du Z., Xiao L., et al. The Localized Ionic Microenvironment in Bone Modelling/Remodelling: A Potential Guide for the Design of Biomaterials for Bone Tissue Engineering // J Funct Biomater. 2023. Vol. 14, № 2. P. 56. doi: 10.3390/jfb14020056
- Gharbi A., Oudadesse H., El Feki H., et al. High Boron Content Enhances Bioactive Glass Biodegradation // J Funct Biomater. 2023. Vol. 14, № 7. P. 364. doi: 10.3390/jfb14070364
- Jugdaohsingh R. Silicon and bone health // J Nutr Health Aging. 2007. Vol. 11, № 2. P. 99–110.
- Zhou B., Jiang X., Zhou X., et al. GelMA-based bioactive hydrogel scaffolds with multiple bone defect repair functions: therapeutic strategies and recent advances // Biomater Res. 2023. Vol. 27, № 1. P. 86. doi: 10.1186/s40824-023-00422-6
- Скрипникова И.А., Гурьев А.В. Микроэлементы в профилактике остеопороза: фокус на кремний // Остеопороз и остеопатии. 2014. Т. 17, № 2. С. 36–40. doi: 10.14341/osteo2014236-40
- Ros-Tárraga P., Mazón P., Revilla-Nuin B., et al. High temperature CaSiO3-Ca3(PO4)2 ceramic promotes osteogenic differentiation in adult human mesenchymal stem cells // Mater Sci Eng C Mater Biol Appl. 2020. Vol. 107. P. 110355. doi: 10.1016/j.msec.2019.110355
- Misch C.E., Kircos L.T. Diagnostic imaging and techniques. Contemporary Implant Dentistry. 2nd ed. Mosby; St. Louis, 1999. P. 73–87.
- Рождественский А.А., Дзюба Г.Г., Ерофеев С.А., и др. Репаративная регенерация при замещении костного дефекта синтетическим гранулированным имплантатом на основе различных комбинаций фосфата и силиката кальция // Политравма. 2023. № 4. С. 63–71. EDN: BVAOQD
- Kupka J.R., Sagheb K., Al-Nawas B., Schiegnitz E. The Sympathetic Nervous System in Dental Implantology // J Clin Med. 2023. Vol. 12, № 8. P. 2907. doi: 10.3390/jcm12082907
- Takayama T., Imamura K., Yamano S. Growth Factor Delivery Using a Collagen Membrane for Bone Tissue Regeneration // Biomolecules. 2023. Vol. 13, № 5. P. 809. doi: 10.3390/biom13050809
- Корыткин А.А., Зыкин А.А., Захарова Д.В., Новикова Я.С. Применение обогащённой тромбоцитами плазмы при замещении очага аваскулярного некроза головки бедренной кости аллотрансплантатами // Травматология и ортопедия России. 2018. Т. 24, № 1. С. 115–122. doi: 10.21823/2311-2905-2018-24-1-115-122
- Блаженко А.Н., Родин И.А., Понкина О.Н., и др. Влияние A-PRP-терапии на репаративную регенерацию костной ткани при свежих переломах костей конечностей // Инновационная медицина Кубани. 2019. Т. 3, № 15. С. 32–38. doi: 10.35401/2500-0268-2019-15-3-32-38
- Wang Y., Kim J., Chan A., Whyne C., Nam D. A two-phase regulation of bone regeneration: IL-17F mediates osteoblastogenesis via C/EBP-β in vitro // Bone. 2018. Vol. 116. P. 47–57. doi: 10.1016/j.bone.2018.07.007
- Monageng E., Offor U., Takalani N.B., Mohlala K., Opuwari C.S. A Review on the Impact of Oxidative Stress and Medicinal Plants on Leydig Cells // Antioxidants (Basel). 2023. Vol. 12, № 8. P. 1559. doi: 10.3390/antiox12081559
- Дедов И.И., Мельниченко Г.А. Эндокринология. Москва: ГЭОТАР-Медиа, 2019. 1112 с.
- Gao M., Du Z., Dong Q., Su S., Tian L. DAP1 regulates osteoblast autophagy via the ATG16L1-LC3 axis in Graves’ disease-induced osteoporosis // J Orthop Surg Res. 2023. Vol. 18, № 1. P. 711. doi: 10.1186/s13018-023-04171-z
- Мироманов А.М., Гусев К.А. Гормональная регуляция остеогенеза: обзор литературы // Травматология и ортопедия России. 2021. Т. 27, № 4. С. 120–130. doi: 10.21823/2311-2905-1609
- Aguilar A., Gifre L., Ureña-Torres P., et al. Pathophysiology of bone disease in chronic kidney disease: from basics to renal osteodystrophy and osteoporosis // Front Physiol. 2023. Vol. 14. P. 1177829. doi: 10.3389/fphys.2023.1177829
- Hwang J., Lee S.Y., Jo C.H. Degenerative tendon matrix induces tenogenic differentiation of mesenchymal stem cells // J Exp Orthop. 2023. Vol. 10, № 1. P. 15. doi: 10.1186/s40634-023-00581-4
- Xu B., Wang X., Wu C., et al. Compound icariin enhances BMP-2 induced differentiation and signalling by targeting to connective tissue growth factor (CTGF) in SAMP6 osteoblasts // PloS One. 2018. Vol. 13, № 7. P. e0200367. doi: 10.1371/journal.pone.0200367
- Shkurupy V.A., Kim L.B., Kovner A., Cherdanceva L.A. Connective tissue and the problems of its pathological conditions // Bulletin of Siberian Medicine. 2017. Vol. 16. P. 75–85. doi: 10.20538/1682-0363-2017-4-75-85
- Mofakhami S., Salahinejad E. Biphasic calcium phosphate microspheres in biomedical applications // J Control Release. 2021. Vol. 338. P. 527–536. doi: 10.1016/j.jconrel.2021.09.004
- Kamitakahara M., Tatsukawa E., Shibata Y., et al. Effect of silicate incorporation on in vivo responses of α-tricalcium phosphate ceramics // J Mater Sci Mater Med. 2016. Vol. 27, № 5. P. 97. doi: 10.1007/s10856-016-5706-5
- Dashnyam K., Buitrago J.O., Bold T., et al. Angiogenesis-promoted bone repair with silicate-shelled hydrogel fiber scaffolds // Biomater Sci. 2019. Vol. 7, № 12. P. 5221–5231. doi: 10.1039/c9bm01103j
- Edranov S.S., Matveeva N.Y., Kalinichenko S.G. Osteogenic and Regenerative Potential of Free Gingival Graft // Bull Exp Biol Med. 2021. Vol. 171. P. 404–401. doi: 10.1007/s10517-021-05237-w
- Zhang J., Liu Y., Chen Y., et al. Adipose-Derived Stem Cells: Current Applications and Future Directions in the Regeneration of Multiple Tissues // Stem Cells Int. 2020. Vol. 2020. P. 8810813. doi: 10.1155/2020/8810813
- Karadjian M., Essers C., Tsitlakidis S., et al. Biological Properties of Calcium Phosphate Bioactive Glass Composite Bone Substitutes: Current Experimental Evidence // Int J Mol Sci. 2019. Vol. 20, № 2. P. 305. doi: 10.3390/ijms20020305
- Keshavarz M., Alizadeh P., Kadumudi F.B., et al. Multi-leveled Nanosilicate Implants Can Facilitate Near-Perfect Bone Healing // ACS Appl Mater Interfaces. 2023. Vol. 15, № 17. P. 21476–21495. doi: 10.1021/acsami.3c01717
- Полонянкин Д.А., Блесман А.И., Постников Д.В., Теплоухов А.А. Теоретические основы растровой электронной микроскопии и энергодисперсионного анализа наноматериалов: учеб. пособие. Омск: Изд-во ОмГТУ, 2019. С. 5–10.
- Чуйко А.Н., Копытов А.А. Компьютерная томография и основные механические характеристики костных тканей // Медицинская визуализация. 2012. № 1. С. 102–107. EDN: OYWKSL
- Misch C.E. Density of bone: Effect on treatment planning, surgical approach, and healing. In: Contemporary Implant Dentistry. St. Louis, MI, USA, 1993. P. 469–485.
- Яблоков А.Е. Оценка оптической плотности костной ткани при дентальной имплантации // Российская стоматология. 2019. Т. 12, № 3. С. 8–13. doi: 10.17116/rosstomat2019120318
- Baek Y.W., Lim Y.J., Kim B. Comparison of Implant Surgery Methods of Cortical Tapping and Cortical Widening in Bone of Various Density: A Three-Dimensional Finite Element Study // Materials (Basel). 2023. Vol. 16, № 8. P. 3261. doi: 10.3390/ma16083261
Дополнительные файлы
