Биомаркеры и прогностические модели тяжёлого течения COVID-19 в сравнении с сепсисом другой этиологии

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

В наиболее тяжёлой форме COVID-19 имеет общие патофизиологические, иммунологические, метаболические и клинические характеристики с классическим бактериальным сепсисом. У пациентов с тяжёлым течением COVID-19 наблюдаются проявления заболевания, характерные для сепсиса, включая острый респираторный дистресс-синдром и полиорганную недостаточность. Однако результаты исследований указывают на то, что инфекция COVID-19, вызывающая острый респираторный дистресс-синдром и септический синдром, более фатальна, чем септический синдром другой этиологии. Коронавирус SARS-CoV-2 первоначально поражает лёгкие, но при COVID-ассоциированном сепсисе причиной большинства летальных исходов является последующее поражение нескольких органов. Становится всё более очевидным, что многие пациенты, умершие от COVID-19, умерли из-за сепсиса — опасной для жизни дисфункциональной реакции на инфекцию, которая сопровождается дыхательной и полиорганной недостаточностью.

У пациентов с тяжёлыми инфекциями SARS-CoV-2 и сепсисом от всех причин обнаруживаются перекрывающиеся молекулярные характеристики. Эндотипы, отражающие различные этиологии сепсиса, идентифицированы в группах пациентов с тяжёлым течением COVID-19. Протеомика и транскриптомика цельной крови оказались полезными для идентификации патогенетических механизмов и мультимолекулярных сигнатур COVID-ассоциированного сепсиса и сепсиса другой этиологии, что позволяет разработать более конкретные критерии для ранней диагностики, классификации пациентов и обоснования терапевтического выбора.

Обнаружение эндотипов сепсиса у пациентов с COVID-19 подразумевает, что они могут быть полезны для стратификации клинического риска у пациентов с COVID-ассоциированным сепсисом и что существует потенциальная возможность лечить этих пациентов с помощью таргетной иммуномодулирующей терапии, которая корректирует дисфункциональные иммунные процессы, характерные для определённого эндотипа.

Об авторах

Сергей Григорьевич Щербак

Городская больница № 40 Курортного района; Санкт-Петербургский государственный университет

Email: b40@zdrav.spb.ru
ORCID iD: 0000-0001-5036-1259
SPIN-код: 1537-9822

д.м.н., профессор

Россия, 197706, Сестрорецк, ул. Борисова, д. 9, лит. Б

Андрей Михайлович Сарана

Санкт-Петербургский государственный университет; Комитет по здравоохранению Администрации Санкт-Петербурга

Email: asarana@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-3198-8990
SPIN-код: 7922-2751

к.м.н., доцент

Россия, Санкт-Петербург

Дмитрий Александрович Вологжанин

Городская больница № 40 Курортного административного района; Санкт-Петербургский государственный университет

Email: volog@bk.ru
ORCID iD: 0000-0002-1176-794X
SPIN-код: 7922-7302

д.м.н.

Россия, 197706, Сестрорецк, ул. Борисова, д. 9, лит. Б

Александр Сергеевич Голота

Городская больница № 40 Курортного района

Email: golotaa@yahoo.com
ORCID iD: 0000-0002-5632-3963

к.м.н., доцент

Россия, 197706, Сестрорецк, ул. Борисова, д. 9, лит. Б

Татьяна Аскаровна Камилова

Городская больница № 40 Курортного района

Email: kamilovaspb@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-6360-132X
SPIN-код: 2922-4404

к.б.н.

Россия, 197706, Сестрорецк, ул. Борисова, д. 9, лит. Б

Станислав Вячеславович Макаренко

Городская больница № 40 Курортного района; Санкт-Петербургский государственный университет

Автор, ответственный за переписку.
Email: st.makarenko@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-1595-6668
SPIN-код: 8114-3984
Россия, 197706, Сестрорецк, ул. Борисова, д. 9, лит. Б

Список литературы

  1. Buturovic L., Zheng H., Tang B., et al. A 6-mRNA host response classifier in whole blood predicts outcomes in COVID-19 and other acute viral infections // Sci Rep. 2022. Vol. 12, N 1. P. 889. doi: 10.1038/s41598-021-04509-9
  2. Schmidt K., Gensichen J., Fleischmann-Struzek C., et al. Long-term survival following sepsis // Dtsch Arztebl Int. 2020. Vol. 117, N 46. P. 775–782. doi: 10.3238/arztebl.2020.0775
  3. Antonakos N., Gilbert C., Théroude C., et al. Modes of action and diagnostic value of miRNAs in sepsis // Front Immunol. 2022. Vol. 13. P. 951798. doi: 10.3389/fimmu.2022.951798
  4. Singer M., Deutschman C.S., Seymour C.W., et al. The third international consensus definitions for sepsis and septic shock (Sepsis-3) // JAMA. 2016. Vol. 315, N 8. P. 801–810. doi: 10.1001/jama.2016.0287
  5. Formosa A., Turgeon P., Dos Santos C.C., et al. Role of miRNA dysregulation in sepsis // Mol Med. 2022. Vol. 28, N 1. P. 99. doi: 10.1186/s10020-022-00527-z
  6. Alhazzani W., Evans L., Alshamsi F., et al. Surviving sepsis campaign guidelines on the management of adults with coronavirus disease 2019 (COVID-19) in the ICU: first update // Critical Care Medicine. 2021. Vol. 49, N 3. P. e219–e234. doi: 10.1097/CCM.0000000000004899
  7. Miró Ò., Jiménez S., Llorens P., et al. Pulmonary embolism severity and in-hospital mortality: an international comparative study between COVID-19 and non-COVID patients // Eur J Intern Med. 2022. Vol. 98. P. 69–76. doi: 10.1016/j.ejim.2022.01.035
  8. Huang S., Perry A., Parra C.S., et al. Frequency of thrombosis in covid-19 patients compared to non-Covid-19 sepsis patients admitted to the intensive care unit // Blood. 2022. Vol. 140, Suppl. 1. P. 2782. doi: 10.1182/blood-2022-168088
  9. Shappell C.N., Klompas M., Kanjilal S., et al. Prevalence, clinical characteristics, and outcomes of sepsis caused by severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 versus other pathogens in hospitalized patients with COVID-19 // Crit Care Explor. 2022. Vol. 4, N 5. P. e0703. doi: 10.1097/CCE.0000000000000703
  10. Щербак С.Г., Камилова Т.А., Голота А.С., Вологжанин Д.А. Факторы риска тяжелого течения и летального исхода COVID-19 // Физическая и реабилитационная медицина, медицинская реабилитация. 2022. Т. 4, № 1. С. 14–36. doi: 10.36425/rehab104997
  11. Щербак С.Г., Сарана А.М., Вологжанин Д.А., и др. Биомаркеры хирургического сепсиса. Обзор зарубежных научно-медицинских публикаций // Клиническая практика. 2023. Т. 14, № 2. С. 66–78. doi: 10.17816/clinpract346695
  12. Щербак С.Г., Камилова Т.А., Голота А.С., и др. Патогенез лёгочных осложнений COVID-19 // Медицинский альянс. 2021. Т. 9, № 4. С. 6–25. doi: 10.36422/23076348-2021-9-4-6-25
  13. Wu M., Zou Z.Y., Chen Y.H., et al. Severe COVID-19-associated sepsis is different from classical sepsis induced by pulmonary infection with carbapenem-resistant Klebsiella pneumonia (CrKP) // Chin J Traumatol. 2022. Vol. 25, N 1. P. 17–24. doi: 10.1016/j.cjtee.2021.11.001
  14. Moser D., Feuerecker M., Biere K., et al. SARS-CoV-2 pneumonia and bacterial pneumonia patients differ in a second hit immune response model // Sci Rep. 2022. Vol. 12, N 1. P. 15485. doi: 10.1038/s41598-022-17368-9
  15. Heubner L., Hattenhauer S., Güldner A., et al. Characteristics and outcomes of sepsis patients with and without COVID-19 // J Infect Public Health. 2022. Vol. 15, N 6. P. 670–676. doi: 10.1016/j.jiph.2022.05.008
  16. Li P., Wang C., Pang S. The diagnostic accuracy of mid-regional pro-adrenomedullin for sepsis: a systematic review and meta-analysis // Minerva Anestesiol. 2021. Vol. 87, N 10. P. 1117–1127. doi: 10.23736/S0375-9393.21.15585-3
  17. Saeed K., Legramante J.M., Angeletti S., et al. Mid-regional pro-adrenomedullin as a supplementary tool to clinical parameters in cases of suspicion of infection in the emergency department // Expert Rev Mol Diagn. 2021. Vol. 21, N 4. P. 397–404. doi: 10.1080/14737159.2021.1902312
  18. De Montmollin E., Peoc’h K., Marzouk M., et al. Mid-regional pro-adrenomedullin as a prognostic factor for severe COVID-19 ARDS // Antibiotics. 2022. Vol. 11, N 9. P. 1166. doi: 10.3390/antibiotics11091166
  19. Montrucchio G., Sales G., Balzani E., et al. Effectiveness of mid-regional pro-adrenomedullin, compared to other biomarkers (including lymphocyte subpopulations and immunoglobulins), as a prognostic biomarker in COVID-19 critically ill patients: new evidence from a 15-month observational prospective study // Front Med (Lausanne). 2023. Vol. 10. P. 1122367. doi: 10.3389/fmed.2023.1122367
  20. Iwamura A.P.D., Tavares da Silva M.R., Hümmelgen A.L., et al. Immunity and inflammatory biomarkers in COVID-19: a systematic review // Rev Med Virol. 2021. Vol. 31, N 4. P. e2199. doi: 10.1002/rmv.2199
  21. Khodeir M.M., Shabana H.A., Alkhamiss A.S., et al. Early prediction keys for COVID-19 cases progression: a meta-analysis // J Infect Public Health. 2021. Vol. 14, N 5. P. 561–569. doi: 10.1016/j.jiph.2021.03.001
  22. Melo A.K.G., Milby K.M., Caparroz A.L.M.A., et al. Biomarkers of cytokine storm as red flags for severe and fatal COVID-19 cases: a living systematic review and meta-analysis // PLoS One. 2021. Vol. 16, N 6. P. e0253894. doi: 10.1371/journal.pone.0253894
  23. Bima P., Montrucchio G., Caramello V., et al. Prognostic value of mid-regional Proadrenomedullin sampled at presentation and after 72 hours in septic patients presenting to the emergency department: an observational two-center study // Biomedicines. 2022. Vol. 10, N 3. P. 719. doi: 10.3390/biomedicines10030719
  24. Zhang H., Wang Y., Qu M., et al. Neutrophil, neutrophil extracellular traps and endothelial cell dysfunction in sepsis // Clin Transl Med. 2023. Vol. 13, N 1. P. e1170. doi: 10.1002/ctm2.1170
  25. Baby S., Reljic T., Villalba N., et al. Endothelial glycocalyx-associated molecules as potential serological markers for sepsis-associated encephalopathy: a systematic review and meta-analysis // PLoS One. 2023. Vol. 18, N 2. P. e0281941. doi: 10.1371/journal.pone.0281941
  26. Goonewardena S.N., Grushko O.G., Wells J., et al. Immune-mediated glycocalyx remodeling in hospitalized COVID-19 patients // Cardiovasc Drugs Ther. 2023. Vol. 37, N 2. P. 307–313. doi: 10.1007/s10557-021-07288-7
  27. Ioannou M., Hoving D., Aramburu I.V., et al. Microbe capture by splenic macrophages triggers sepsis via T cell-death-dependent neutrophil lifespan shortening // Nat Commun. 2022. Vol. 13, N 1. P. 4658. doi: 10.1038/s41467-022-32320-1
  28. Aramburu I.V., Hoving D., Vernardis S.I., et al. Functional proteomic profiling links deficient DNA clearance with increased mortality in individuals with severe COVID-19 pneumonia // Immunity. 2022. Vol. 55, N 12. P. 2436–2453.e5. doi: 10.1016/j.immuni.2022.11.007
  29. Yang M.Y., Zheng M.H., Meng X.T., et al. Role of toll-like receptors in the pathogenesis of COVID-19: current and future perspectives // Scand J Immunol. 2023. Vol. 98, N 2. P. e13275. doi: 10.1111/sji.13275
  30. Yang J.X., Tseng J.C., Yu G.Y., et al. Recent advances in the development of toll-like receptor agonist-based vaccine adjuvants for infectious diseases // Pharmaceutics. 2022. Vol. 14, N 2. P. 423. doi: 10.3390/pharmaceutics14020423
  31. Bortolotti D., Gentili V., Rizzo S., et al. TLR3 and TLR7 RNA sensor activation during SARS-CoV-2 infection // Microorganisms. 2021. Vol. 9, N 9. P. 1820. doi: 10.3390/microorganisms9091820
  32. Menezes M.C.S., Veiga A.D.M., Martins de Lima T., et al. Lower peripheral blood toll-like receptor 3 expression is associated with an unfavorable outcome in severe COVID-19 patients // Sci Rep. 2021. Vol. 11, N 1. P. 15223. doi: 10.1038/s41598-021-94624-4
  33. Mukherjee R., Bhattacharya A., Bojkova D., et al. Famotidine inhibits toll-like receptor 3-mediated inflammatory signaling in SARS-CoV-2 infection // J Biol Chem. 2021. Vol. 297, N 2. P. 100925. doi: 10.1016/j.jbc.2021.100925
  34. Croci S., Venneri M.A., Mantovani S., et al. The polymorphism L412F in TLR3 inhibits autophagy and is a marker of severe COVID-19 in males // Autophagy. 2022. Vol. 18, N 7. P. 1662–1672. doi: 10.1080/15548627.2021.1995152
  35. Xu B., Sui Q., Hu H., et al. SAMHD1 Attenuates acute inflammation by maintaining mitochondrial function in macrophages via interaction with VDAC1 // Int J Mol Sci. 2023. Vol. 24, N 9. P. 7888. doi: 10.3390/ijms24097888
  36. Müller M.M., Baldauf C., Hornischer S., et al. Staphylococcus aureus induces tolerance in human monocytes accompanied with expression changes of cell surface markers // Front Immunol. 2023. Vol. 14. P. 1046374. doi: 10.3389/fimmu.2023.1046374
  37. Giamarellos-Bourboulis E.J., Netea M.G., Rovina N., et al. Complex immune dysregulation in COVID-19 patients with severe respiratory failure // Cell Host Microbe. 2020. Vol. 27, N 6. P. 992–1000.e3. doi: 10.1016/j.chom.2020.04.009
  38. De Oliveira Formiga R., Amaral F.C., Souza C.F., et al. Neuraminidase is a host-directed approach to regulate neutrophil responses in sepsis and COVID-19 // Br J Pharmacol. 2023. Vol. 180, N 11. P. 1460–1481. doi: 10.1111/bph.16013
  39. Chiba S. Effect of early oseltamivir on outpatients without hypoxia with suspected COVID-19 // Wien Klin Wochenschr. 2021. Vol. 133, N 7-8. P. 292–297. doi: 10.1007/s00508-020-01780-0
  40. Rohmann N., Stürmer P., Geisler C., et al. Brief research report: serum clara cell 16 kDa protein levels are increased in patients hospitalized for severe SARS-CoV-2 or sepsis infection // Front Immunol. 2022. Vol. 13. P. 1037115. doi: 10.3389/fimmu.2022.1037115
  41. Fagyas M., Fejes Z., Sütő R., et al. Circulating ACE2 activity predicts mortality and disease severity in hospitalized COVID-19 patients // Int J Infect Dis. 2022. Vol. 115. P. 8–16. doi: 10.1016/j.ijid.2021.11.028
  42. Hortová-Kohoutková M., Skotáková M., Onyango I.G., et al. Hepcidin and ferritin levels as markers of immune cell activation during septic shock, severe COVID-19 and sterile inflammation // Front Immunol. 2023. Vol. 14. P. 1110540. doi: 10.3389/fimmu.2023.1110540
  43. Protti A., Meessen J., Bottazz B., et al. Circulating pentraxin 3 in severe COVID-19 or other pulmonary sepsis // Eur J Clin Invest. 2021. Vol. 51, N 5. P. e13530. doi: 10.1111/eci.13530
  44. Seymour C.W., Liu V.X., Iwashyna T.J., et al. Assessment of clinical criteria for sepsis: for the third international consensus definitions for sepsis and septic shock (Sepsis-3) // JAMA. 2016. Vol. 315, N 8. P. 762–774. doi: 10.1001/jama.2016.0288
  45. Leisman D.E., Ronner L., Pinotti R., et al. Cytokine elevation in severe and critical COVID-19: a rapid systematic review, meta-analysis, and comparison with other inflammatory syndromes // Lancet Respir Med. 2020. Vol. 8, N 12. P. 1233–1244. doi: 10.1016/S2213-2600(20)30404-5
  46. Stolarski A.E., Kim J., Zhang Q., Remick D.G. Cytokine drizzle-the rationale for abandoning “Cytokine Storm” // Shock. 2021. Vol. 56, N 5. P. 667–672. doi: 10.1097/SHK.0000000000001769
  47. Herminghausa A., Osuchowski M.F. How sepsis parallels and differs from COVID-19 // EBioMedicine. 2022. Vol. 86. P. 104355. doi: 10.1016/j.ebiom.2022.104355
  48. Ebihara T., Matsumoto H., Matsubara T., et al. Cytokine elevation in severe COVID-19 from longitudinal proteomics analysis: comparison with sepsis // Front Immunol. 2022. Vol. 12. P. 798338. doi: 10.3389/fimmu.2021.798338
  49. Patton M.J., Orihuela C.J., Harrod K.S., et al. COVID-19 bacteremic co-infection is a major risk factor for mortality, ICU admission, and mechanical ventilation // Crit Care. 2023. Vol. 27, N 1. P. 34. doi: 10.1186/s13054-023-04312-0.
  50. Seymour C.W., Kennedy J.N., Shu W., et al. Derivation, validation, and potential treatment implications of novel clinical phenotypes for sepsis // JAMA. 2019. Vol. 321, N 20. P. 2003–2017. doi: 10.1001/jama.2019.5791
  51. Bruse N., Kooistra E.J., Jansen A., et al. Clinical sepsis phenotypes in critically ill COVID-19 patients // Crit Care. 2022. Vol. 26, N 1. P. 244. doi: 10.1186/s13054-022-04118-6
  52. Kaur S., Hussain S., Kolhe K., Kumar G. Elevated plasma ICAM1 levels predict 28-day mortality in cirrhotic patients with COVID-19 or bacterial sepsis // JHEP Rep. 2021. Vol. 3, N 4. P. 100303. doi: 10.1016/j.jhepr.2021.100303
  53. Iepsen U.W., Plovsing R.R., Tjelle K., et al. The role of lactate in sepsis and COVID-19: perspective from contracting skeletal muscle metabolism // Exp Physiol. 2022. Vol. 107, N 7. P. 665–673. doi: 10.1113/EP089474
  54. Campbell R.A., Hisada Y., Denorme F., et al. Comparison of the coagulopathies associated with COVID-19 and sepsis // Res Pract Thromb Haemost. 2021. Vol. 5, N 4. P. e12525. doi: 10.1002/rth2.12525.
  55. Karakike E., Giamarellos-Bourboulis E.J., Kyprianou M., et al. Coronavirus disease 2019 as cause of viral sepsis: a systematic review and meta-analysi // Crit Care Med. 2021. Vol. 49, N 12. P. 2042–2057. doi: 10.1097/CCM.0000000000005195
  56. Batra R., Whalen W., Alvarez-Mulett S., et al. Multi-omic comparative analysis of COVID-19 and bacterial sepsis-induced ARDS // PLoS Pathog. 2022. Vol. 18, N 9. P. e1010819. doi: 10.1371/journal.ppat.1010819
  57. Trovato F.M., Mujib S., Jerome E., et al. Immunometabolic analysis shows a distinct cyto-metabotype in Covid-19 compared to sepsis from other causes // Heliyon. 2022. Vol. 8, N 6. P. e09733. doi: 10.1016/j.heliyon.2022.e09733
  58. Huang L., Li X., Gu X., et al. Health outcomes in people 2 years after surviving hospitalisation with COVID-19: a longitudinal cohort study // Lancet Respir Med. 2022. Vol. 10, N 9. P. 863–876. doi: 10.1016/S2213-2600(22)00126-6
  59. Puntmann V.O., Martin S., Shchendrygina A., et al. Long-term cardiac pathology in individuals with mild initial COVID-19 illness // Nat Med. 2022. Vol. 28, N 10. P. 2117–2123. doi: 10.1038/s41591-022-02000-0
  60. Vassiliou A.G., Zacharis A., Vrettou C.S., et al. Comparison of the mortality prediction value of soluble urokinase plasminogen activator receptor (suPAR) in COVID-19 and sepsis // Diagnostics (Basel). 2022. Vol. 12, N 5. P. 1261. doi: 10.3390/diagnostics12051261
  61. Ming S., Qu S., Wu Y., et al. COVID-19 metabolomic-guided amino acid therapy protects from inflammation and disease sequelae // Adv Biol (Weinh). 2023. P. e2200265. doi: 10.1002/adbi.202200265
  62. Karki R., Sharma B.R., Tuladhar S., et al. Synergism of TNF-α and IFN-γ triggers inflammatory cell death, tissue damage, and mortality in SARS-CoV-2 infection and cytokine shock syndromes // Cell. 2021. Vol. 184, N 1. P. 149–168.e17. doi: 10.1016/j.cell.2020.11.025
  63. Komorowski M., Green A., Tatham K.C., et al. Sepsis biomarkers and diagnostic tools with a focus on machine learning // EBioMedicine. 2022. Vol. 86. P. 104394. doi: 10.1016/j.ebiom.2022.104394
  64. Kalil A.C., Patterson T.F., Mehta A.K., et al. Baricitinib plus remdesivir for hospitalized adults with COVID-19 // N Engl J Med. 2021. Vol. 384, N 9. P. 795–807. doi: 10.1056/NEJMoa2031994
  65. Guimarães P.O., Quirk D., Furtado R.H., et al. Tofacitinib in patients hospitalized with Covid-19 pneumonia // N Engl J Med. 2021. Vol. 385, N 5. P. 406–415. doi: 10.1056/NEJMoa2101643
  66. Helms J., Tacquard C., Severac F., et al. High risk of thrombosis in patients with severe SARS-CoV-2 infection: a multicenter prospective cohort study // Intensive Care Med. 2020. Vol. 46, N 6. P. 1089–1098. doi: 10.1007/s00134-020-06062-x
  67. Batra R., Uni R., Akchurin O.M., et al. Urine-based multi-omic comparative analysis of COVID-19 and bacterial sepsis-induced ARDS // Mol Med. 2023. Vol. 29, N 1. P. 13. doi: 10.1186/s10020-023-00609-6
  68. Schrijver I.T., Karakike E., Theroude C., et al. High levels of monocytic myeloid-derived suppressor cells are associated with favorable outcome in patients with pneumonia and sepsis with multi-organ failure // Intensive Care Med Exp. 2022. Vol. 10, N 1. P. 5. doi: 10.1186/s40635-022-00431-0
  69. Schrijver I.T., Theroude C., Antonakos N., et al. COVID-19 rapidly increases MDSCs and prolongs innate immune dysfunctions // Eur J Immunol. 2022. Vol. 52, N 10. P. 1676–1679. doi: 10.1002/eji.202249827
  70. Akula S.M., Bolin P., Cook P.P. Cellular miR-150-5p may have a crucial role to play in the biology of SARS-CoV-2 infection by regulating nsp10 gene // RNA Biol. 2022. Vol. 19, N 1. P. 1–11. doi: 10.1080/15476286.2021.2010959
  71. Nicoletti A.S., Visacri M.B., da Ronda C.R.DS.C., et al. Differentially expressed plasmatic microRNAs in Brazilian patients with Coronavirus disease 2019 (COVID-19): preliminary results // Mol Biol Rep. 2022. Vol. 49, N 7. P. 6931–6943. doi: 10.1007/s11033-022-07338-9
  72. An A.Y., Baghela A., Zhang P., et al. Severe COVID-19 and non-COVID-19 severe sepsis converge transcriptionally after a week in the intensive care unit, indicating common disease mechanisms // Front Immunol. 2023. Vol. 14. P. 1167917. doi: 10.3389/fimmu.2023.1167917
  73. Gottlieb R.L., Vaca C.E., Paredes R., et al. Early remdesivir to prevent progression to severe COVID-19 in outpatients // N Engl J Med. 2022. Vol. 386, N 4. P. 305–315. doi: 10.1056/NEJMoa2116846
  74. Weinreich D.M., Sivapalasingam S., Norton T., et al. REGEN-COV antibody combination and outcomes in outpatients with COVID-19 // N Engl J Med. 2021. Vol. 385, N 23. P. e81. doi: 10.1056/NEJMoa2108163
  75. ACTIV-3/TICO LY-CoV555 Study Group; Lundgren J.D., Grund B., et al. A neutralizing monoclonal antibody for hospitalized patients with COVID-19 // N Engl J Med. 2021. Vol. 384, N 10. P. 905–914. doi: 10.1056/NEJMoa2033130
  76. Beltrán-García J., Osca-Verdegal R., Pallardó F.V., et al. Sepsis and coronavirus disease 2019: common features and anti-inflammatory therapeutic approaches // Crit Care Med. 2020. Vol. 48, N 12. P. 1841–1844. doi: 10.1097/CCM.0000000000004625
  77. Yan Q., Li P., Ye X., et al. Longitudinal peripheral blood transcriptional analysis reveals molecular signatures of disease progression in COVID-19 patients // J Immunol. 2021. Vol. 206, N 9. P. 2146–2159. doi: 10.4049/jimmunol.2001325
  78. Olwal C.O., Nganyewo N.N., Tapela K., et al. Parallels in sepsis and COVID-19 conditions: implications for managing severe COVID-19 // Front Immunol. 2021. Vol. 12. P. 602848. doi: 10.3389/fimmu.2021.602848
  79. Cummings M.J., Jacob S.T. Equitable endotyping is essential to achieve a global standard of precise, effective, and locally-relevant sepsis care // EBioMedicine. 2022. Vol. 86. P. 104348. doi: 10.1016/j.ebiom.2022.104348
  80. Vincent J.L. Emerging paradigms in sepsis // EBioMedicine. 2022. Vol. 86. P. 104398. doi: 10.1016/j.ebiom.2022.104398
  81. Gupta S., Leaf D.E. Tocilizumab in COVID-19: some clarity amid controversy // Lancet. 2021. Vol. 397, N 10285. P. 1599–1601. doi: 10.1016/S0140-6736(21)00712-1
  82. Supady A., Zeiser R. Baricitinib for patients with severe COVID-19–time to change the standard of care? // Lancet Respir Med. 2022. Vol. 10, N 4. P. 314–315. doi: 10.1016/S2213-2600(22)00021-2
  83. Baghela A., Pena O.M., Lee A.H., et al. Predicting sepsis severity at first clinical presentation: the role of endotypes and mechanistic signatures // EBioMedicine. 2022. Vol. 75. P. 103776. doi: 10.1016/j.ebiom.2021.103776
  84. Sweeney T.E., Liesenfeld O., Wacker J., et al. Validation of inflammopathic, adaptive, and coagulopathic sepsis endotypes in coronavirus disease 2019 // Crit Care Med. 2021. Vol. 49, N 2. P. e170–e178. doi: 10.1097/CCM.0000000000004786
  85. Torres L.K., Pickkers P., van der Poll T. Sepsis-induced immunosuppression // Annu Rev Physiol. 2022. Vol. 84. P. 157–181. doi: 10.1146/annurev-physiol-061121-040214
  86. Li H., Liu L., Zhang D., et al. SARS-CoV-2 and viral sepsis: observations and hypotheses // Lancet. 2020. Vol. 395, N 10235. P. 1517–1520. doi: 10.1016/S0140-6736(20)30920-X
  87. Shafran N., Shafran I., Ben-Zvi H., et al. Secondary bacterial infection in COVID-19 patients is a stronger predictor for death compared to influenza patients // Sci Rep. 2021. Vol. 11, N 1. P. 1–8. doi: 10.1038/s41598-021-92220-0
  88. Baghela A., An A., Zhang P., et al. Predicting severity in COVID-19 disease using sepsis blood gene expression signatures // Sci Rep. 2023. Vol. 13, N 1. P. 1247. doi: 10.1038/s41598-023-28259-y
  89. Vegivinti C.T.R., Evanson K.W., Lyons H., et al. Efficacy of antiviral therapies for COVID-19: a systematic review of randomized controlled trials // BMC Infect Dis. 2022. Vol. 22, N 1. P. 1–45. doi: 10.1186/s12879-022-07068-0
  90. Park J., Dean L.S., Jiyarom B., et al. Elevated circulating monocytes and monocyte activation in COVID-19 convalescent individuals // Front Immunol. 2023. Vol. 14. P. 1151780. doi: 10.3389/fimmu.2023.1151780
  91. Cusinato M., Hadcocks L., Yona S., et al. Increased monocyte distribution width in COVID-19 and sepsis arises from a complex interplay of altered monocyte cellular size and subset frequency // Int J Lab Hematol. 2022. Vol. 44, N 6. P. 1029–1039. doi: 10.1111/ijlh.13941 93
  92. Malinovska A., Hernried B., Lin A., et al. Monocyte distribution width as a diagnostic marker for infection: a systematic review and meta-analysis // Chest. 2023. 2023. Vol. 164, N 1. P. 101–113. doi: 10.1016/j.chest.2022.12.049
  93. Koc S., Hanikoglu F., Dokur M., et al. Comparison of cytokine hemadsorption as an immunomodulator therapy in COVID-19 patients with and without bacterial sepsis // Clin Lab. 2022. Vol. 68, N 10. doi: 10.7754/Clin.Lab.2022.211249
  94. Golicnik A., Zivanovic I., Gorjup V., Berden J. Same but different-ECMO in COVID-19 and ARDS of other etiologies. comparison of survival outcomes and management in different ARDS groups // J Intensive Care Med. 2023. Vol. 38, N 7. P. 635–642. doi: 10.1177/08850666231157286
  95. Zaaqoq A., Sallam T., Merley C., et al. The interplay of inflammation and coagulation in COVID-19 patients receiving extracorporeal membrane oxygenation support // Perfusion. 2023. Vol. 38, N 2. P. 384–392. doi: 10.1177/02676591211057506

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Эко-Вектор, 2023


 


Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».