КОНФЛИКТ ФИЛОГЕНЕТИЧЕСКОГО СИГНАЛА МЕЖДУ ЯДЕРНОЙ РИВОСОМНОЙ И ПЛАСТОМНОЙ ДНК КАК СВИДЕТЕЛЬСТВО ГИБРИДНОГО ПРОИСХОЖДЕНИЯ ТЕТРАПЛОИДНОГО ПРЕДСТАВИТЕЛЯ Salicornia (Amaranthaceae s.l.)

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Виды рода Salicornia (Amaranthaceae s.l.) широко распространены по всему миру и устойчивы к засолению. Они могут использоваться в пищу и для производства биотоплива. Образование чистых линий в результате самоспыления, наряду с возможностью спорадического перекрёстного опыления, полиплоидия, высокая степень морфологической пластичности и небольшое число диагностических признаков сильно затрудняют систематику рода. Salicornia – эволюционно молодая группа, где число накопленных информативных замен в традиционно анализируемых участках ядерной и пластидной ДНК оказалось недостаточным для установления родственных связей между видами, да и сама концепция вида в этом роде остаётся предметом дискуссий. Для уточнения взаимоотношений восточноевропейских видов мы впервые с помощью высокопроизводительного секвенирования определили последовательности и провели филогенетический анализ пластомов 11 образцов, представляющих все основные морфотипы солеросов Восточной Европы, а также проанализировали вариабельность внешнего транскрибируемого спейсера ядерной pДНК (nrETS). Размеры собранных пластомов варьировали от 153 290 п.н. до 153 504 п.н. и обладали типичной архитектурой с большой однокопийной областью (длиной 84 625–84 797 п.н.), малой однокопийной областью (длиной 18 818–18 870 п.н.) и двумя инвертированными повторами (длиной 24 898–24 908 п.н). Сравнение филогенетических деревьев, реконструированных по всем доступным на сегодняшний день для Salicornia пластомным данным и nrETS-выравниваниям одних и тех же образцов солеросов, выявило несоответствие в расположении образцов тетраплоидного S. procumbens subsp. pojarkovae и S. brachiata, которые показывают родство с разными эволюционными линиями в зависимости от использования пластидных или ядерных (nrETS) данных. Наши результаты подчёркивают роль сетчатой эволюции в роде Salicornia.

Об авторах

Т. Х Самигуллин

НИИ физико-химической биологии имени А.Н. Белозерского, Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова

Email: samigul@belozersky.msu.ru
Москва, Россия

М. Д Логачева

НИИ физико-химической биологии имени А.Н. Белозерского, Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова; Центр молекулярной и клеточной биологии, Сколковский институт науки и технологий

Москва, Россия; Москва, Россия

Г. В Дегтярева

НИИ физико-химической биологии имени А.Н. Белозерского, Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова; НОЦ – Ботанический сад имени Петра I, Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова

Москва, Россия; Москва, Россия

Д. Д Соколов

Tel Aviv University

Tel Aviv, Israel

С. С Безр

ЧОУ СОШ «Обнинская свободная школа»

Обнинск, Россия

К. М Вальехо-Роман

НИИ физико-химической биологии имени А.Н. Белозерского, Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова

Москва, Россия

Список литературы

  1. Шнеер В.С., Пунина Е.О., Родионов А.В. (2018) Внутривидовые различия в плоидности у покрытосеменных и их таксономическая интерпретация, Бот. журн., 103, 555-585.
  2. 2. Doyle, J. J., and Coate, J. E. (2019) Polyploidy, the nucleotype, and novelty: the impact of genome doubling on the biology of the cell, Int. J. Plant Sci., 180, 1, https://doi.org/10.1086/700636.
  3. 3. Liu, L. X., Du, Y. X., Folk, R. A., Wang, S. Y., Soltis, D. E., Shang, F. D., and Li, P. (2020) Plastome evolution in Saxifragaceae and multiple plastid capture events involving Heuchera and Tiarella, Front. Plant Sci., 11, 361, https://doi.org/10.3389/fpls.2020.00361.
  4. 4. Boom, A. F., Migliore, J., Kaymak, E., Meerts, P., and Hardy, O. J. (2021) Plastid introgression and evolution of African miombo woodlands: new insights from the plastome-based phylogeny of Brachystegia trees, J. Biogeogr., 48, 933-946, https://doi.org/10.1111/jbi.14051.
  5. 5. Yang, Y. Y., Qu, X. J., Zhang, R., Stull, G. W., and Yi, T. S. (2021) Plastid phylogenomic analyses of Fagales reveal signatures of conflict and ancient chloroplast capture, Mol. Phylogenet. Evol., 163, 107232, https://doi.org/10.1016/j.ympev.2021.107232.
  6. 6. Baldwin, E., McNair, M., and Leebens-Mack, J. (2023) Rampant chloroplast capture in Sarracenia revealed by plastome phylogeny, Front. Plant Sci., 14, 1237749, https://doi.org/10.3389/fpls.2023.1237749.
  7. 7. Gambhir, D., Sanderson, B. J., Guo, M., Hu, N., Khanal, A., Cronk, Q., and Olson, M. S. (2025). Disentangling serial chloroplast captures in willows, Am. J. Bot., 112, 5, https://doi.org/10.1002/ajb2.70039.
  8. 8. Papini, A., Trippanera, G. B., Maggini, F., Filigheddu, R., and Biondi, E. (2004) New insights in Salicornia L. and allied genera (Chenopodiaceae) inferred from nrDNA sequence data, Pl. Biosyst., 138, 215-223, https://doi.org/10.1080/11263500400006977.
  9. 9. Murakeözy, É. P., Aïnouche, A., Meudec, A., Deslandes, E., and Poupart, N. (2007) Phylogenetic relationships and genetic diversity of the Salicornieae (Chenopodiaceae) native to the Atlantic coasts of France, Plant Syst. Evol., 264, 217-236, https://doi.org/10.1007/s00606-006-0511-0.6.
  10. 10. Kadereit, G., Ball, P., Beer, S., Mucina, L., Sokoloff, D., Teege, D. P., Yaprak, A. E., and Freitag, H. (2007) A taxonomic nightmare comes true: phylogeny and biogeography of glassworts (Salicornia L., Chenopodiaceae), Taxon, 56, 1143-1170, https://doi.org/10.2307/25065909.
  11. 11. Kaligarič, M., Bohanec, B., Simonovik, B., and Sajna, N. (2008) Genetic and morphologic variability of annual glassworts (Salicornia L.) from the Gulf of Trieste (Northern Adriatic), Aquat. Bot., 89, 275-282, https://doi.org/10.1016/j.aquabot.2008.02.003.
  12. 12. Cousins-Westerberg, R., Dakin, N., Schat, L., Kadereit, G., and Humphreys, A. M. (2023) Evolution of cold tolerance in the highly stress-tolerant samphires and relatives (Salicornieae: Amaranthaceae), Bot. J. Linnean Soc., 203, 20-36, https://doi.org/10.1093/botlinnean/boad009.
  13. 13. Vanderpoorten, A., Hardy, O. J., Lambinon, J., and Raspé, O. (2011) Two reproductively isolated cytotypes and a swarm of highly inbred, disconnected populations: a glimpse into Salicornia’s evolutionary history and challenging taxonomy, J. Evol. Biol., 24, 630–644, https://doi.org/10.1111/j.1420-9101.2010.02198.x.
  14. 14. Slenzka, A., Mucina, L., and Kadereit, G. (2013) Salicornia L. (Amaranthaceae) in South Africa and Namibia: rapid spread and ecological diversification of cryptic species, Bot. J. Linn. Soc., 172, 175-186, https://doi.org/10.1111/boj.12041.
  15. 15. Steffen, S., Ball, P., Mucina, L., and Kadereit, G. (2015) Phylogeny, biogeography and ecological diversification of Sarcocornia (Salicornioideae, Amaranthaceae), Ann. Bot., 115, 353–368, https://doi.org/10.1093/aob/mcu260.
  16. 16. Ángeles Alonso, M., Crespo, M. B., and Freitag, H. (2017) Salicornia cuscoensis (Amaranthaceae/Chenopodiaceae), a new species from Peru (South America), Phytotaxa, 319, 5, https://doi.org/10.11646/phytotaxa.319.3.4.
  17. 17. Ball, P. W., Cornejo, X., and Kadereit, G. (2017) Mangleticornia (Amaranthaceae: Salicornioideae) – a new sister for Salicornia from the Pacific coast of South America, Willdenowia, 47, 145-153, https://doi.org/10.3372/ wi.47.47206.
  18. 18. Costa, C. S. B., Kadereit, G., and Peres Moraes de Freitas, G. (2019) Molecular markers indicate the phylogenetic identity of southern Brazilian sea asparagus: first record of Salicornia neei in Brazil, Rodriguésia, 70, e03122017, https://doi.org/10.1590/2175-7860201970039.
  19. 19. Hayder, Z., Tlili, A., and Tarhouni, M. (2023) Chemical composition and forage quality of three halophytes of the genera Sarcocornia and Salicornia inhabiting the saline marginal lands of Southern Tunisia, J. Oasis Agric. Sustain Dev., 5, 1-10, https://doi.org/10.56027/JOASD.122023.
  20. 20. Ozturk, M., Altay, V., Orçen, N., Yaprak, A. E., Tuğ, G. N., and Güvensen, A. (2018) A little-known and a little-­consumed natural resource: Salicornia, in Global Perspectives on Underutilized Crops (Ozturk, M., Hakeem, K., Ashraf, M., Ahmad, M., eds), Springer, Cham, https://doi.org/10.1007/978-3-319-77776-4_3.
  21. 21. Chaturvedi, T., Christiansen, A. H. C., Gołębiewska, I., and Thomsen, M. H. (2021) Salicornia species current status and future potential, in Future of Sustainable Agriculture in Saline Environments, CRC Press, pp. 461-482.
  22. 22. Cárdenas-Pérez, S., Chanona-Pérez, J., Piernik, A., Perea-Flores, M., and Grigore, M. (2021). An overview of the emerging trends of the Salicornia L. genus as a sustainable crop, Environ. Exp. Bot., 191, 104606, https://doi.org/ 10.1016/j.envexpbot.2021.104606.
  23. 23. Kadereit, G., Piirainen, M., Lambinon, J., and Vanderpoorten, A. (2012) Cryptic taxa should have names: Reflections in the glasswort genus Salicornia (Amaranthaceae), Taxon, 61, 1227-1239, https://doi.org/10.1002/tax.616005.
  24. 24. Ball, P. W. (1964) A taxonomic review of Salicornia in Europe, Feddes Repertorium, 69, 1-8.
  25. 25. Dalby, D. H. (1962) Chromosome number, morphology and breeding behaviour in the British Salicorniae, Watsonia, 5, 150-162.
  26. 26. Contandriopoulos, J. (1968) About the chromosome numbers of Salicornia from the Mediterranean region, Bull. Museum Nat. Hist. Marseille, 28, 45-52.
  27. 27. Herrera-Gallastegui, M., Fernández-Casado, M. A., and Fernández-Prieto, J. A. (1989) The genus Salicornia L. in the estuary of the Asón River (Cantabria), Ann. Bot. Garden Madrid, 45, 551-552.
  28. 28. Runemark, H. (1996) Mediterranean chromosome number reports – 6. in ‘Flora Mediterranea’ (Eds Kamari, G., Felber, F., and Garbari, F.), pp. 223-337. (Herbarium Mediterraneum Panormitanum: Palermo, Italy).
  29. 29. Shepherd, K. A., and Yan, G. (2003) Chromosome number and size variation in the Australian Salicornioideae (Chenopodiaceae) – evidence of polyploidisation, Aust. J. Bot., 51, 441-452, https://doi.org/10.1071/BT03041.
  30. 30. Беэр С.С., Беэр А.С., Милькова Е.Д., Сутягина П.А., Фарукшина Е.Т. (2011) Новые данные о хромосомных числах Salicornia (Chenopodiaceae) в Европейской России, Бот. Журн, 96, 1135-1140.
  31. 31. Cristofolini, G, and Chiapella, L. (1970) Chemotaxonomy of the genus Salicornia from the Venetian coasts, Ital. Bot. J., 104, 91-115.
  32. 32. Ломоносова М.Н. (2005) Новые виды семейства Chenopodiaceae, Бот. журн., 90, 1248-1252.
  33. 33. Chatrenoor, T., and Akhani, H. (2021) An integrated morpho-molecular study of Salicornia (Amaranthaceae Chenopodiaceae) in Iran proves Irano-Turanian region the major center of diversity of annual glasswort species, Taxon, 70, 989-1019, https://doi.org/10.1002/tax.12538.
  34. 34. Shepherd, K. A., Waycott, M., and Calladine, A. (2004) Radiation of the Australian Salicornioideae (Chenopodiaceae) – based on evidence from nuclear and chloroplast DNA sequences, Am. J. Bot., 91, 1387-1397, https://doi.org/10.3732/ajb.91.9.1387.
  35. 35. Vanderpoorten, A., Raspé, O., Risterrucci, A. M., Gohy, L., and Hardy, O. J. (2009) Identification and characterization of eight nuclear microsatellite loci in the glasswort genus Salicornia (Amaranthaceae), Belg. J. Bot., 142, 204-208, https://doi.org/10.2307/41427187.
  36. 36. Sciuto, K., Wolf, M. A., Sfriso, A., Brancaleoni, L., Iberite, M., and Iamonico, D. (2023) Molecular and Morphometric Update on Italian Salicornia (Chenopodiaceae), with a Focus on the Species S. procumbens s.l., Plants, 12, 375, https://doi.org/10.3390/plants12020375.
  37. 37. Xu, H., Guo, Y., Xia, M., Yu, J., Chi, X., Han, Y., and Zhang, F. (2024) An updated phylogeny and adaptive evolution within Amaranthaceae sl. inferred from multiple phylogenomic datasets, Ecology and Evolution, 14, e70013, https://doi.org/10.1002/ece3.70013.
  38. 38. Цвелев Н.Н. (1996) Salicornia. Флора Восточной Европы (под ред. Цвелева Н.Н.), Т. 9, 73-74, СПб., Мир и семья-95.
  39. 39. Beer, S. S., and Demina, O. N. (2005) A new species of Salicornia (Chenopodiaceae) from European Russia, Willdenowia, 35, 253-257, https://doi.org/10.3372/wi.35.35204.
  40. 40. Сухоруков А.П., Акопян Ж.А. (2013) Конспект семейства Chenopodiaceae Кавказа, МАКС Пресс, Москва, с. 76
  41. 41. Сухоруков А.П. (2014) Карпология семейства Chenopodiaceae в связи с проблемами филогении, систематики и диагностики его представителей, Гриф и К, Тула, с. 400.
  42. 42. Piirainen, M. (2015). Pattern of morphological variation of Salicornia in north Europe, Nordic J. Bot., 33, 733-746, https://doi.org/10.1111/njb.00848.
  43. 43. Bolger, A. M., Lohse, M., and Usadel, B. (2014) Trimmomatic: a flexible trimmer for Illumina sequence data, Bioinformatics, 30, 2114-2120, https://doi.org/10.1093/bioinformatics/btu170.
  44. 44. Liu, C., Shi, L., Zhu, Y., Chen, H., Zhang, J., and Lin, X. (2012) CpGAVAS, an integrated web server for the annotation, visualization, analysis, and GenBank submission of completely sequenced chloroplast genome sequences, BMC Genomics, 13, 715, https://doi.org/10.1186/1471-2164-13- 715.
  45. 45. Lowe, T. M., and Chan, P. P. (2016) tRNAscan-SE On-line: integrating search and context for analysis of transfer RNA genes, Nucleic Acids Res., 44, W54-W57, https://doi.org/10.1093/nar/gkw413.
  46. 46. Laslett, D., and Canback, B. (2004) ARAGORN, a program to detect tRNA genes and tmRNA genes in nucleotide sequences, Nucleic Acids Res., 32, 11-16, https://doi.org/10.1093/nar/gkh152.
  47. 47. Greiner, S., Lehwark, P., and Bock, R. (2019) Organellar GenomeDRAW (OGDRAW) version 1.3.1: expanded toolkit for the graphical visualization of organellar genomes, Nucleic Acids Res., 47, W59-W64, https://doi.org/10.1093/nar/gkz238.
  48. 48. Katoh, K., and Standley, D. M. (2013) MAFFT Multiple Sequence Alignment Software version 7: improvements in performance and usability, Mol. Biol. Evol., 30, 772-780, https://doi.org/10.1093/molbev/mst010.
  49. 49. Hall, T. A. (1999) BioEdit: A user-friendly biological sequence alignment editor and analysis program for Windows 95/98/NT, Nucleic Acids Symp. Ser., 41, 95-98.
  50. 50. Kadereit, G., Mucina, L., and Freitag, H. (2006) Phylogeny of Salicornioideae (Chenopodiaceae): diversification, biogeography, and evolutionary trends in leaf and flower morphology, Taxon, 55, 617-642, https://doi.org/10.2307/25065639.
  51. 51. Koren, S., Walenz, B. P., Berlin, K., Miller, J. R., Phillippy, A. M. (2017) Canu: scalable and accurate long-read assembly via adaptive k-mer weighting and repeat separation. Genome Res., 27, 722-736, https://doi.org/10.1101/gr.215087.116.
  52. 52. Edgar, R. C. (2004) MUSCLE: multiple sequence alignment with high accuracy and high throughput, Nucleic Acids Res., 32, 1792-1797, https://doi.org/10.1093/nar/gkh340.
  53. 53. Milne, I., Stephen, G., Bayer, M., Cock, P. J. A., Pritchard, L., Cardle, P., Shaw, D., and Marshall, D. (2013) Using Tablet for visual exploration of second-generation sequencing data, Brief Bioinform., 14, 193-202, https://doi.org/10.1093/bib/bbs012.
  54. 54. Ronquist, F., and Huelsenbeck, J. P. (2003) MrBayes 3: Bayesian phylogenetic inference under mixed models, Bioinformatics, 19, 1572-1574, https://doi.org/10.1093/bioinformatics/btg180.
  55. 55. Ronquist, F., Teslenko, M., van der Mark, P., Ayres, D. L., Darling, A., Höhna, S., Larget, B., Liu, L., Suchard, M. A., and Huelsenbeck, J. P. (2012) MrBayes 3.2: efficient Bayesian phylogenetic inference and model choice across a large model space, Syst. Biol., 61, 539-542, https://doi.org/10.1093/sysbio/sys029.
  56. 56. Logacheva, M. D., Samigullin, T. H., Dhingra, A., and Penin, A. A. (2008) Comparative chloroplast genomics and phylogenetics of Fagopyrum esculentum ssp. ancestrale – A wild ancestor of cultivated buckwheat, BMC Plant Biol., 8, 59, https://doi.org/10.1186/1471-2229-8-59.
  57. 57. Yao, G., Jin, J-J., Li, H.-T., Yang, J.-B., Shiva Mandala, V., Croley, M., Mostow, R., Douglas, N. A., Chase, M. W., Christenhusz, M. J. M., Soltis, D. E., Soltis, P. S., Smith, S. A., Brockington, S. F., Moore, M. J., Yi, T-Sh., and Li, D.-Zh. (2019) Plastid phylogenomic insights into the evolution of Caryophyllales, Mol. Phylogenet. Evol., 134, 74-86, https://doi.org/10.1016/j.ympev.2018.12.023.
  58. 58. Schmitz-Linneweber, C. R., Maier, M., Alcaraz, J.-P., Cottet, A., Herrmann, R. G., and Mache, R. (2001) The plastid chromosome of spinach (Spinacia oleracea): complete nucleotide sequence and gene organization, Plant Mol. Biol., 45, 307-315, https://doi.org/10.1023/a:1006478403810.
  59. 59. Jamdade, R., Al-Shaer, K., Al-Sallani, M., Al-Harthi, E., Mahmoud, T., Gairola, S., and Shabana, H. A. (2022) Multilocus marker-based delimitation of Salicornia persica and its population discrimination assisted by supervised machine learning approach. PLoS One, 17, e0270463, https://doi.org/10.1371/journal.pone.0270463.
  60. 60. Dover, G. (1986) Molecular drive in multigene families: how bilogical novelties arise, spread and are assimilated, TIG, 2, 159-165, https://doi.org/10.1016/0168-9525(86)90211-8.
  61. 61. Yurtseva, O. V., Vasilieva, N. V., Kostikova, V. A., and Samigullin, T. H. (2022) A broadly sampled 3-loci plastid phylogeny of Atraphaxis (Polygoneae, Polygonoideae, Polygonaceae) reveals new taxa: III. A. kuvaevii and cryptic species in A. pungens from southern Siberia and northern Mongolia, Phytotaxa, 566, 13-63, https://doi.org/10.11646/phytotaxa.566.1.2.
  62. 62. Fussy, A., Austoni, S., Winkelmann, T., and Papenbrock, J. (2025) Comparative assessment of species identification methods for European Salicornia sources: a multifaceted approach employing morphology, nuclear DNA content, phylogenetic markers, RNA topology, and SSR fingerprinting, Front. Plant Sci., 16, 1666009, https://doi.org/10.3389/fpls.2025.1666009.
  63. 63. Liu, T., Zuo, Z., He, Y., Miao, J., Yu, J., and Qu, C. (2023) The complete chloroplast genome of a halophyte glasswort Salicornia europaea, Mitochondr. DNA B Resour., 11, 1165-1168, https://doi.org/10.1080/23802359.2023.2275833.
  64. 64. Samigullin, T. H., Kuluev, A. R., Vallejo-Roman, C. M., Kuluev, B. R., and Chemeris, A. V. (2025) Pan-plastomes or conplastomes – a novel sight on the genetic diversity of chloroplast genomes of higher plants for phylogenetic investigations, Biomics, 17, 77-87, https://doi.org/10.31301/2221-6197.bmcs.2025-6.
  65. 65. Beer, S. S., Beer, A. S., and Sokoloff, D. D. (2012) Flower and inflorescence development in Salicornia (Chenopodiaceae), Feddes Repertorium, 121, 229-247, https://doi.org/10.1002/fedr.201000024.
  66. 66. Phillips, H. R., Landis, J. B., and Specht, C. D. (2020) Revisiting floral fusion: the evolution and molecular basis of a developmental innovation, J. Exp. Bot., 71, 3390-3404, https://doi.org/10.1093/jxb/eraa125.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Российская академия наук, 2025

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».