CONFLICTING PHYLOGENETIC SIGNAL BETWEEN NUCLEAR RIBOSOMAL DNA AND PLASTOME DATA AS EVIDENCE FOR HYBRID ORIGIN OF A TETRAPLOID MEMBER OF Salicornia (Amaranthaceae s.l.)

Мұқаба

Дәйексөз келтіру

Толық мәтін

Ашық рұқсат Ашық рұқсат
Рұқсат жабық Рұқсат берілді
Рұқсат жабық Тек жазылушылар үшін

Аннотация

Species of the genus Salicornia (Amaranthaceae s.l.) are widespread throughout the globe and are resistant to salinity. They can be used as food and for biofuel production. The formation of pure lines as a result of self-pollination along with the possibility of sporadic cross-pollination, polyploidy, a high degree of physiological plasticity and a small number of diagnostic characters greatly complicate the taxonomy of the genus. Salicornia is an evolutionarily young group, where the number of informative substitutions in traditionally analyzed regions of nuclear and plastid DNA turned out to be insufficient to establish relationships between species, and the very concept of a species in this genus remains a subject of debate. To clarify the relationships of the Eastern European species, we used high-throughput sequencing to determine the sequences and perform a phylogenetic analysis of the plastomes of 11 samples representing all the main morphotypes of the Eastern European glassworts, and analyzed the variability of the nuclear rDNA external transcribed spacer (nrETS). The sizes of the assembled plastomes varied from 153,290 bp to 153,504 bp and had a typical architecture with a large single-copy region (84,625-84,797 bp in length), a small single-copy region (18,818-18,870 bp in length), and two inverted repeats (24,898-24,908 bp in length). Comparison of phylogenetic trees reconstructed from all currently available plastome data and nrETS alignments of the same glasswort accessions revealed a discrepancy in the arrangement of tetraploid S. procumbens subsp. pojarkovae and S. brachiata accessions, which show affinities to different lineages depending on the use of plastid or nuclear (nrETS) data. Our results highlight the role of reticulate evolution in the genus Salicornia.

Авторлар туралы

T. Samigullin

Belozersky Institute of Physico-Chemical Biology, Lomonosov Moscow State University

Email: samigul@belozersky.msu.ru
Moscow, Russia

M. Logacheva

Belozersky Institute of Physico-Chemical Biology, Lomonosov Moscow State University; Center for Molecular and Cellular Biology, Skolkovo Institute of Science and Technology

Moscow, Russia; Moscow, Russia

G. Degtjareva

Belozersky Institute of Physico-Chemical Biology, Lomonosov Moscow State University; Research and Educational Center – Botanical Garden of Peter I, Lomonosov Moscow State University

Moscow, Russia; Moscow, Russia

D. Sokoloff

Tel Aviv University

Tel Aviv, Israel

S. Beer

Private School “Obninsk Free School”

Obninsk, Russia

C. Valiejo-Roman

Belozersky Institute of Physico-Chemical Biology, Lomonosov Moscow State University

Moscow, Russia

Әдебиет тізімі

  1. Шнеер В.С., Пунина Е.О., Родионов А.В. (2018) Внутривидовые различия в плоидности у покрытосеменных и их таксономическая интерпретация, Бот. журн., 103, 555-585.
  2. 2. Doyle, J. J., and Coate, J. E. (2019) Polyploidy, the nucleotype, and novelty: the impact of genome doubling on the biology of the cell, Int. J. Plant Sci., 180, 1, https://doi.org/10.1086/700636.
  3. 3. Liu, L. X., Du, Y. X., Folk, R. A., Wang, S. Y., Soltis, D. E., Shang, F. D., and Li, P. (2020) Plastome evolution in Saxifragaceae and multiple plastid capture events involving Heuchera and Tiarella, Front. Plant Sci., 11, 361, https://doi.org/10.3389/fpls.2020.00361.
  4. 4. Boom, A. F., Migliore, J., Kaymak, E., Meerts, P., and Hardy, O. J. (2021) Plastid introgression and evolution of African miombo woodlands: new insights from the plastome-based phylogeny of Brachystegia trees, J. Biogeogr., 48, 933-946, https://doi.org/10.1111/jbi.14051.
  5. 5. Yang, Y. Y., Qu, X. J., Zhang, R., Stull, G. W., and Yi, T. S. (2021) Plastid phylogenomic analyses of Fagales reveal signatures of conflict and ancient chloroplast capture, Mol. Phylogenet. Evol., 163, 107232, https://doi.org/10.1016/j.ympev.2021.107232.
  6. 6. Baldwin, E., McNair, M., and Leebens-Mack, J. (2023) Rampant chloroplast capture in Sarracenia revealed by plastome phylogeny, Front. Plant Sci., 14, 1237749, https://doi.org/10.3389/fpls.2023.1237749.
  7. 7. Gambhir, D., Sanderson, B. J., Guo, M., Hu, N., Khanal, A., Cronk, Q., and Olson, M. S. (2025). Disentangling serial chloroplast captures in willows, Am. J. Bot., 112, 5, https://doi.org/10.1002/ajb2.70039.
  8. 8. Papini, A., Trippanera, G. B., Maggini, F., Filigheddu, R., and Biondi, E. (2004) New insights in Salicornia L. and allied genera (Chenopodiaceae) inferred from nrDNA sequence data, Pl. Biosyst., 138, 215-223, https://doi.org/10.1080/11263500400006977.
  9. 9. Murakeözy, É. P., Aïnouche, A., Meudec, A., Deslandes, E., and Poupart, N. (2007) Phylogenetic relationships and genetic diversity of the Salicornieae (Chenopodiaceae) native to the Atlantic coasts of France, Plant Syst. Evol., 264, 217-236, https://doi.org/10.1007/s00606-006-0511-0.6.
  10. 10. Kadereit, G., Ball, P., Beer, S., Mucina, L., Sokoloff, D., Teege, D. P., Yaprak, A. E., and Freitag, H. (2007) A taxonomic nightmare comes true: phylogeny and biogeography of glassworts (Salicornia L., Chenopodiaceae), Taxon, 56, 1143-1170, https://doi.org/10.2307/25065909.
  11. 11. Kaligarič, M., Bohanec, B., Simonovik, B., and Sajna, N. (2008) Genetic and morphologic variability of annual glassworts (Salicornia L.) from the Gulf of Trieste (Northern Adriatic), Aquat. Bot., 89, 275-282, https://doi.org/10.1016/j.aquabot.2008.02.003.
  12. 12. Cousins-Westerberg, R., Dakin, N., Schat, L., Kadereit, G., and Humphreys, A. M. (2023) Evolution of cold tolerance in the highly stress-tolerant samphires and relatives (Salicornieae: Amaranthaceae), Bot. J. Linnean Soc., 203, 20-36, https://doi.org/10.1093/botlinnean/boad009.
  13. 13. Vanderpoorten, A., Hardy, O. J., Lambinon, J., and Raspé, O. (2011) Two reproductively isolated cytotypes and a swarm of highly inbred, disconnected populations: a glimpse into Salicornia’s evolutionary history and challenging taxonomy, J. Evol. Biol., 24, 630–644, https://doi.org/10.1111/j.1420-9101.2010.02198.x.
  14. 14. Slenzka, A., Mucina, L., and Kadereit, G. (2013) Salicornia L. (Amaranthaceae) in South Africa and Namibia: rapid spread and ecological diversification of cryptic species, Bot. J. Linn. Soc., 172, 175-186, https://doi.org/10.1111/boj.12041.
  15. 15. Steffen, S., Ball, P., Mucina, L., and Kadereit, G. (2015) Phylogeny, biogeography and ecological diversification of Sarcocornia (Salicornioideae, Amaranthaceae), Ann. Bot., 115, 353–368, https://doi.org/10.1093/aob/mcu260.
  16. 16. Ángeles Alonso, M., Crespo, M. B., and Freitag, H. (2017) Salicornia cuscoensis (Amaranthaceae/Chenopodiaceae), a new species from Peru (South America), Phytotaxa, 319, 5, https://doi.org/10.11646/phytotaxa.319.3.4.
  17. 17. Ball, P. W., Cornejo, X., and Kadereit, G. (2017) Mangleticornia (Amaranthaceae: Salicornioideae) – a new sister for Salicornia from the Pacific coast of South America, Willdenowia, 47, 145-153, https://doi.org/10.3372/ wi.47.47206.
  18. 18. Costa, C. S. B., Kadereit, G., and Peres Moraes de Freitas, G. (2019) Molecular markers indicate the phylogenetic identity of southern Brazilian sea asparagus: first record of Salicornia neei in Brazil, Rodriguésia, 70, e03122017, https://doi.org/10.1590/2175-7860201970039.
  19. 19. Hayder, Z., Tlili, A., and Tarhouni, M. (2023) Chemical composition and forage quality of three halophytes of the genera Sarcocornia and Salicornia inhabiting the saline marginal lands of Southern Tunisia, J. Oasis Agric. Sustain Dev., 5, 1-10, https://doi.org/10.56027/JOASD.122023.
  20. 20. Ozturk, M., Altay, V., Orçen, N., Yaprak, A. E., Tuğ, G. N., and Güvensen, A. (2018) A little-known and a little-­consumed natural resource: Salicornia, in Global Perspectives on Underutilized Crops (Ozturk, M., Hakeem, K., Ashraf, M., Ahmad, M., eds), Springer, Cham, https://doi.org/10.1007/978-3-319-77776-4_3.
  21. 21. Chaturvedi, T., Christiansen, A. H. C., Gołębiewska, I., and Thomsen, M. H. (2021) Salicornia species current status and future potential, in Future of Sustainable Agriculture in Saline Environments, CRC Press, pp. 461-482.
  22. 22. Cárdenas-Pérez, S., Chanona-Pérez, J., Piernik, A., Perea-Flores, M., and Grigore, M. (2021). An overview of the emerging trends of the Salicornia L. genus as a sustainable crop, Environ. Exp. Bot., 191, 104606, https://doi.org/ 10.1016/j.envexpbot.2021.104606.
  23. 23. Kadereit, G., Piirainen, M., Lambinon, J., and Vanderpoorten, A. (2012) Cryptic taxa should have names: Reflections in the glasswort genus Salicornia (Amaranthaceae), Taxon, 61, 1227-1239, https://doi.org/10.1002/tax.616005.
  24. 24. Ball, P. W. (1964) A taxonomic review of Salicornia in Europe, Feddes Repertorium, 69, 1-8.
  25. 25. Dalby, D. H. (1962) Chromosome number, morphology and breeding behaviour in the British Salicorniae, Watsonia, 5, 150-162.
  26. 26. Contandriopoulos, J. (1968) About the chromosome numbers of Salicornia from the Mediterranean region, Bull. Museum Nat. Hist. Marseille, 28, 45-52.
  27. 27. Herrera-Gallastegui, M., Fernández-Casado, M. A., and Fernández-Prieto, J. A. (1989) The genus Salicornia L. in the estuary of the Asón River (Cantabria), Ann. Bot. Garden Madrid, 45, 551-552.
  28. 28. Runemark, H. (1996) Mediterranean chromosome number reports – 6. in ‘Flora Mediterranea’ (Eds Kamari, G., Felber, F., and Garbari, F.), pp. 223-337. (Herbarium Mediterraneum Panormitanum: Palermo, Italy).
  29. 29. Shepherd, K. A., and Yan, G. (2003) Chromosome number and size variation in the Australian Salicornioideae (Chenopodiaceae) – evidence of polyploidisation, Aust. J. Bot., 51, 441-452, https://doi.org/10.1071/BT03041.
  30. 30. Беэр С.С., Беэр А.С., Милькова Е.Д., Сутягина П.А., Фарукшина Е.Т. (2011) Новые данные о хромосомных числах Salicornia (Chenopodiaceae) в Европейской России, Бот. Журн, 96, 1135-1140.
  31. 31. Cristofolini, G, and Chiapella, L. (1970) Chemotaxonomy of the genus Salicornia from the Venetian coasts, Ital. Bot. J., 104, 91-115.
  32. 32. Ломоносова М.Н. (2005) Новые виды семейства Chenopodiaceae, Бот. журн., 90, 1248-1252.
  33. 33. Chatrenoor, T., and Akhani, H. (2021) An integrated morpho-molecular study of Salicornia (Amaranthaceae Chenopodiaceae) in Iran proves Irano-Turanian region the major center of diversity of annual glasswort species, Taxon, 70, 989-1019, https://doi.org/10.1002/tax.12538.
  34. 34. Shepherd, K. A., Waycott, M., and Calladine, A. (2004) Radiation of the Australian Salicornioideae (Chenopodiaceae) – based on evidence from nuclear and chloroplast DNA sequences, Am. J. Bot., 91, 1387-1397, https://doi.org/10.3732/ajb.91.9.1387.
  35. 35. Vanderpoorten, A., Raspé, O., Risterrucci, A. M., Gohy, L., and Hardy, O. J. (2009) Identification and characterization of eight nuclear microsatellite loci in the glasswort genus Salicornia (Amaranthaceae), Belg. J. Bot., 142, 204-208, https://doi.org/10.2307/41427187.
  36. 36. Sciuto, K., Wolf, M. A., Sfriso, A., Brancaleoni, L., Iberite, M., and Iamonico, D. (2023) Molecular and Morphometric Update on Italian Salicornia (Chenopodiaceae), with a Focus on the Species S. procumbens s.l., Plants, 12, 375, https://doi.org/10.3390/plants12020375.
  37. 37. Xu, H., Guo, Y., Xia, M., Yu, J., Chi, X., Han, Y., and Zhang, F. (2024) An updated phylogeny and adaptive evolution within Amaranthaceae sl. inferred from multiple phylogenomic datasets, Ecology and Evolution, 14, e70013, https://doi.org/10.1002/ece3.70013.
  38. 38. Цвелев Н.Н. (1996) Salicornia. Флора Восточной Европы (под ред. Цвелева Н.Н.), Т. 9, 73-74, СПб., Мир и семья-95.
  39. 39. Beer, S. S., and Demina, O. N. (2005) A new species of Salicornia (Chenopodiaceae) from European Russia, Willdenowia, 35, 253-257, https://doi.org/10.3372/wi.35.35204.
  40. 40. Сухоруков А.П., Акопян Ж.А. (2013) Конспект семейства Chenopodiaceae Кавказа, МАКС Пресс, Москва, с. 76
  41. 41. Сухоруков А.П. (2014) Карпология семейства Chenopodiaceae в связи с проблемами филогении, систематики и диагностики его представителей, Гриф и К, Тула, с. 400.
  42. 42. Piirainen, M. (2015). Pattern of morphological variation of Salicornia in north Europe, Nordic J. Bot., 33, 733-746, https://doi.org/10.1111/njb.00848.
  43. 43. Bolger, A. M., Lohse, M., and Usadel, B. (2014) Trimmomatic: a flexible trimmer for Illumina sequence data, Bioinformatics, 30, 2114-2120, https://doi.org/10.1093/bioinformatics/btu170.
  44. 44. Liu, C., Shi, L., Zhu, Y., Chen, H., Zhang, J., and Lin, X. (2012) CpGAVAS, an integrated web server for the annotation, visualization, analysis, and GenBank submission of completely sequenced chloroplast genome sequences, BMC Genomics, 13, 715, https://doi.org/10.1186/1471-2164-13- 715.
  45. 45. Lowe, T. M., and Chan, P. P. (2016) tRNAscan-SE On-line: integrating search and context for analysis of transfer RNA genes, Nucleic Acids Res., 44, W54-W57, https://doi.org/10.1093/nar/gkw413.
  46. 46. Laslett, D., and Canback, B. (2004) ARAGORN, a program to detect tRNA genes and tmRNA genes in nucleotide sequences, Nucleic Acids Res., 32, 11-16, https://doi.org/10.1093/nar/gkh152.
  47. 47. Greiner, S., Lehwark, P., and Bock, R. (2019) Organellar GenomeDRAW (OGDRAW) version 1.3.1: expanded toolkit for the graphical visualization of organellar genomes, Nucleic Acids Res., 47, W59-W64, https://doi.org/10.1093/nar/gkz238.
  48. 48. Katoh, K., and Standley, D. M. (2013) MAFFT Multiple Sequence Alignment Software version 7: improvements in performance and usability, Mol. Biol. Evol., 30, 772-780, https://doi.org/10.1093/molbev/mst010.
  49. 49. Hall, T. A. (1999) BioEdit: A user-friendly biological sequence alignment editor and analysis program for Windows 95/98/NT, Nucleic Acids Symp. Ser., 41, 95-98.
  50. 50. Kadereit, G., Mucina, L., and Freitag, H. (2006) Phylogeny of Salicornioideae (Chenopodiaceae): diversification, biogeography, and evolutionary trends in leaf and flower morphology, Taxon, 55, 617-642, https://doi.org/10.2307/25065639.
  51. 51. Koren, S., Walenz, B. P., Berlin, K., Miller, J. R., Phillippy, A. M. (2017) Canu: scalable and accurate long-read assembly via adaptive k-mer weighting and repeat separation. Genome Res., 27, 722-736, https://doi.org/10.1101/gr.215087.116.
  52. 52. Edgar, R. C. (2004) MUSCLE: multiple sequence alignment with high accuracy and high throughput, Nucleic Acids Res., 32, 1792-1797, https://doi.org/10.1093/nar/gkh340.
  53. 53. Milne, I., Stephen, G., Bayer, M., Cock, P. J. A., Pritchard, L., Cardle, P., Shaw, D., and Marshall, D. (2013) Using Tablet for visual exploration of second-generation sequencing data, Brief Bioinform., 14, 193-202, https://doi.org/10.1093/bib/bbs012.
  54. 54. Ronquist, F., and Huelsenbeck, J. P. (2003) MrBayes 3: Bayesian phylogenetic inference under mixed models, Bioinformatics, 19, 1572-1574, https://doi.org/10.1093/bioinformatics/btg180.
  55. 55. Ronquist, F., Teslenko, M., van der Mark, P., Ayres, D. L., Darling, A., Höhna, S., Larget, B., Liu, L., Suchard, M. A., and Huelsenbeck, J. P. (2012) MrBayes 3.2: efficient Bayesian phylogenetic inference and model choice across a large model space, Syst. Biol., 61, 539-542, https://doi.org/10.1093/sysbio/sys029.
  56. 56. Logacheva, M. D., Samigullin, T. H., Dhingra, A., and Penin, A. A. (2008) Comparative chloroplast genomics and phylogenetics of Fagopyrum esculentum ssp. ancestrale – A wild ancestor of cultivated buckwheat, BMC Plant Biol., 8, 59, https://doi.org/10.1186/1471-2229-8-59.
  57. 57. Yao, G., Jin, J-J., Li, H.-T., Yang, J.-B., Shiva Mandala, V., Croley, M., Mostow, R., Douglas, N. A., Chase, M. W., Christenhusz, M. J. M., Soltis, D. E., Soltis, P. S., Smith, S. A., Brockington, S. F., Moore, M. J., Yi, T-Sh., and Li, D.-Zh. (2019) Plastid phylogenomic insights into the evolution of Caryophyllales, Mol. Phylogenet. Evol., 134, 74-86, https://doi.org/10.1016/j.ympev.2018.12.023.
  58. 58. Schmitz-Linneweber, C. R., Maier, M., Alcaraz, J.-P., Cottet, A., Herrmann, R. G., and Mache, R. (2001) The plastid chromosome of spinach (Spinacia oleracea): complete nucleotide sequence and gene organization, Plant Mol. Biol., 45, 307-315, https://doi.org/10.1023/a:1006478403810.
  59. 59. Jamdade, R., Al-Shaer, K., Al-Sallani, M., Al-Harthi, E., Mahmoud, T., Gairola, S., and Shabana, H. A. (2022) Multilocus marker-based delimitation of Salicornia persica and its population discrimination assisted by supervised machine learning approach. PLoS One, 17, e0270463, https://doi.org/10.1371/journal.pone.0270463.
  60. 60. Dover, G. (1986) Molecular drive in multigene families: how bilogical novelties arise, spread and are assimilated, TIG, 2, 159-165, https://doi.org/10.1016/0168-9525(86)90211-8.
  61. 61. Yurtseva, O. V., Vasilieva, N. V., Kostikova, V. A., and Samigullin, T. H. (2022) A broadly sampled 3-loci plastid phylogeny of Atraphaxis (Polygoneae, Polygonoideae, Polygonaceae) reveals new taxa: III. A. kuvaevii and cryptic species in A. pungens from southern Siberia and northern Mongolia, Phytotaxa, 566, 13-63, https://doi.org/10.11646/phytotaxa.566.1.2.
  62. 62. Fussy, A., Austoni, S., Winkelmann, T., and Papenbrock, J. (2025) Comparative assessment of species identification methods for European Salicornia sources: a multifaceted approach employing morphology, nuclear DNA content, phylogenetic markers, RNA topology, and SSR fingerprinting, Front. Plant Sci., 16, 1666009, https://doi.org/10.3389/fpls.2025.1666009.
  63. 63. Liu, T., Zuo, Z., He, Y., Miao, J., Yu, J., and Qu, C. (2023) The complete chloroplast genome of a halophyte glasswort Salicornia europaea, Mitochondr. DNA B Resour., 11, 1165-1168, https://doi.org/10.1080/23802359.2023.2275833.
  64. 64. Samigullin, T. H., Kuluev, A. R., Vallejo-Roman, C. M., Kuluev, B. R., and Chemeris, A. V. (2025) Pan-plastomes or conplastomes – a novel sight on the genetic diversity of chloroplast genomes of higher plants for phylogenetic investigations, Biomics, 17, 77-87, https://doi.org/10.31301/2221-6197.bmcs.2025-6.
  65. 65. Beer, S. S., Beer, A. S., and Sokoloff, D. D. (2012) Flower and inflorescence development in Salicornia (Chenopodiaceae), Feddes Repertorium, 121, 229-247, https://doi.org/10.1002/fedr.201000024.
  66. 66. Phillips, H. R., Landis, J. B., and Specht, C. D. (2020) Revisiting floral fusion: the evolution and molecular basis of a developmental innovation, J. Exp. Bot., 71, 3390-3404, https://doi.org/10.1093/jxb/eraa125.

Қосымша файлдар

Қосымша файлдар
Әрекет
1. JATS XML
Жүктеу

© Russian Academy of Sciences, 2025

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».