Особенности подледного развития фитопланктона в северных озерах
- Авторы: Шаров А.Н.1, Березина Н.А.2, Максимов А.А.2, Максимова О.Б.3
-
Учреждения:
- Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина Российской академии наук
- Зоологический институт Российской академии наук
- Всероссийский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства и океанографии
- Выпуск: Том 17, № 1 (2024)
- Страницы: 99-107
- Раздел: Статьи
- URL: https://bakhtiniada.ru/0320-9652/article/view/261528
- DOI: https://doi.org/10.31857/S0320965224010085
- EDN: https://elibrary.ru/zafcpw
- ID: 261528
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Рассмотрена структура фитопланктона в подледный период в северных олиготрофных озерах (оз. Кривое и оз. Круглое) и оценен его уровень развития при сходе льда. В зимний период (2019– 2021 гг.) в фитопланктоне отмечены цианобактерии, диатомовые и криптофитовые водоросли. Весеннее увеличение фитопланктона в оз. Кривое было за счет развития динофитовых Peridinium aciculiferum, в оз. Круглое – диатомовых Aulacoseira subarctica. Биомасса варьировала от 0.003 до 0.083 мг/л зимой и до 0.65 мг/л весной. Весенний пик (апрель–май) фитопланктона связан с развитием динофитовых водорослей и превышает летние значения. Средняя концентрация Хл а в планктоне достигала 0.3–0.4 мкг/л. В криофлоре присутствовали вмерзшие в лед водоросли в неактивном состоянии (0.003–0.04 мг/л). Массовое развитие фитопланктона подо льдом вносит важный вклад в продуктивность северных озер.
Ключевые слова
Полный текст
ВВЕДЕНИЕ
В последние два десятилетия во многих исследованиях все больше внимания уделялось изменению климата, особенно потеплению, как основной движущей силе повышения доступности питательных веществ для продуцентов и увеличения продуктивности водоемов (Paerl, Huisman, 2009; Hamilton at al., 2016). Олиготрофные и мезотрофные озера, которые преобладают в северных регионах России, в том числе субарктическом, наиболее уязвимы к действию этого фактора. Потепление климата в этом регионе привело к уменьшению периода зимнего ледостава на озерах и увеличению продолжительности “биологического лета”, т.е. наиболее продуктивного периода для развития фитопланктона и биоты (Sharov et al., 2014; Maximov, 2021). Вместе с этим увеличился и приток в озера питательных веществ в составе гумусовых соединений из водосбора (Kalinkina et al., 2020). Понижение освещенности и увеличение количества питательных веществ, связанных с растворенной органикой, например, азота, фосфора и железа, — типичные черты озер при гумификации (Senar et al., 2021).
Потепление климата и гумификация в северных регионах могут способствовать структурной перестройке сообществ фитопланктона и преобладанию специфических групп, в том числе, видов с миксотрофным типом питания и цианобактерий. Так, в последние годы в фитопланктоне озер Кольского полуострова и северной Карелии отмечено увеличение доли цианобактерий (Sharov, Denisov, 2021; Никулина, 2016).
Сезонная сукцессия фитопланктона северных озер подробно изучена (Duthie, Hart, 1987; Forsström et al., 2005; Никулина, 2016). Как правило, для нее характерны два пика его развития — в начале температурной стратификации и во время осеннего перемешивания. При этом считается, что зимой, в условиях низких температур и дефицита света, продуктивность фитопланктона близка к нулю (Öterler, 2017). Это устоявшееся мнение стало причиной того, что среди огромного числа работ, посвященных сезонной динамике развития фитопланктона в замерзающих озерах, лишь немногие включали зимние наблюдения (Petrova, 1987; Suarez et al., 2019). Вместе с тем, зимний фитопланктон может быть богат видами. Так, в пробах подледной воды и льда из малых водоемов Карелии определено 97 видов и разновидностей диатомовых водорослей (Генкал, Комулайнен, 2020). Одна из особенностей функционирования фитопланктона северных озер — быстрое нарастание биомассы в период таяния льда (Suarez et al., 2019), поэтому изучение показателей фитопланктона подо льдом и при сходе льда приобретает особую актуальность.
Цель работы — определение структуры и уровня развития фитопланктона подо льдом и в период весенней вспышки при вскрытии северных олиготрофных озер.
МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
Исследования проводили в 2019–2021 гг. на двух модельных озерах Кривое и Круглое, расположенных субарктическом регионе за пределами густонаселенных и промышленных районов. Они служат хорошими моделями для изучения сукцессии ненарушенных сообществ планктона. Изучение экосистемы этих озер начато в 1968–1969 гг. в рамках Международной Биологической Программы (Winberg et al., 1973). Впоследствии с 2002 г. на озерах организован мониторинг, который проводят ежегодно по настоящее время. До 2019 г. эти озера исследовали в основном в летне-осенний период, спустя несколько недель после схода льда и завершали за несколько недель до его установления.
Изученные озера. Малые озера: глубокое Кривое (66.3435° с.ш., 33.6375° в.д.) и мелкое Круглое (66.3429° с.ш., 33.6119° в.д.) расположены в северной Карелии (Россия) вблизи побережья Кандалакшского залива Белого моря в 30 км к югу от Полярного круга (рис. 1). Глубокое оз. Кривое находится на высоте ~7 м над уровнем моря. В юго-западной части оно через эфемерный ручей соединяется с мелководным оз. Круглое (рис. 1). Оба озера олиготрофные, но мелководное оз. Круглое имеет признаки дистрофии и характеризуется гумифицированной водой (Терентьев, Березина, 2022).
Рис. 1. Карта-схема расположения озер и станций отбора проб.
Отбор и анализ проб. Основное внимание исследований было сосредоточено на периоде с октября по июнь. Для анализа фитопланктона и фитопигментов пробы воды отбирали двухлитровым батометром Руттнера на трех станциях (рис. 1) интегрально (из каждого метра по вертикали) из слоя 0–5 м в оз. Кривое и 0–3 м — в оз. Круглое. Интегральную пробу воды помещали в ведро, перемешивали; затем из этого объема отбирали 0.5 л для анализа состава фитопланктона и 1–3 л для определения состава фитопигментов. Пробу фитопланктона консервировали несколькими каплями раствора Люголя с добавлением формалина, ледяной уксусной и хромовой кислот, затем отстаивали в течение 10 сут и концентрировали сифоном до объема 10 мл.
Для содержания Хл а и других фитопигментов пробы фильтровали через мембранный фильтр с диаметром пор 1 мкм. Фитопигменты измеряли спектрофотометрически по стандартной методике (UNESCO, 1966).
Для изучения криофлоры выпиливали блоки льда размером 20×20 см и отделяли нижний (кристаллический) и верхний (белый) слои с таким расчетом, чтобы объем пробы достигал ~2 л. Нижний слой был толщиной 30‒40 см, а верхний — 50‒60 см. После таяния льда при температуре 10°C пробы фиксировали и обрабатывали, как и планктонные.
Определение видов и подсчет клеток проводили в камере Нажотта объемом 0.02 мл под увеличением 4×20 и ×600 оптического микроскопа Биоптик В-200 (Биомед, Санкт-Петербург, Россия). Биомассу рассчитывали по объему клеток, принимая, что 109 мкм3 соответствует 1 мг влажной биомассы фитопланктона (Hillebrand et al., 1999). Доминантами считали виды, которые достигали 5% общей численности и 10% общей биомассы (Okhapkin et al., 2022).
Температуру воды и освещенность измеряли каждые 2 ч с помощью регистраторов температуры/освещенности HOBO Pendant (Onset Computer Corporation, США), установленных на глубине 0.5 м от поверхности воды или нижней границы льда. При переводе единиц освещенности принимали, что 1 люкс соответствует 1.464·10-3 ватт/м2.
Рассчитывали среднее значение и стандартное отклонение. Для выявления взаимосвязей между переменными применяли ранговую корреляцию Спирмена. Значимые различия между двумя группами переменных принимали при p <0.05. Использовали статистическую программу STATISTICA 10.
РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
В табл. 1 приведены основные физико-химические характеристики озер. Безледный период на оз. Кривое длится с середины мая–начала июня до ноября, в остальное время оно покрыто льдом толщиной до 0.8 м. Лед на оз. Круглое образуется в конце октября, на 10–20 сут раньше, чем на оз. Кривое. Температура воды в зимний период опускалась до 0.8°С в оз. Круглое и до 0.3°С в оз. Кривое. Осеннее охлаждение происходит медленнее в оз. Кривое, чем в оз. Круглое. В последнем минимальные температуры воды отмечали уже в ноябре. Весенний прогрев воды оз. Круглое начинается в начале апреля, на ~ 10–20 суток раньше, чем в оз. Кривое. Гомотермия (4–5°С) бывает весной после схода льда (начало июня) и в сентябре– октябре.
Таблица 1. Основные физико-химические параметры исследованных озер
Показатель | оз. Кривое | оз. Круглое |
Площадь, км2 | 0.5 | 0.1 |
Средняя (максимальная) глубина, м | 12 (32) | 2 (4) |
Прозрачность воды, м | 4–8 | 0.9-1.8 |
Цветность воды, Pt-Co | 25–30 | 150–160 |
Минерализация, мг/л | 72–88 | 27–50 |
Ca2+ | 5.8–7.4 | 2.4–3.9 |
HCO3- | 28.6–31.2 | 11.6–25.5 |
О2 поверхность | 8.6–12.1 | 7.8–11.2 |
О2 дно, мг/л | 0–12.0 | 0–14.2 |
рН | 6.6–7.7 | 5.9–6.7 |
Гуминовые кислоты, мг/л* | 0.028 | 0.15–0.21 |
Собщ, мг/л* | 6.4 | 22.6 |
Nобщ, мкг/л* | 1860–4110 | 1620–4430 |
Pобщ, мкг/л* | 14−74 | 18–162 |
Fe, мкг/л* | 4–280 | 76–500 |
* По: (De Hoyos, 1998).
Освещенность на глубине 1 м в зимний период в обоих озерах была близка к нулю. Низкие значения, когда свет лимитирует развитие фитопланктона (<1.6 ватт/м2), зарегистрированы с середины октября до начала апреля. Максимальное количество света подо льдом в оз. Кривое достигало 8 ватт/м2, в оз. Круглое — 4 ватт/м2. Зимой в придонных слоях воды присутствовала гипоксия.
В подледном фитопланктоне обоих озер в зимний период доминировали цианобактерии (10‒25%), диатомовые (10‒15%) и криптофитовые (10‒40%) водоросли (табл. 2). Биомасса варьировала от 0.003 до 0.083 мг/л зимой и возрастала весной до 0.65 мг/л.
Весной биомасса фитопланктона в оз. Кривое увеличивалась за счет развития динофитовых Peridinium aciculiferum Lemmerm. (рис. 2, рис. 3), в оз. Круглое — диатомовых Aulacoseira subarctica (O.Müll.) E.Y.Haw., рост которых начинался непосредственно перед сходом льда. В оз. Кривое подо льдом (30 марта 2020 г.) в массе отмечены цианобактерии Coelosphaerium kuetzingianum Nägeli и Phormidium irriguum (Kütz. ex Gomont) Anagn. & Komárek. Колонии этих цианобактерий формировали крупные (до 7 мм) комочки светло-коричневого цвета.
Рис. 2. Сезонная динамика биомассы фитопланктона с октября по июнь в оз. Кривое (1) и оз. Круглое (2). Серым цветом обозначен период ледостава. Приведены средние данные 2019–2021 гг.
Рис. 3. Структура биомассы фитопланктона оз. Кривое (а) и оз. Круглое (б). 1 – Cyanobacteria, 2 – Cryptophyta, 3 – Chrysophyta, 4 – Dynophyta, 5 – Bacillariophyta, 6 – Chlorophyta, 7 – Charophyta.
Зимой (декабрь–февраль) средняя концентрация хлорофилла (Хл) а в фитопланктоне оз. Кривое была 0.43 мкг/л (табл. 2). Доля вспомогательных пигментов сравнительно невысока, достигая 30% для Хл в и 68% — Хл с относительно Хл а. Соотношение каротиноидов и Хл а было 1.45. Содержание Хл а в подледной воде было наибольшим в начале апреля (2.74 мкг/л). После схода льда Хл а многократно возрос — с 0.29 до 4.10 мкг/л.
Таблица 2. Доминирующие виды, средняя биомасса (B, мг/л) и содержание хлорофилла а (Хл а, мкг/л) фитопланктона озер в различные сезоны исследования 2019–2021 гг.
оз. Кривое | оз. Круглое | ||||
Доминанты | В, мг/л | Хл а, мкг/л | Доминанты | В, мг/л | Хл а, мкг/л |
Зима (декабрь–февраль) | |||||
Phormidium, Cryptomonas | 0.078 ± 0.018 | 0.43 ± 0.05 | Komma caudata, Cryptomonas | 0.0015 ± 0.0003 | 0.29 ± 0.03 |
Весна (март–май) | |||||
Peridinium aciculiferum, Gymnodinium, Phormidium sp., Komma caudatа (Geitler) Hill, Cryptomonas sрp. | 0.23 ± 0.074 | 1.18 ± 0.25 | Komma caudata, Katablepharis ovalis Skuja, Botryococcus braunii Kützing, Aulacoseira subarctica | 0.027 ± 0.026 | 0.55 ± 0.06 |
Лето (июнь–август) | |||||
Asterionella formosa Hassall, Peridinium sp., Phormidium sp., Cryptomonas spp., Dolichospermum sp. | 0.156 ± 0.026 | 1.57 ± 0.15 | Dinobryon divergens (O.E.Imhof), Botryococcus braunii, Cryptomonas spp., Aulacoseira subarctica | 0.118 ± 0.039 | 2.30 ± 0.36 |
Ocень (сентябрь–ноябрь) | |||||
Dolichospermum sp., Phormidium sp., Cryptomonas sрp., Aulacoseira subarctica, Botryococcus braunii | 0.099 ± 0.038 | 1.77 ± 0.26 | Cryptomonas ssp., Aulacoseira subarctica, Botryococcus braunii, Dolichospermum sp. | 0.051 ± 0.007 | 2.13 ± 0.45 |
В оз. Круглое в зимне-весенний период концентрация Хл а в среднем составляя 0.3 мкг/л. Содержание вспомогательных пигментов относительно Хл а было высоким: 100% для Хл в и 287% для Хл с, при этом соотношение каротиноидов и Хл а достигало 4.06.
Состав водорослей льда сходен с их составом в подледной воде. Биомасса криофлоры оз. Кривое на порядок выше в нижнем слое льда (0.04 мг/л), по сравнению с верхним (0.003 мг/л). В оз. Круглое биомасса криофлоры была 0.01 мг/л в нижнем слое льда, и в 10 раз меньше в верхнем слое. Цианобактерии Phormidium sp. и зеленые водоросли Botryococcus braunii доминировали в обоих озерах, в оз. Круглое к ним присоединились диатомовые Asterionella formosa и жгутиковые Katablepharis ovalis.
Содержание Хл а в нижнем слое льда было в два раза выше, чем верхнем слое 0.05–0.67 мкг/л и 0.01–0.26 мкг/л соответственно. Соотношение содержания каротиноидов и Хл а в криофлоре достигало в белом льду 4.0 мкг/л, в кристаллическом — 2.8 мкг/л. Концентрация Хл а в нижних слоях льда (~0.3 мкг/л) почти совпадала с его содержанием в озерной воде в декабре в период формирования ледового покрова.
Корреляции общей биомассы фитопланктона и его основных групп с содержанием фитопигментов, уровнем освещенности и температурой воды приведены в табл. 3. Биомасса фитопланктона в оз. Круглое и все фитопигменты положительно связаны с температурой и освещенностью. Биомасса отдельных групп в этом озере не коррелировала с какими-либо показателями. В оз. Кривое биомассы криптофитовых водорослей обратно пропорционально связаны с освещенностью и биомассой цианобактерий и диатомовых (R = –0.59). При этом биомассы цианобактерий обратно пропорциональны температуре, освещенности и содержанию Хл a и каротиноидов. Биомассы золотистых положительно связаны с температурой и Хл b (табл. 3).
Таблица 3. Ранговая корреляция Спирмена
Показатель | Биомасса основных групп фитопланктона | Общая биомасса | ||||||
Cyanophyta | Cryptophyta | Chrysophyta | Dynophyta | Bacillariophyta | Chlorоphyta | Charophyta | ||
оз. Круглое | ||||||||
Хл a | 0.51 | –0.34 | 0.13 | –0.42 | 0.37 | 0.11 | –0.40 | 0.85 |
Хл b | 0.29 | –0.54 | –0.04 | –0.29 | 0.63 | –0.17 | –0.13 | 0.74 |
Хл c | 0.11 | –0.41 | –0.05 | –0.02 | 0.61 | –0.11 | –0.28 | 0.65 |
каротины | 0.36 | –0.36 | –0.06 | –0.30 | 0.53 | –0.08 | –0.42 | 0.81 |
k/a | –0.46 | 0.26 | –0.41 | 0.45 | –0.15 | –0.25 | 0.39 | –0.80 |
Т, °С | 0.41 | –0.37 | 0.38 | –0.47 | 0.35 | –0.05 | –0.08 | 0.72 |
Свет | 0.24 | –0.33 | 0.16 | –0.30 | 0.32 | –0.11 | –0.26 | 0.61 |
оз. Кривое. ст. 1 | ||||||||
Хл a | –0.51 | –0.14 | 0.49 | 0.10 | 0.45 | –0.06 | 0.17 | 0.13 |
Хл b | –0.45 | –0.08 | 0.52 | 0.04 | 0.42 | 0.12 | 0.40 | –0.23 |
Хл c | –0.28 | 0.15 | 0.45 | –0.09 | 0.17 | 0.10 | 0.22 | –0.10 |
каротины | –0.60 | –0.19 | 0.50 | 0.24 | 0.33 | –0.10 | 0.23 | 0.10 |
k/a | 0.24 | 0.16 | –0.42 | 0.07 | –0.52 | –0.04 | 0.01 | –0.20 |
Т, °С | –0.40 | –0.41 | 0.56 | 0.13 | 0.43 | –0.22 | 0.19 | 0.03 |
Свет | –0.37 | –0.50 | 0.33 | 0.26 | 0.18 | –0.31 | 0.03 | 0.12 |
оз. Кривое, ст. 2 | ||||||||
Хл a | –0.93 | 0.45 | 0.23 | 0.23 | 0.35 | 0.28 | –0.02 | 0.01 |
Хл b | –0.59 | 0.05 | 0.17 | 0.22 | 0.13 | 0.20 | –0.01 | 0.05 |
Хл c | –0.36 | 0.10 | 0.15 | –0.15 | 0.27 | 0.41 | 0.12 | –0.05 |
каротины | –0.75 | 0.31 | 0.19 | 0.33 | –0.01 | 0.05 | –0.15 | 0.17 |
k/a | 0.91 | –0.49 | –0.21 | –0.33 | –0.36 | –0.23 | 0.19 | –0.15 |
Т, °С | –0.78 | 0.30 | 0.50 | 0.40 | 0.07 | –0.02 | –0.15 | 0.18 |
Свет | –0.83 | 0.32 | 0.53 | 0.52 | –0.03 | –0.11 | –0.26 | 0.27 |
Примечание. k/а — пигментный индекс (отношение концентрации каротиноидов к концентрации Хл а). Жирным шрифтом отмечены корреляции, значимые при р < 0.05.
ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ
Проведенное исследование выявило, что весенний фитопланктон сформирован в основном несколькими видами жгутиковых форм криптофитовых, золотистых и динофитовых водорослей. По своей величине эти биомассы превышают летние величины (табл. 2). Сходный состав и весенний (после таяния льда) максимум фитопланктона отмечали и в прежние годы (Никулина, 2016), однако из-за недоучета фитопланктона в апреле–начале мая (подо льдом) сделан ошибочный вывод, что весенний максимум развития водорослей планктона (0.14–0.29 мг/л (Никулина, 2016)), как правило, ниже летнего. Полученные новые данные по подледному весеннему периоду в оз. Кривое выявили в несколько раз более высокие величины (0.65 мг/л) биомасс фитопланктона, что позволяет считать весенний подледный период важнейшим в формировании общей продуктивности озера, именно в это время наблюдается максимальное развитие водорослей (рис. 2).
Цианобактерии Phormidium sp. и зеленые водоросли Botryococcus braunii на этапе зимней сукцессии определяют структуру планктона в обоих озерах. Ранней весной на смену зимним доминантам приходили динофитовые Peridinium aciculiferum в оз. Кривое и диатомовые Aulacoseira subarctica в оз. Круглое. Диатомовые водоросли A. baicalensis (дать автора вида), A. islandica (дать автора вида), Stephanodiscus meyeri (дать автора вида) и Synedra sp. могут вносить важный вклад в биомассу весеннего фитопланктона во многих олиготрофных водоемах, например, в оз. Байкал, Ладожское, Онежское и других (Petrova, 1987; Popovskaya et al., 2015; Sharov, Denisov, 2021). Однако, в оз. Кривое диатомовые были слабо развиты (≤10% по биомассе). Бедность разнообразия диатомовых и их низкие биомассы — характерная черта изученных озер, они обратно пропорционально связаны с количеством динофитовых.
В конце весны–начале лета (июнь) в обилии развивались золотистые водоросли (Dinobryon и Uroglena). Гидрологические условия изученных озер (низкое содержание минеральных солей, рН и олиготрофный статус) благоприятны для роста и размножения золотистых водорослей (De Hoyos et al., 1998). Биомасса золотистых положительно коррелировала с температурой воды (R = 0.56), что подтверждает их важную роль в биомассе фитопланктона по мере роста температуры весной.
Сходная сукцессия и доминирование такого же комплекса видов — характерная черта других субарктических озер (Eloranta et al., 1995). Например, в озерах финской Лапландии основу фитопланктона часто представляли золотистые Uroglena sp., Chrysococcus spp., Dinobryon spp. и диатомовые Cyclotella spp. (Forsström et al., 2005).
Считается, что активность подледного фитопланктона в континентальных водоемах невысока из-за низкой освещенности (Öterler, 2017). Освещенность лимитирует фитопланктон при температуре воды 5˚C и <0.9–0.2 моль фотонов/(м2 · сут) (Reynolds, 2006) или 7.0–1.6 Вт/м2 соответственно. Доминирование цианобактерий в темное время (зимой) связано с их способностью адаптироваться к низкой освещенности. Это происходит благодаря наличию особых пигментов — фикобилипротеинов (Oliver, Ganf, 2000). Криптофитовые и динофитовые водоросли, которые также доминировали в подледном фитопланктоне, получают преимущество перед автотрофами при низкой освещенности в силу способности к миксотрофии.
Освещенность в подледный период была низкой в изученных озерах, что связано с наличием снега на льду. При отсутствии снега свет проникает до глубины >30 м, и стимулирует развитие фитопланктона оз. Байкал (Popovskaya et al., 2015) и водорослевых матов на дне озер Антарктиды (Sharov et al., 2015).
В изученных озерах и в большинстве водоемов Карелии подледный фитопланктон в видовом отношении был богаче сообществ льда (Генкал, Комулайнен, 2020). Пресноводный лед существует значительно более короткое время, чем морской, а система пор и каналов возникает только весной при его таянии (Salonen et al., 2009), поэтому зимой в плотном льду присутствуют только вмерзшие в него водоросли в неактивном состоянии. Они сохраняют жизнеспособность и возвращаются к активной жизни при таянии льда (Afonina et al., 2017). В отдельных случаях водоросли во льду сохраняют высокую активность (Bondarenko et al., 2012) и их обилие в нижнем слое льда может быть даже выше, чем в подледной воде (Баженова, Коржова, 2014). Обилие ледовых водорослей определяется совокупностью факторов, основные из которых — условия освещенности, зависящие от толщины льда и снежного покрова (Riedel et al., 2008), концентрация биогенных элементов (Smith et al., 1997), морфология нижней поверхности льда (Mundy et al., 2007).
Увеличение доли вспомогательных пигментов в фитопланктоне и концентрации каротиноидов (значения пигментного индекса k/a >1) свидетельствует о структурно-функциональных перестройках в фитопланктоне и снижении его функциональной активности при неблагоприятном воздействии факторов окружающей среды, как естественных, так и техногенных (Минеева, 2004). Фитопланктон в указанный период исследования имел низкую фотосинтетическую активность. Наиболее высокое отношение концентрации каротиноидов к концентрации Хл а (1.7–19.4) отмечено во льду, особенно в его верхних слоях, что свидетельствует об отсутствии фотосинтетической активности водорослей.
Освещенность, температура и уровень содержания фитопигментов определяют продуктивность системы, но в изученный период они не лимитируют динамику тех или иных групп водорослей в этих озерах, кроме цианобактерий. Цианобактерии обратно пропорционально связаны с температурой и освещенностью. По-видимому, они более адаптированы к условиям истощения пищевых ресурсов (поскольку способны фиксировать азот) и в осенний, и в зимний период (пример — оз. Кривое) и получают преимущество в это время.
Заключение
Полученные результаты свидетельствуют о несущественном различии в составе зимних доминирующих видов и динамике биомассы фитопланктона между светлым глубоководным и гумифицированным мелководном озером. В гумифицированном оз. Круглое подледное развития фитопланктона было слабее, чем в оз. Кривое. В обоих озерах динамика фитопланктона характеризуется ранневесенним пиком, который может превышать летний пик и вносить вклад в формирование общей продуктивности северных озер. Этот период должен учитываться при изучении сукцессии планктона озер. В оз. Кривое с неокрашенной гумусом водой количественное развитие фитопланктона в конце подледного периода было сравнимо или выше, чем в период открытой воды.
ФИНАНСИРОВАНИЕ
Работа выполнена в рамках гранта Российского фонда фундаментальных исследований № 19-04-01000 и при поддержке Министерства науки и высшего образования Российской Федерации в рамках государственных заданий № 122031100274-7 и 124032100076-2.
Сокращения п/; Хл а – хлорофилл а.
Об авторах
А. Н. Шаров
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина Российской академии наук
Автор, ответственный за переписку.
Email: sharov@ibiw.ru
Россия, Ярославская обл., Некоузский р-н, пос. Борок
Н. А. Березина
Зоологический институт Российской академии наук
Email: sharov@ibiw.ru
Россия, Санкт-Петербург
А. А. Максимов
Зоологический институт Российской академии наук
Email: sharov@ibiw.ru
Россия, Санкт-Петербург
О. Б. Максимова
Всероссийский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства и океанографии
Email: sharov@ibiw.ru
Санкт-Петербургский филиал
Россия, Санкт-ПетербургСписок литературы
- Баженова О.П., Коржова Л.В. 2014. Криофитон озера Калач (Омская область) // Сиб. экол. журн. Т. 21. № 1. С. 61.
- Генкал С.И., Комулайнен С.Ф. 2020. Диатомовые водоросли льда и подледной воды некоторых озер Карелии // Ботан. журн. Т. 105. № 2. С. 159. https://doi.org/10.31857/S0006813621050033
- Минеева Н.М. 2004. Растительные пигменты в воде Волжских водохранилищ. М.: Наука.
- Никулина В.Н. 2016. Многолетние изменения фитопланктона в водоеме, не подверженном антропогенному воздействию (озеро Кривое, Северная Карелия) // Тр. Зоол. ин-та РАН. Т. 320. № 3. С. 336.
- Afonina E.Yu., Tashlikova N.A., Tsybekmitova G.Ts., Obyazov V.A. 2017. Algae and invertebrates in freshwater ice (Zabaikalsky krai) // Kriosfera Zemli. V. 21(5). P. 60. https://doi.org/10.21782/EC1560-7496-2017-5(60-68)
- Bondarenko N.A., Belykh O.I., Golobokova L.P. et al. 2012. Stratified distribution of nutrients and extremophile biota within freshwater ice covering the surface of Lake Baikal // J. Microbiol. V. 50. P. 8. https://doi.org/10.1007/s12275-012-1251-1
- De Hoyos C., Aldasoro J.J., Toro M., Comín F.A. 1998. Specific composition and ecology of chrysophyte flagellates in Lake Sanabria (NW Spain) // Phytoplankton and Trophic Gradients. Developments in Hydrobiology. V. 129. Dordrecht: Springer. https://doi.org/10.1007/978-94-017-2668-9_25
- Duthie H., Hart C.J. 1987. The phytoplankton of the subarctic Canadian Great Lakes // Archiv für Hydrobiologie. Beiheft Ergebnisseder Limnologie. V. 25. № 1. Р. 9.
- Eloranta P., Sandgren C.D., Smol J.P., Kristiansen J. 1995. Biogeography of chrysophytes in Finnish lakes. Chrysophyte algae. Ecology, phylogeny and development. Cambridge: Cambridge UniV. Press. P. 214.
- Forsström L., Sorvari S., Korhola A. et al. 2005. Seasonality of phytoplankton in subarctic Lake Saanajärvi in NW Finnish Lapland // Polar Biol. V. 28. P. 846. https://doi.org/10.1007/s00300-005-0008-2
- Hamilton, D.P., Salmaso, N., Paerl, H.W. 2016. Mitigating harmful cyanobacterial blooms: strategies for control of nitrogen and phosphorus loads // Aquat. Ecol. V. 50. P. 351–366. https://doi.org/10.1007/s10452-016-9594 z
- Hillebrand H., Dürselen C.-D., Kirschtel D. et al. 1999. Biovolume calculation for pelagic and benthic microalgae // J. Phycology. V. 35. P. 403. https://doi.org/10.1046/j.1529-8817.1999.3520403.x
- Kalinkina N.M., Tekanova E.V., Ryzhakov A.V. 2020. Brownification and its consequences for the ecosystems of Lake Onego and Vygozerskoe reservoir under influence of climatic and anthropogenic factors // Limnology and Freshwater Biol. № 4. P. 667. https://doi.org/10.31951/2658-3518-2020 A-4-667
- Maximov A.A. 2021. Population dynamics of the glacial relict amphipods in a subarctic lake: role of density-dependent and density-independent factors // Ecology and Evolution. № 11. P. 15905. https://doi.org/10.1002/ece3.8260
- Mundy C.J., Barber D.G., Michel C. et al. 2007. Linking ice structure and microscale variability of algal biomass in Arctic first-year sea ice using an in situ photographic technique // Polar Biol. V. 30. P. 1099. https://doi.org/10.1007/s00300-007-0267-1
- Okhapkin, A., Sharagina, E., Kulizin, P., Startseva, N., Vodeneeva, E., 2022. Phytoplankton community structure in highly-mineralized small gypsum karst lake (Russia). Microorganisms № 10, Р. 386. https://doi.org/10.3390/microorganisms10020386
- Oliver R., Ganf G. 2000. Freshwater Blooms // The Ecology of Cyanobacteria: Their Diversity in Time and Space. The Netherlands: Kluwer Acad. Publ. P. 149.
- Öterler B. 2017. Winter Phytoplankton Composition Occurring in a Temporarily Ice-Covered Lake: a Case Study // P. J. Environ. Stud. V. 26. № 6. P. 2677. https://doi.org/10.15244/pjoes/74015
- Paerl H.W., Huisman J. 2009. Climate change: a catalyst for global expansion of harmful cyanobacterial blooms // Environmental Microbiology Reports. № 1. P. 27. https://doi.org/10.1111/j.1758-2229.2008.00004.x
- Petrova N. 1987. The phytoplankton of Ladoga and Onega lakes and its recent successional changes // Arch. Hydrobiol. Beih. Ergebn. Limnol. V. 25. P. 11.
- Popovskaya G.I., Usol’tseva M.V., Domysheva V.M. et al. 2015. The spring phytoplankton in the pelagic zone of Lake Baikal during 2007‒2011 // Geography and Natural Resources. V. 36. № 3. P. 253.
- Reynolds C.S. 2006. The ecology of phytoplankton. Cambridge: Cambridge UniV. Press.
- Riedel A., Michel C., Gosselin M., LeBlanc B. 2008. Winter-spring dynamics in sea-ice carbon cycling in the coastal Arctic Ocean // J. Mar. Syst. V. 74. P. 918. https://doi.org/10.1016/j.jmarsys.2008.01.003
- Salonen K., Leppäranta M., Viljanen M., Gulati R.D. 2009. Perspectives in winter limnology: closing the annual cycle of freezing lakes // Aquat. Ecol. V. 43. P. 609. https://doi.org/10.1007/s10452-009-9278 z
- Senar O.E., Creed I.F., Trick C.G. 2021. Lake browning may fuel phytoplankton biomass and trigger shifts in phytoplankton communities in temperate lakes // Aquat. Sci. V. 83. № 21. https://doi.org/10.1007/s00027-021-00780-0
- Sharov A., Denisov D. 2021. Algae of Lakes in the European North of Russia //Lake Water: Properties and Uses (Case Studies of Hydrochemistry and Hydrobiology of Lakes in Northwest Russia). New York: Nova Science Publ. P. 153.
- Sharov A.N., Berezina N.A., Nazarova L.E. et al. 2014. Links between biota and climate-related variables in the Baltic region using Lake Onega as an example // Oceanologia. V. 56. № 2. P. 291.
- Sharov A.N., Berezina N.A., Tolstikov A.V. 2015. Life under ice in the perennial ice-covered Lake Glubokoe in Summer (East Antarctica) // Lakes and Reservoirs: Research and Management. V. 20. P. 120.
- Smith R.E.H., Gosselin M., Taguchi S. 1997. The influence of major inorganic nutrients on the growth and physiology of high arctic ice algae // J. Mar. Systems. V. 11(2). P. 63. https://doi.org/10.1016/S0924-7963(96)00028-0
- Suarez E.L., Tiffay M.-C., Kalinkina N. et al. 2019. Diurnal variation in the convection-driven vertical distribution of phytoplankton under ice and after ice-off in the large Lake Onego (Russia) // Inland Waters. V. 9. № 2. P. 193. https://doi.org/10.1080/20442041.2018.1559582
- Terentjev P.M., Berezina N.A. 2022. Ecological and Morphological Characteristics and Feeding of Perch (Perca fluviatilis) in the Autumn–Winter Period in Dystrophic and Oligotrophic Lakes of Northern Karelia (Russia) // Inland Water Biol. V. 15(6). P. 915–928. https://doi.org/10.1134/S1995082922060177
- UNESCO. 1966. Determination of photosynthetic pigments. Report of SCOR — UNESCO working group 17 on determination of photosynthetic pigments (pP. 9–18). Paris: UNESCO.
- Winberg G.G., Alimov A.F., Boullion V.V. et al. 1973. Biological productivity of two subarctic lakes // Freshwater Biol. V. 3(2). P. 177.
Дополнительные файлы
