Антивирусный потенциал полисахаридов морских бактерий

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Интенсивные популяционные взаимодействия между элементами планктона и виропланктона Мирового океана сформировали древние и одновременно универсальные механизмы защиты морских бактерий и архей от воздействия на них вирусов океана. Одним из таких механизмов являются экзополисахариды, которые секретируются морскими прокариотами с целью взаимодействия с поверхностными белками вирусных частиц и предотвращения связывания вирусных пепломеров с рецепторами потенциальных клеток-мишеней. Поэтому среди экзополисахаридов морских бактерий в большом количестве обнаруживают вещества с широким спектром действия, проявляющие противовирусный эффект и способность модулировать межклеточные взаимодействия. В обзоре проанализированы современные представления об экзополисахаридах морских бактерий, их противовирусном потенциале, антиоксидантной и иммуномодулирующей активности. Дана краткая характеристика структурных и физико-химических свойств таких соединений, раскрыты основные механизмы противовирусной активности наиболее известных представителей этого класса органических полимеров. Показано, что экзополисахариды морских бактерий являются перспективным и чрезвычайно богатым источником противовирусных лекарственных субстанций.

Полный текст

На протяжении всей своей эволюции морские бактерии были вынуждены осуществлять конкуренцию не только с другими прокариотами из доменов Archaea и Bacteria, но и наиболее многочисленными в Мировом океане представителями домена Virae (Khotimchenko, Shchelkanov, 2024). На каждую прокариотическую клетку планктона приходится не менее сотни, а чаще десятки тысяч частиц виропланктона (Hara et al., 1991; Breitbart, 2012). Поэтому в процессе эволюции морские бактерии приобрели многочисленные механизмы противовирусной защиты как на уровне популяции, так и на уровне индивидуальной клетки. Одним из таких механизмов стали экзополисахариды (ЭПС) – углеводородные полимеры, секретируемые одноклеточными микроорганизмами, присутствующими на внешней поверхности клеточных стенок, в слизистом чехле или в окружающей среде (Кузнецова и др., 2023; Bello-Morales et al., 2022).

Морские микроорганизмы, составляющие не менее половины первичной продукции органических веществ на нашей планете, постоянно присутствуют в морских экосистемах и могут быть изолированы из толщи воды, морских отложений, представителей морской флоры и фауны (Shyam et al., 2021). При этом ЭПС участвуют в молекулярном распознавании, передаче межклеточных сигналов, процессе адгезии микроорганизмов к различным поверхностям, защищают их от разнообразных физико-химических и биологических воздействий (Беседнова и др., 2022; Кузнецова и др., 2023) и сами способны модулировать действие метаболитов, регулирующих физиологические процессы в микробных популяциях (Vavilin et al., 2002).

ЭПС из морских бактерий привлекают к себе внимание ученых в качестве потенциального источника противовирусных лекарственных веществ, поскольку они в большинстве случаев нетоксичны или слабо токсичны, обладают антимикробным, противовоспалительным, антиоксидантным и иммуномодулирующим действием, что имеет значение для терапии вирусных инфекций, при которых окислительный стресс, системное воспаление и нарушения со стороны иммунной системы являются важными компонентами патогенеза. Особую ценность этим соединениям придает то, что они являются поливалентными биорегуляторами – биологически активными веществами (БАВ) с разнообразной ассоциированной активностью (Almutairi, Helal, 2021; Qi et al., 2022; Mishra et al., 2023).

Несмотря на очевидный прогресс в области контроля за вирусными инфекциями, для многих из них нет профилактических вакцин и эффективных методов медикаментозного лечения. В этой связи поиск новых противовирусных соединений сохраняет свою несомненную актуальность. Один из подходов к разработке противовирусных препаратов направлен на изучение вируса и идентификацию конкретного вирусного белка в качестве лекарственной мишени с целью ограничения его потенциальной токсичности и повышения эффективности препарата. Второй подход предполагает создание противовирусных препаратов широкого спектра действия, которые нацелены на константые белки, принадлежащие различным вирусам или на универсальные клеточные процессы, протекающие в инфицированных клетках (Geraghty et al., 2021; Besednova et al., 2022).

Целью настоящей работы является обзор литературных источников последних лет, касающихся перспектив применения ЭПС из морских бактерий в качестве противовирусных средств.

Структурные и физико-химические характеристики ЭПС

В зависимости от локализации и функций полисахариды бактерий можно разделить на три группы: запасные (внутриклеточные), структурные (входящие в состав клеточных стенок) и внеклеточные (ЭПС) (Laroche, 2022).

Морские микробные полисахариды, особенно внеклеточные, отличаются структурным разнообразием и сложностью строения. Основной скелет этих биополимеров состоит из моносахаридных единиц, связанных между собой, как правило, O-гликозидными связями. Они могут быть подразделены на регулярные (из идентичных повторяющихся звеньев) и нерегулярные (из различных типов звеньев без выраженных закономерностей). Из полисахаридов второго типа можно выделить обширную группу соединений со скрытой регулярностью, которые образуются в живой клетке из регулярных молекул в результате химических модификаций, причем модифицированные звенья распределяются вдоль полимерной цепи либо в виде блоков произвольной длины, либо хаотически. C точки зрения компонентного состава, выделяют гомо- и гетерополисахариды. Первую группу составляют полисахариды, построенные из одного вида моносахаридных остатков (Wang et al., 2012; Barcelos et al., 2020).

Моносахаридный состав ЭПС чрезвычайно разнообразен и включает нейтральные сахара (пентозы, гексозы, гептозы и их производные), амино- и диаминосахара, уроновые кислоты (в том числи амино- и диаминоуроновые кислоты), дезокси- и дидезоксисахара, улозоновые кислоты и разветвленные моносахариды, как распространенные в природе, так и не найденные в других источниках. Кроме того, ЭПС микроорганизмов часто содержат неуглеводные заместители: ацетильные, метильные, аминоацильные, глицерильные, пирувильные, сукцинильные, лактильные, фосфатные и сульфатные группы (Poli et al., 2010; Casillo et al., 2018). Природа, последовательность, аномерная конфигурация, тип связи и тип замещения индивидуальных моносахаридных остатков внутри повторяющейся единицы является характерным и уникальным для каждого полисахарида. Разнообразие компонентов и их связей делает возможным существование огромного количества структур полисахаридных цепей, которые всё чаще обнаруживают в природных соединениях.

Полимерная структура микробных ЭПС придает им свойства, которыми не обладают мономерные полисахариды. Благодаря их высокой молекулярной массе, динамическому радиусу и повторяющейся структуре полимеры могут быть скорректированы для регулирования их фармакодинамики и фармакокинетики – например, путём множественного присоединения лигандов, определяющих множественное связывание с рецепторами на поверхности клетки-мишени (Bianculli et al., 2020) или вирусной частицы (Беседнова и др., 2022). Это очень важное свойство, поскольку поливалентные взаимодействия намного сильнее, чем моновалентные.

По данным различных авторов, молекулярная масса ЭПС колеблется в пределах 104–106 Да (Almutairi, Helal, 2021); (1–5) × 105 Да (García et al., 2022). Молекулярные массы гомополисахаридов, как правило, выше гетерополисахаридов – в среднем 107 Да vs. 104–106 Да (Panchal et al., 2022). В большинстве случаев ЭПС безопасны, стабильны при физиологических условиях, биосовместимы и биоразлагаемы (Moreira et al., 2022). Эти макромолекулы имеют сложные химические структуры в соответствии с каждым видом, обладают антиоксидантными, противовоспалительными, иммуномодулирующими, антимикробными и противоопухолевыми свойствами. Содержание полисахаридов в бактериальных клетках в зависимости от условий выращивания может достигать 50% сухой массы (Levasseur et al., 2020).

Цианобактерии (ЦБ) (прежнее название – сине-зеленые водоросли), составляющие в домене Bacteria отдельный тип Cyanobacteria, представители которого способны к оксигенному фотосинтезу (и более того, являются древнейшими из известных фотосинтезирующих организмов), имеют некоторые структурные особенности ЭПС по сравнению с полимерами, продуцируемыми другими микроорганизмами, – например, наличие уроновых кислот и сульфатных групп (Babich et al., 2022).

В последнее время внимание ученых привлекают микроорганизмы-экстремофилы, обитающие в глубоководных зонах, гидротермальных жерлах, вулканических и гидротермальных морских районах, соленых линзах и морском льду полярных регионов. ЭПС экстремофилов часто выполняют не только противовирусную, но и средообразущую функцию вблизи продуцента (Merino et al., 2019; Zhu et al., 2020; Kochhar et al., 2022). В связи с этим можно ожидать получения из таких микроорганизмов ЭПС с уникальными физико-химическими свойствами.

Основной проблемой, связанной с коммерческим применением ЭПС из морских бактерий, на сегодняшний день является высокая стоимость их производства. Однако понятно, что использование бактерий для получения необходимых ЭПС позволяет в ближайшей перспективе применять автоматизированные реакторы, которые имеют известные преимущества: легкость контроля, отсутствие зависимости от сезонных погодных колебаний и климатических изменений, воспроизводимость полученных параметров, высокую степень стандартизации. Это позволяет использовать получаемые продукты в биомедицинском секторе, в том числе при производстве противовирусных препаратов, БАД и компонентов функциональных диетических продуктов (Kokoulin et al., 2021). В последние годы много работ посвящено оптимизации параметров ферментации для разработки крупномасштабного производства ряда этих соединений (García et al., 2022).

Для получения новых соединений (в том числе полисахаридов) предложено использовать выделение их из малоизвестных или неизученных видов, создание различных стрессовых условий при культивировании, ферментативную обработку известных молекул (Abu-Ghosh et al., 2021). Все эти подходы можно определенным образом комбинировать.

Для усиления биологической активности ЭПС могут быть соответствующим образом модифицированы. Молекулярную массу можно снизить физическим воздействием (ультразвуковым или микроволновым) и/или с помощью специфических ферментов, разрушающих гликозидные связи. Химическая модификация ЭПС путем введения новых функциональных групп (сульфатирование, фосфорилирование, ацетилирование, селенилирование) также влияет на их физико-химические свойства и биологическую активность, в том числе на противовирусную (Liu et al., 2023).

Антивирусные свойства и механизмы действия ЭПС морских бактерий

ЭПС морских бактерий обладают способностью ингибировать как оболочечные, так и безоболочечные вирусы, хотя конкретные соединения могут обладать избирательностью действия.

Недавно был выделен низкомолекулярный ЭПС, продуцируемый термостойкой грамположительной Bacillus licheniformis (Bacillales: Bacillaceae), содержащий остатки полиглутаминовой и тейхоевой кислот, и протестирована его способность ингибировать in vitro репродукцию Simplexvirus humanalpha 11 (Herpevirales: Herpesviridae), Perhabdovirus perca (Mononegavirales: Rhabdoviridae) и Vesiculovirus indiana (Mononegavirales: Rhabdoviridae), Protoparvovirus rodent 1 (Piccovirales: Parvoviridae) (Sánchez-León et al., 2020). Данный ЭПС ингибировал проникновение в клетки оболочечных S. humanalpha 1 и V. indiana. Оболочечный Pe. perca и безоболочечный Pr. rodent 1 оказались нечувствительны к действию этого соединения. Обращает на себя внимание чрезвычайно низкий уровень токсичности ЭПС как в экспериментах in vitro, так и in vivo (на модели лабораторных мышей). Арена с соавторами (Arena et al., 2006) исследовали антивирусное и иммуномодулирующее действие ЭПС B. licheniformis, выделенной из вод горячего источника в Италии. Данное соединение включало тетрасахаридное регулярно повторяющееся звено, состоящее из сахаров с маннозо-пиранозной структурой. В дозах 200 и 300 мкг/мл ЭПС значительно снижал титр Simplexvirus humanalpha 2 (Herpevirales: Herpesviridae) в мононуклеарных клетках периферической крови человека, для которых был практически нетоксичен, а также усиливал продукцию провоспалительных цитокинов IFNα, IFNγ, IL-12 и IL-18.

Антигерпетическая активность (на модели S. humanalpha 2) была показана при изучении ЭПС морской термофильной грамположительной бактерии licheniformis (Gugliandolo et al., 2014; Spano, Arena, 2016). В концентрации 300 мкг/мл степень подавления вирусной репродукции достигала 85% при увеличении продукции Th-1-цитокинов (TNFα, IFNγ, IFNα, IL-12 и IL-18). ЭПС может рассматриваться в качестве терапевтического средства у пациентов с герпесвирусной инфекцией, сопровождающейся ослабленным иммунитетом – например, на фоне инфекции Lentivurus humanense 1 (Ortervirales: Retroviridae), когда стандартные терапевтические подходы малоэффективны (Папуашвили, Щелканов, 2004; Karamov et al., 1996).

Заметной противовирусной активностью в отношении S. humanalpha 2 обладает ЭПС, продуцируемый грамотрицательными бактериями Pseudoalteromonas sp. (Alteromonadales: Pseudoalteromonadaceae), выделенными из красной морской губки Haliclona sp. (Haplosclerida: Chalinidae): ингибирование бляшкообразования после обработки равным объемом 10% ЭПС достигает 60% (Al-Nahas et al., 2011).

ЭПС бактерии-актиномицета Streptomyces hissutus (Streptomycetales: Streptomycetaceae) из морских осадков на северном побережье Египта, широко распространенной как на суше, так и в водной среде (Лямин и др., 2022), представляет собой гетерополисахарид (глюкуроновая кислота : галактуроновая кислота : глюкоза : манноза : арабиноза = 1.2 : 0.6 : 0.1 : 0.2 : 0.1) с молярной массой 4.25 × 105 г/моль и ковалентными β-связями без сульфатных групп. Он имеет 50% цитотоксическую концентрацию в культуре клеток Vero (эпителий почки африканской зеленой мартышки), равную 387 мкг/мл, и практически не проявляет токсичности вплоть до 125 мкг/мл. При этом вблизи верхнего уровня нетоксичности этот ЭПС подавляет уровень репродукции S. humanalpha 1, Hepatovirus A (Picornavirales: Picornaviridae) и Enterovirus B (Picornavirales: Picornaviridae) на 84.9%, 20.3% и 45.4%, соответственно. Авторы полагают, что в связи с высоким содержанием глюкуроновой и галактуроновой кислот ЭПС может блокировать рецепторы на поверхности вирусной частицы, что предотвращает рецептор-опосредованную адсорбцию на поверхности потенциальной клетки-мишени (El Awady et al., 2019).

ЭПС из морских бактерий Pseudoalteromonas nigrifaciens (Alteromonadales: Pseudoalteromonadaceae) проявил себя как протективное, противовирусное и иммунокорригирующее средство в терапии инфекции, вызванной Orthoflavivirus encephalitidis (Amarillovirales: Flaviviridae). В условиях эксперимента этот ЭПС был нетоксичным, способным ингибировать репликацию вируса в клетках линии СПЭВ (клетки почки эмбриона свиньи) и моноцитах периферической крови человека. Полисахарид снижал количество инфицированных клеток и уровень вирусной нагрузки, проявлял выраженный вирулицидный эффект. Индекс селективности (отношение 50% эффективной дозы препарата к его 50% цитотоксической дозе) для ЭПС превышает 40. При внесении полисахарида в образцы цельной крови, инфицированной O. encephalitidis, восстанавливалось индуцированное вирусом снижение экспрессии клеточных маркеров CD69, HLA-DR и СD107a на поверхности моноцитов, NK и CD8+ T-клеток и продукция иммунокомпетентными клетками провоспалительных цитокинов (IL-1, IL-6, IL-8, IFNα, IFNγ) (Крылова и др., 2019).

Таким образом, микробные ЭПС, как и полисахариды из других природных источников, могут оказывать свое противовирусное действие локально или системно. Они могут инактивировать вирусы, ингибировать адсорбцию, проникновение или репликацию вирусов. При локальном способе воздействия ЭПС напрямую взаимодействуют либо с вирусами, либо с рецепторами на клетке-хозяине, в результате чего ускоряется процесс элиминации возбудителя. При системном действии микробные ЭПС стимулируют врожденный и адаптивный иммунитет, оказывают антиоксидантное и противовоспалительное действие или подавляют ферменты репликации вируса (Saadat et al., 2019). Большинство изученных к настоящему времени ЭПС из морских бактерий воздействуют на вирусные инфекции, препятствуя прикреплению вирусов к клеткам. ЭПС могут производиться в больших масштабах в контролируемых условиях и могут быть альтернативой для лечения и профилактики вирусных инфекций.

Особый интерес исследователей вызывают ЭПС, продуцируемые ЦБ, поскольку древность этой группы бактерий подразумевает наличие развитых средств противовирусной защиты, имеющих важное значение в процессе популяционных взаимодействий планктона и виропланктона (Khotimchenko, Shchelkanov, 2024). В частности, богатым источником ЭПС являются морские ЦБ Arthrospira platensis и A. maxima (Oscillatoriales: Microcoleaceae)2 . В последнее время эти ЭПС стали активно использовать в фармацевтической промышленности, поскольку они обладают ингибирующим действием по отношению ко многим оболочечным вирусам, а также характеризуются высокой противовоспалительной, антиоксидантной и иммуномодулирующей активностью (Беседнова и др., 2022). При этом экстракты спирулины, полученные с помощью различных методов, могут различаться по своей вирусингибирующей активности.

ЭПС из различных видов спирулины показали широкий спектр противовирусной активности, например, в отношении Orthopoxvirus cowpoxense (Chitovirales: Poxviridae), Orthopoxvirus ectromelia (Chitovirales: Poxviridae), S. humanalpha 1, 2, Cytomegalovirus humanbeta 5 (Herpesvirales, Orthoherpesviridae), Morbillivirus hominis (Mononegavirales: Paramyxoviridae), Orthorubulavirus parotitidis (Mononegavirales: Paramyxoviridae), Alphainfluenzavirus influenzae (Articulavirales: Orthomyxoviridae) (Singab et al., 2018), Betacoronavirus sarsense 2 (Nidovirales: Coronaviridae), Enterovirus A (Picornavirales: Picornaviridae), Orthopneumovirus hominis (Mononegavirales: Pneumoviridae), Orthoebolavirus zairense (Mononegavirales: Filoviridae) (Chen et al., 2021), Cyvirus cyprinidallo 3 (Herpesvirales: Alloherpesviridae) (Reichert et al., 2017; Bergmann et al., 2022).

Чен с соавторами (Chen et al., 2016) экспериментально определили, что активные соединения, ответственные за противогриппозную активность холодоводного экстракта спирулины, представляют собой высокомолекулярные соединения (> 100 кДа), термолабильные и отрицательно заряженные полисахариды, в том числе сульфатированный полисахарид кальций-спирулан. В холодоводном экстракте спирулины содержалось 39.3 ± 5.6% белка, 11.8 ± 5.7% полисахаридов, 19.3 ± 2.7% нуклеиновых кислот, 5.0 ± 1.0% воды, 1.2 ± 0.3% золы и 23.4% других или неизвестных компонентов. Авторы полагают, что в тандеме с полисахаридом в данном случае может действовать фикоцианин, находящийся в экстракте, который подавляет экспрессию воспалительных факторов iNOS и COX-2 в макрофагах или легочной ткани, что было показано в экспериментах in silico (Pendyala, Patras, 2020). Фикоцианобилин, полученный из спирулины, имеет более высокую аффинность связывания с B. sarsense 2 (Petit et al., 2021) по сравнению с известными лекарственными препаратами, такими как ремдесивир, лопинавир и нелфинавир, успешно зарекомендовавшими себя в терапии COVID-19 (Щелканов и др., 2020).

Xолодноводный экстракт спирулины на 90% ингибировал проникновение псевдовирусных частиц бетакоронавирусов в клетки-мишени, прикрепляясь к S-белкам вирусных пепломеров, но не к поверхности клетки (Karthika et al., 2020). Для подтверждения факта, что ингибирующая активность не была связана с протеолитическим расщеплением S-белков в составе пепломеров, авторы инкубировали этот белок с экстрактом спирулины в течение 90 мин, а затем белок анализировали с помощью вестерн-блоттинга. Вместе с тем S-белки, инкубированные с экстрактом спирулины, не ингибировали взаимодействие первой субъединицы S-белка с рецептором ACE2, что свидетельствует о блокировании полисахаридом рецептор-связывающего сайта.

На чувствительность к холодноводному экстракту спирулины были исследованы различные штаммы A. influenzae, в том числе устойчивые к озельтамивиру. При добавлении экстракта спирулины к инфицированным вирусом клеткам MDCK (эпителий почки собаки) отмечено зависимое от дозы снижение числа бляшек на 12.1% (0.38 мг/мл), 22.9% (0.75 мг/мл), 58.7% (1.50 мг/мл) и 89.0% (3.00 мг/мл). При этом 50% эффективная концентрация экстракта для пандемического штамма A. influenzae A/TW/126/2009 (H1N1pdm09) составила 0.59 ± 0.02 мг/мл. Авторы предполагают, что мишенью для спирулины является гемагглютинин (Chen et al., 2016). Это позволяет рассматривать холодноводные экстракты спирулины как потенциальные препараты для преодоления лекарственной устойчивости возбудителей гриппа, что чрезвычайно актуально для терапии этого инфекционного заболевания (Колобухина и др., 2011).

Клинические исследования с участием добровольцев (здоровые мужчины) показали, что под влиянием ежедневного приема экстракта спирулины в дозе 50 мг в крови пациентов усиливалась продукция IFNγ и функциональная активность NK-клеток (Hirahashi et al., 2002). По другим данным, у пациентов с ринитом после перорального приема таблеток, содержавших экстракт спирулины, наблюдали значительное купирование симптомов заболевания (Cingi et al., 2008). При исследовании острой и подострой токсичности в экспериментах in vivo на крысах линии Sprague-Dawley было установлено, что экстракт спирулины может оказывать терапевтический эффект в ещё меньших дозах. Механизм действия экстракта спирулины был связан с нарушением процесса проникновения вируса или предотвращения репликации возбудителя в клетках хозяина (Chen et al., 2016). Показано, что экстракты спирулины даже после пребывания на открытом воздухе в течение 4 ч не теряют своей противовирусной активности, что позволило авторам рекомендовать его местное применение в форме спрея (Chen et al., 2021).

Экстракт Arthrospira maxima, полученный из микроводорослей обработкой горячей водой, содержащий 42% полисахарида, 6% белка, 20% нуклеиновых кислот и 11% золы, подавлял образование бляшек штамма Enterovirus A (EV-71)/TW/4643/1998 при добавлении на стадии прикрепления вируса к клеткам-мишеням (Chen et al., 2021).

Экспериментальные данные продемонстрировали противовирусное действие ЭПС A. platensis по отношению к Cyvirus cyprinidallo 3: в концентрации 18 мкг/мл этот полисахарид практически полностью подавлял репликацию вируса в клетках культуры мозга сазана даже через 22 сут после заражения (Reichert et al., 2017; Bergmann et al., 2022). В экспериментах in vivo удавалось полностью подавить инфекционный процесс у обыкновенных карпов Cyprinus carpio, получавших ЭПС в двойной концентрации в течение 6 нед. профилактически (Bergmann et al., 2022).

ЭПС морских бактерий могут ускорять элиминацию возбудителя из организма, взаимодействуя с дендритными клетками и макрофагами, стимулируя пролиферацию T- и B-лимфоцитов, NK-клеток и выработку про- и противовоспалительных цитокинов, а также улучшая выработку антител и усиливая фагоцитарную активность мононуклеаров периферической крови (Salimi, Farrokh, 2023). Вирусная инфекция индуцирует противовирусные иммунные реакции в клетках-хозяевах, первой линией защиты из которых является система интерферонов первого типа. ЭПС способны активировать NK-клетки, которые неспецифически уничтожают инфицированные клетки с помощью перфоринов и гранзимов (Van Erp et al., 2019).

Обнаружена высокая противовоспалительная активность нового ЭПС из бактерии Kocuria sp. (Micrococcales: Micrococcaceae), который в значительной степени нивелировал действие провоспалительных 5-LOX (Alshawwa et al., 2022).

Иммуномодулирующее действие ЭПС, выделенных из ЦБ, описано многими авторами (Chen et al., 2016; Riccio et al., 2020; Nigam et al., 2022). Эти соединения усиливают иммунный ответ, активируя функции макрофагов, продукцию провоспалительных интерлейкинов и фагоцитоз, особенно при первичном ответе (Anvar, Nowruzi, 2021). Из S. platensis получен экстракт, представленный на фармацевтическом рынке как “Иммулина”, который является сильным активатором иммунных клеток. Иммулина проявляет защитный эффект при гриппе, активируя сигнальный путь NF-kB через рецептор TLR2 (Appel et al., 2018).

В последние десятилетия появились публикации о высоком антиоксидантном потенциале ЭПС морских бактерий (Shyam et al., 2021; Qi et al., 2022), что открывает перспективы их использования и в этом направлении (Hassan, Hassan, 2017). На примере ЭПС B. subtilis, состоящего из рамнозы и мальтозы, показано одновременное антивирусное и антиоксидантное действие этого соединения (Hassan, Hassan, 2017). Полисахарид блокировал прикрепление и проникновение S. humanalpha 1 в клетки в дозе 500 мкг/мл. С увеличением концентрации соединения возрастала и его антиоксидантная активность, более высокая, чем активность аскорбиновой кислоты.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Несмотря на успехи в области разработки вакцин для профилактики заболеваний, связанных с вирусами, лекарственные препараты продолжают занимать достойное место в арсенале современной медицины. Это связано с тем, что вакцины не защищают от заражения (они защищают от летальных исходов и тяжелых осложнений), а заболевания все равно часто требуют медикаментозного лечения, особенно в группах риска (Щелканов и др., 2010; Колобухина и др., 2011). Кроме того, далеко не все вирусные инфекции в настоящее время являются вакциноуправляемыми (Руководство, 2013; Karamov et al., 1996), а благодаря высокому уровню генетической изменчивости вирусы быстро приобретают мутации, определяющие устойчивость к применяемым препаратам (Колобухина и др., 2010; Бреслав и др., 2013). Поэтому поиск новых соединений, обладающих широким спектром противовирусной активности, не теряет своей актуальности (Беседнова и др., 2022; Besednova et al., 2021, 2022).

Морские бактерии на протяжении сотен миллионов лет своей эволюции были вынуждены постоянно совершенствовать универсальные механизмы противостояния виропланктону, который является наиболее многочисленным сообществом живых организмов на нашей планете (Khotimchenko, Shchelkanov, 2024). Морская группа домена Bacteria продуцирует колоссальное разнообразие ЭПС с уникальными характеристиками, которые в перспективе могли бы воспроизводиться в необходимом количестве при должном контроле их качества. Человечество только приступило к изучению этого класса природных органических соединений. Однако уже сегодня понятно, что универсальность противовирусного действия ЭПС морских бактерий часто сочетается с разнообразными физиологическими эффектами, важнейшими из которых, с точки зрения терапии вирусных инфекций, являются антиоксидантная и иммуномодулирующая активности. Для усиления этих эффектов могут применяться физические, химические или биологические модификации. Применение подобных методов позволяет получить полисахариды или их сочетания, которые не способствуют формированию у вирусов лекарственной устойчивости. По-видимому, необходимо активнее проводить поиск комбинаций ЭПС морских бактерий с апробированными терапевтическими препаратами, что позволит усиливать лечебный эффект и уменьшать дозы реактогенных и токсичных препаратов.

Долгое время невысокая биодоступность полисахаридов после перорального введения вызывала разочарование у исследователей. Однако это препятствие можно преодолеть с помощью других стратегий введения препаратов, таких, например, как использование аэрозолей (Bello-Morales et al., 2022; Andreu et al., 2023). Кроме того, новые стратегии введения можно сочетать с современными системами доставки химических препаратов (наночастицами, липосомами, липофильными производными лекарств) в виде добавок в пищевые продукты в качестве антивирусных средств (Ratha et al., 2021) и иммуномодуляторов (Khavari et al., 2021) для разработки на их основе терапевтически эффективных противовирусных препаратов (Rosales-Mendoza et al., 2020).

ФИНАНСИРОВАНИЕ РАБОТЫ

Работа выполнена в рамках темы НИР № 122041800135-3 “Молекулярно-генетические и фенотипические свойства возбудителей респираторных инфекций. Поиск эффективных соединений из наземной и морской биоты Дальнего Востока для разработки средств профилактики и лечения” на 2022–2025 годы.

СОБЛЮДЕНИЕ ЭТИЧЕСКИХ СТАНДАРТОВ

В данной работе отсутствуют исследования человека или животных.

КОНФЛИКТ ИНТЕРЕСОВ

Авторы данной работы заявляют, что у них нет конфликта интересов.

1 В 2021 г. Международный Комитет по таксономии вирусов объявил о переходе от собственных и смешанных названий вирусов к стандартной для биологии бинарной системе по принципу “род-вид” – см. подробности в работе (Khotimchenko, Shchelkanov, 2024). В настоящей работе мы будем использовать бинарные названия, но приводить в сносках прежние названия вирусов (Руководство, 2013).

2 В русском языке за представителя рода Arthrospira закрепилось название “спирулина”

×

Об авторах

Т. А. Кузнецова

НИИ эпидемиологии и микробиологии им. Г.П. Сомова Роспотребнадзора

Автор, ответственный за переписку.
Email: takuznets@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-4315-6959
Россия, Владивосток

Н. Н. Беседнова

НИИ эпидемиологии и микробиологии им. Г.П. Сомова Роспотребнадзора

Email: takuznets@mail.ru
Россия, Владивосток

Т. С. Запорожец

НИИ эпидемиологии и микробиологии им. Г.П. Сомова Роспотребнадзора

Email: takuznets@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-8879-8496
Россия, Владивосток

М. С. Кокоулин

Тихоокеанский институт биоорганической химии им. Г.Б. Елякова (ТИБОХ) ДВО РАН

Email: takuznets@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-2245-6802
Россия, Владивосток

Ю. С. Хотимченко

Дальневосточный федеральный университет (ДВФУ); Национальный научный центр морской биологии им. А.В. Жирмунского (ННЦМБ) ДВО РАН

Email: takuznets@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-6979-1934
Россия, Владивосток; Владивосток

М. Ю. Щелканов

НИИ эпидемиологии и микробиологии им. Г.П. Сомова Роспотребнадзора; Дальневосточный федеральный университет (ДВФУ); Национальный научный центр морской биологии им. А.В. Жирмунского (ННЦМБ) ДВО РАН

Email: takuznets@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-8610-7623
Россия, Владивосток; Владивосток; Владивосток

Список литературы

  1. Беседнова Н.Н., Андрюков Б.Г., Запорожец Т.С. и др. Оболочечные вирусы – патогенетическая мишень лектинов цианобактерий // Антибиотики и химиотерапия. 2022. Т. 67. № 5–6. С. 39–60.
  2. Бреслав Н.В., Шевченко Е.С., Абрамов Д.Д. и др. Эффективность применения антинейраминидазных химиопрепаратов во время пандемии гриппа и в постпандемический период // Вопр. вирусологии. 2013. Т. 58. № 1. С. 28–32.
  3. Колобухина Л.В., Меркулова Л.Н., Малышев Н.А. и др. Стратегия ранней противовирусной терапии при гриппе как профилактика тяжелых осложнений // Пульмонология. 2010. № 1. С. 9–14.
  4. Колобухина Л.В., Меркулова Л.Н., Щелканов М.Ю. и др. Пандемический грипп в России: отличительные особенности клинического течения и отсутствие ранней этиотропной терапии как фактор риска развития тяжелых форм заболевания // Терапевтический архив. 2011. Т. 83. № 9. С. 48–53.
  5. Крылова Н.В., Смолина Т.П., Берлизова М.В., Леонова Г.Н. Иммунокорригирующая и противовирусная активность полисахарида из морских бактерий в отношении вируса клещевого энцефалита // Антибиотики и химиотерапия. 2019. Вып. 64. № 11–12. С. 16–24.
  6. Кузнецова Т.А., Запорожец Т.С., Ермакова С.П. и др. Адъюванты на основе полисахаридов из гидробионтов Тихого океана. Владивосток: Дальнаука. 2023.
  7. Лямин А.В., Терещенко В.С., Жестков А.В., Исматуллин Д.Д. Видовое разнообразие представителей рода Streptomyces, выделенных из клинического материала // Инфекция и иммунитет. 2022. Вып. 12. № 2. С. 386–390. doi: 10.15789/2220-7619-SDA-1838
  8. Папуашвили М.Н., Щелканов М.Ю. Эффективность комбинированной терапии герпесвирусных инфекций у ВИЧ-инфицированных пациентов // Вопр. вирусологии. 2004. Т. 49. № 2. С. 25–29.
  9. Руководство по вирусологии. Вирусы и вирусные инфекции человека и животных. М.: МИА. 2013.
  10. Щелканов М.Ю., Колобухина Л.В., Бургасова О.А. и др. COVID-19: этиология, клиника, лечение // Инфекция и иммунитет. 2020. Т. 10. № 3. С. 421–445.
  11. Щелканов М.Ю., Львов Д.Н., Федякина И.Т. и др. Динамика распространения пандемического гриппа А/H1N1 swl на Дальнем Востоке в 2009 г. // Вопр. вирусологии. 2010. Т. 55. № 3. С. 10–15.
  12. Abu-Ghosh S.A., Dubinsky Z., Verdelho V. Unconventional high-value products from microalgae: A review // Bioresour. Technol. 2021. V. 329. Art. ID 124895. doi: 10.1016/biortech.2021.124895
  13. Almutairi M.H., Helal M.M.I. Exopolysaccharide production from isolated Enterobacter sp. strain ACD2 from the northwest of Saudi Arabia // J. King Saud Univ. Sci. 2021. V. 33. № 2. Art. ID 101318. doi: 10.1016/j.jksus.2020.101318
  14. Al-Nahas M.O., Darwish M.M., Ali A.E., Amin M.A. Characterization of an exopolysaccharide-producing marine bacterium, isolate Pseudoalteromonas sp. // Afr. J. Microbiol. Res. 2011. V. 5. № 22. P. 3823–3831.
  15. doi: 10.5897/AJMR11.757
  16. Alshawwa S.Z., Alshallash K.S., Ghareeb A. et al. Assessment of pharmacological potential of novel exopolysaccharide isolated from marine Kocuria sp. strain AG5: Broad-spectrum biological investigations // Life. 2022. V. 12. № 9. Art. ID 1387. doi: 10.3390/life12091387
  17. Andreu S., Kobbe C., Delgado P., Ripa I. Dextran sulfate from Leuconostoc mesenteroides B512F exerts potent antiviral activity against SARS-CoV-2 in vitro and in vivo // Front Microbiol. 2023. V. 14. Art. ID 1185504. doi: 10.3389/fmicb.2023.1185504
  18. Anwar A.A., Nowruzi B. Bioactive peptides of Spirulina: A review // Microb. Bioact. 2021. V. 4. № 1. Р. 134–142. doi: 10.25163/microbbioacts.412117BO719110521
  19. Appel K., Munoz E., Navarrete C. et al. Immunomodulatory and inhibitory effect of Immulina, and Immunloges in the Ig-E mediated activation of RBL-2H3 cells. A new role in allergic inflammatory responses // Plants. 2018. V. 7. № 1. Art. ID 13. doi: 10.3390/plants7010013
  20. Arena A., Maugeri T.L., Pavone B. et al. Antiviral and immunoregulatory effect5 of a novel exopolysaccharide from a marine thermotolerant Bacillus licheniformis // Int. Immunopharmacol. 2006. V. 6. № 1. Р. 8–13. doi: 10.1016/j.intimp.2005.07.004
  21. Babich O., Sukhikh S., Larina V. et al. Algae: study of edible and biologically active fractions, their properties and applications // Plants. 2022. V. 11. № 16. Art. ID 780. doi: 10.3390/plants11060780.
  22. Barcelos M.C.S., Vespermann K.A.C., Pelissari F.M., Molina G. Current status of biotechnological production and applications of microbial exopolysaccharides // Crit Rev Food Sci Nutr. 2020. V. 60. Р. 1475–1495. doi: 10.1080/10408398.2019.1575791
  23. Bello-Morales R., Andreu S., Ruiz-Carpio V. et al. Extracellular polymeric substances: still promising antivirals // Viruses. 2022. V. 14. № 6. Art. ID 1337. doi: 10.3390/v14061337
  24. Bergmann S.M., Reichert M., Hwang J. et al. The application of exopolysaccharides (EPS) can prevent viral disease of fish // Bull. Eur. Assoc. Fish Pathol. 2022. V. 42. № 1. Р. 15–27. doi: 10.48045/001c.38087
  25. Besednova N.N., Andryukov B.G., Kuznetsova T.A. et al. Antiviral effects and mechanisms of action of water extracts and polysaccharides of microalgae and cyanobacteria // J. Pharm. Nutr. Sci. 2022. V. 12. P. 54–73. doi: 10.29169/1927-5951.2022.12.05
  26. Besednova N.N., Andryukov B.G., Zaporozhets T.S. et al. Antiviral effects of polyphenols from marine algae // Biomedicines. 2021. V. 9. № 2. Art. ID 200. doi: 10.3390/biomedicines9020200
  27. Bianculli R.H., Mase J.D., Schulz M.D. Antiviral polymers: past approaches and future possibilities // Macromolecules. 2020. V. 53. Р. 9158–9186. doi: 10.1021/acs.macromol.0c01273
  28. Breitbart M. Marine viruses: truth or dare // Annu. Rev. Mar. Sci. 2012. V. 4. P. 425–448. doi: 10.1146/annurev-marine-120709-142805
  29. Casillo A., Lanzetta R., Parrilli M., Corsaro M.M. Exopolysaccharides from marine and marine extremophilic bacteria: structures, properties, ecological roles and applications // Mar. Drugs. 2018. V. 16. № 2. Art. ID 69. doi: 10.3390/md16020069
  30. Chen Y.-H., Chang G.-K., Kuo S.-M. et al. Well tolerated Spirulina extract inhibits influenza virus replication and reduces virus-induced mortality // Sci. Rep. 2016. V. 6. Art. ID 24253. doi: 10.1038/srep2453
  31. Chen Y.-H., Liao Y.-C., Huang J.-Y. et al. Hot water extract of Arthrospira maxima (AHWE) has broad-spectrum antiviral activity against RNA virus including coronavirus SARS-CoV-2 and the antivirus spray application // Preprint of Far East Bio-Tec Co., Ltd. Taipei, Taiwan. 2021.
  32. doi: 10.1101/2021.06.06.446935
  33. Cingi J., Conk-Dalay S., Cakli H., Bal C. The effect of Spirulina on allergic rhinitis // Eur. Arch. Oto-Rhino-Laringol. 2008. V. 265. № 10. Р. 1219–1223. doi: 10.1007/s00405-008-0642-8
  34. El Awady M.E., Eldin M.A.N., Ibrahim H.M. et al. In vitro evaluation of antioxidant, anticancer, and antiviral activities of exopolysaccharide from Streptomyces hirsutus NRC2018 // J. Appl. Pharm. Sci. 2019. V. 9. № 11. Р. 10–18. doi: 10.7324/JAPS.2019.91102
  35. García A., Fernandez-Sandoval M.T., Morales-Guzman D. et al. Advances in exopolysaccharide production from marine bacteria // J. Chem. Technol. Biotechnol. 2022. V. 97. № 10. Р. 2694–2705. doi: 10.1002/jctb.7156
  36. Geraghty R.J., Aliota M.T., Bonnac L.F. Broad-spectrum antiviral strategies and nucleoside analogues // Viruses. 2021. V. 13. Art. ID 4. P. 667. doi: 10.3390/v13040667
  37. Gugliandolo C., Spano A., Lentini V. et al. Antiviral and immunomodulatory effects of a novel bacterial exopolysaccharide of shallow marine vent origin // J. Appl. Microbiol. 2014. V. 6. № 4. Р. 1028–1034. doi: 10.1111/jam.12422
  38. Hara S., Terauchi K., Koike I. Abundance of viruses in marine waters: assessment by epifluorescence and transmission electron microscopy // Appl. Environ. Microbiol. 1991. V. 57. № 9. P. 2731–2734. doi: 10.1128/aem.57.9.2731-2734.1991
  39. Hassan S.W.M., Hassan A.H.I. Production, characterization and valuable applications of exopolysaccharides from marine Bacillus subtilis SH1 // Pol. J. Microbiol. 2017. V. 66. № 4. Р. 449–461. doi: 10.5604/01.3001.0010.7001
  40. Hirahashi T., Matsumoto M., Hazeki K. et al. Activation of the human innate immune system by spirulina: augmentation of interferon production and NK cytotoxicity by oral administration of hot water extract of Spirulina platensis // Int. Immunopharmacol. 2002. V. 2. № 4. Р. 423–434. doi: 10.1016/s1567-5769(01)00166-7
  41. Karamov E.V., Yaroslavtseva N.G., Shchelkanov M.Yu. et al. Antigenic and genetic relations between different HIV-1 subtypes in Russia // Immunol. Infect. Dis. 1996. V. 6. P. 15–24.
  42. https://api.semanticscholar.org/CorpusID:91155126
  43. Karthika T., Joseph J., Akshay V.R. et al. SARS-CoV-2 Cellular Entry Is Independent of the ACE2 Cytoplasmic Domain Signaling // Cells. 2021. V. 10. № 7. Art. ID 1814. doi: 10.3390/cells10071814
  44. Khavari F., Saidijam M., Taheri M., Nouri F. Microalgae: therapeutic potentials and applications // Mol. Biol. Rep. 2021. V. 48(5). Р. 4757–4765. doi: 10.1007/s11033-021-06422-w
  45. Khotimchenko Yu.S., Shchelkanov M.Yu. Viruses of the Ocean: On the Shores of the Aqua Incognita. Horizons of the Taxonomic Diversity // R. J. Mar. Biol. 2024. V. 50. № 1. P. 3–30.
  46. Kochhar N., Kavya I.K., Shrivastava S. et al. Perspectives on the microorganism of extreme environments and their applications // Curr. Res. Microb. Sci. 2022. V. 3. Art. ID 100134. doi: 10.1016/j.crmicr.2022.100134
  47. Kokoulin M.S., Romanenko L.A., Kuzmich A.S., Chernikov O. Structure of the cell-wall-associated polysaccharides from the deep-sea marine bacterium Devosia submarina KMM9415T // Mar. Drugs. 2021. V. 19. № 12. Art. ID 665. doi: 10.3390/md19120665
  48. Laroche C. Exopolysaccharides from microalgae and cyanobacteria: diversity of strains, production strategies, and application // Mar. Drugs. 2022. V. 20. № 5. Art. ID 336. doi: 10.3390/md20050336
  49. Levasseur W., Perré P., Pozzobon V. A review of high value-added molecules production by microalgae in light of the classification // Biotechnol. Adv. 2020. V. 41. Art. ID 107545. doi: 10.1016/j.biotechadv.2020.107545
  50. Liu T., Ren Q., Wang S. et al. Chemical modification of polysaccharides: a review of synthetic approaches, biological activity and the structure-activity relationship // Molecules. 2023. V. 28. № 16. Art. ID 6073. doi: 10.3390/molecules28166073
  51. Merino N., Aronsdon H.S., Bojanova D.P., Feyhl-Buska J. Living at the extremes: extremophiles and the limits of life in a planetary context // Front. Microbiol. 2019. V. 10. Art. ID 780. doi: 10.3389/fmcb.2019.00780
  52. Mishra N., Gupta E., Walag A.M.P. et al. A review of marine natural product resources with potential bioactivity against SARS-CoV-2 // Trop. J. Nat. l Prod. Res. 2023. V. 7. № 1. Р. 2093–2103. doi: 10.26538/tjnpr/v7i1.2
  53. Moreira J.B., Vaz B.S., Cardias B.B. et al. Microalgae polysaccharides: an alternative source for food production and sustainable agriculture // Polysaccharides. 2022. V. 3. Р. 441–457. doi: 10.3390/polysaccharides3020027
  54. Nigam S., Singh R., Bhardwaj S.K. et al. Perspective on the therapeutic applications of algal polysaccharides // J. Polym. Environ. 2022. V. 30. Р. 785–809. doi: 10.1007/s10924-021-02231-1
  55. Panchal R., Prajapati K., Prajapati M. et al. Bacterial exopolysaccharides: types, its biosynthesis and their application in different Fields // Acta Sci. Biotechnol. 2022. V. 3. № 2. Р. 3–11.
  56. Pendyala B., Patras A. In silico screening of food bioactive compounds to predict potential inhibitors of COVID-19 main protease (Mpro) and RNA-dependent RNA polymerase (RdRp) // Preprint of Department of Agricultural and Environmental Sciences, Tennessee State University. Nashville, USA. 2020. Р. 1–11.
  57. doi: 10.26434/chemrxiv.12051927.v2
  58. Petit L., Vernes L., Cadoret J.P. Docking and in silico toxicity assessment of Arthrospira compounds as potential antiviral agents against SARS-CoV-2 // J. Appl. Phycol. 2021. V. 33. № 3. P. 1579–1602. doi: 10.1007/s10811-021-02372-9
  59. Poli A., Anzelmo G., Nicolaus B. Bacterial exopolysaccharides from extreme marine habitats: production, characterization and biological activities // Mar. Drugs. 2010. V. 8. № 6. Р. 1779–1802. doi: 10.3390/md8061779
  60. Qi M., Zheng C., Wu W. et al. Exopolysaccharides from marine microbes: source, structure and application // Mar. Drugs. 2022. V. 20. № 8. Art. ID 512. doi: 10.3390/md20080512
  61. Ratha S.K., Renuka N., Rawat M. et al. Prospective options of algae derived nutraceuticals as supplements to combat COVID-19 and human coronavirus diseases // Nutrition. 2021. V. 83. Art. ID 111089. doi: 10.1016/j.nut2020.111089
  62. Reichert M., Bergmann S., Lindenberger C. et al. Antiviral activity of exsopolysaccharides from Arthrospira platensis against koi herpesvirus // J. Fish Dis. 2017. V. 40. № 10. Р. 1441–1450. doi: 10.1111/jfd.12618
  63. Riccio G., Ruocco N., Mutalipassi M. et al. Ten-Year research update review: antiviral activities from marine organisms // Biomolecules. 2020. V. 10. № 7. Art. ID 1007. doi: 10.3390/biom10071007
  64. Rosales-Mendoza I., García-Silva O., González-Ortega O. et al. The potential of algal biotechnology to produce antiviral compounds and biopharmaceuticals // Molecules. 2020. V. 25. Art. ID 4049. doi: 10.3390/molecules25184049
  65. Saadat Y.R., Khosroushahi A.Y., Gargari B.P. A comprehensive review of anticancer, immunomodulatory and health beneficial effects of the lactic acid bacteria exopolysaccharides // Carbohydr. Polym. 2019. V. 217. Р. 79–89. doi: 10.1016/j.carbpol.2019.04.025
  66. Salimi F., Farrokh P. Recent advances in the biological activities of microbial exopolysaccharides // World J. Microbiol. Biotechnol. 2023. V. 39. Art. ID 213. doi: 10.1007/s11274-023-03660
  67. Shyam P.P., Rajkumar P., Ramya V. et al. Exopolysaccharide production by optimized medium using novel marine Enterobacter cloacae MBB8 isolate and its antioxidant potential // Carbohydr. Polym. Technol. Appl. 2021. V. 2. № 25. Art. ID 100070. doi: 10.1016/jcarpta.2021.100070
  68. Spano A., Arena A. Bacterial exopolysaccharide of shallow marine vent origin as agent in counteracting immune disorders induced by herpes virus // J. Immunoassay Immunochem. 2016. V. 37. № 3. Р. 251–260. doi: 10.1080/15321819.2015.1126602
  69. Van Erp E.A., van Kampen M.R., van Kasteren P.B., de Wit J. Viral infection of human natural killer cells // Viruses. 2019. V. 11. № 3. Art. ID 243. doi: 10.3390/v11030243
  70. Vavilin V.A., Shchelkanov M.Yu., Lokshina L.Y. et al. A comparative analysis of a balance between the rates of polymer hydrolysis and acetoclastic methanogenesis during anaerobic digestion of solid waste // Water Sci. Technol. 2002. V. 45. № 10. P. 249–254. doi: 10.2166/wst.2002.0345
  71. Wang W., Wang Sh.-X., Guan H.-S. The antiviral activities and mechanisms of marine polysaccharides: an overview // Mar. Drugs. 2012. V. 10. № 12. Р. 2795–2816. doi: 10.3390/md10122795
  72. Zhu D., Adebisi W.A., Ahmad F. et al. Recent development of extremophilic bacteria and their application in biorefinery // Front Bioeng. Biotechnol. 2020. V. 8. Art. ID 483. doi: 10.3389/fbioe.2020.00483

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Российская академия наук, 2024

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».