Hypercoordinated germanium complexes with ligands containing hydroxyalkyl groups

Мұқаба

Дәйексөз келтіру

Толық мәтін

Аннотация

Among germatranes, 1-germatranol hydrate is the most well-studied compound with a diverse spectrum of biological activity. Its synthesis is based on a one-stage reaction of tris(2-hydroxyethyl)amine with germanium dioxide in an aqueous medium without the use of organic solvents. In this work, taking into account this approach, new potentially biologically active compounds of germanium with hydroxyalkylamines, sulfo- and amino acids containing hydroxyalkyl groups were synthesized, which we considered as new analogues of biologically active 1-germatranol hydrate. Their formation is confirmed by the results of elemental analysis, IR and NMR spectroscopy. In silico ADME and Pass analysis were used to assess the potential bioavailability and pharmacological activity profile of new compounds. The results of an in vitro study of the antiviral activity (influenza A/Aichi/2/68 (H3N2) virus) of synthesized compounds are presented.

Толық мәтін

Введение

Германий является биологически активным микроэлементом и содержится практически во всех органах и тканях организма человека. Сверхмалые дозы германия жизненно важны для иммунной системы [1]. За последние десятилетия синтезировано огромное количество органических производных германия, в том числе соединений, обладающих широким спектром биологической активности [2–11]. В их ряду наибольшую известность получил бис-2-карбоксиэтил сесквиоксид германия (Ge-132), с которого началось активное изучение биологической активности органических соединений германия и их применение в комплексной терапии рака [11–14].

Соединения германия с гидроксиалкиламинами, содержащими трансаннулярную донорно-акцепторную связь N → Ge, широко известны как герматраны [2]. 1-Герматранол гидрат [OHGe(OCH2CH2)3N] · H2O является наиболее изученным представителем герматранов. Его синтез основан на простом взаимодействии диоксида германия с триэтаноламином в воде [15]. Многолетние исследования показали, что 1-герматранол гидрат стимулирует иммунную систему, может применяться для профилактики пародонтита, гингивита и кариеса, оказывает актопротекторное и антиоксидантное действие, активирует триптофанил-тРНК-синтетазу, интенсифицирует рост растений [16–20].

Цель настоящей работы заключалась в получении новых биологически активных аналогов герматранов с гидроксиалкиламинами, сульфо- и аминокислотами, содержащими гидроксиалкильные группы. Для синтеза новых соединений были выбраны следующие прекурсоры: трис(гидроксиметил)аминометан (TRIS), бис(2-гидроксиэтил)амино-трис(гидроксиметил)метан (BIS-TRIS), N-бензилэтаноламин (BEA), N-(2-гидроксиэтил)этилендиамин (HEED), N,N,N′N′-тетракис(2-гидроксиэтил)этилендиамин (THEED), N,N,N′,N′-тетракис(2-гидроксипропил)этилендиамин (THPED), бис(2-гидроксиэтил)глицин (BICINE), N-(трис(гидроксиметил)метил)глицин (TRICINE), N,N-бис(2-гидроксиэтил)-2-аминоэтансульфоновая кислота (BES).

Гидроксиалкиламины широко востребованы в синтезе биологически активных соединений [21], металлорганических каркасных структур [22–26], наноразмерных частиц металлов [27–30], в составе защитных композиционных материалов [31–33] и др. Выбор данных соединений обусловлен тем, что большинство из них относятся к малотоксичным буферам Гуда, широко используемым в биохимии и молекулярной биологии [34–36]. Их соли с протонными кислотами относятся к востребованному в научных и технических областях классу протонных ионных жидкостей. В частности, соли TRIS, BIS-TRIS, BEA и THEED с карбоновыми кислотами являются эффективными буферными агентами в реакциях 68Ga-радиомечения биомолекул, используемых в синтезе радиофармпрепаратов [37–40].

Ранее нами было установлено, что взаимодействие оксида германия с THEED приводит к образованию шестикоординированного комплекса [OHGe(OC2H4)2NC2H4N(C2H4O)(C2H4OH)] · 3H2O [41]. В настоящей работе впервые представлены результаты in vitro исследования противовирусной активности 1-герматранол гидрата (1) и его новых структурных аналогов с гидроксиалкиламинами, сульфо- и аминокислотами 210 (рис. 1) в отношении штамма вируса гриппа А/Aichi/2/68 (H3N2).

 

Рис. 1. Строение соединений 1–10.

 

Экспериментальная часть

Синтез соединений 1–10. 1-Герматранол гидрат (1) был синтезирован по известной методике [15, 42] взаимодействием эквимолярных количеств ТЕА с GeO2 в водном растворе. Продукт выделен в виде бесцветных кристаллов с выходом 95%.

Соединение 2 получено аналогично соединению 1 с использованием 1.07 г (8.9 ммоль) TRIS и 0.93 г (8.9 ммоль) GeO2. Продукт был выделен в виде порошка белого цвета с выходом 80% (1.98 г). Результаты элементного анализа представлены ниже.

 

 

С

Н

N

Найдено, %:

18.05;

6.39;

4.88.

Для C4H17GeNO8 рассчитано, ٪:

17.17;

6.12;

5.01.

 

ИК-спектр1, см–1: 3231 (уш, оч. с), 2937 (с), 2865 (с), 2391 (сл), 2352 (сл), 2301 (сл), 2107 (сл), 1628 (с), 1592 (с), 1525 (сл), 1489 (ср), 1458 (с), 1386 (с), 1347 (сл), 1295 (сл), 1252 (ср), 1196 (сл), 1066 (оч. с.), 1020 (с), 976 (сл), 896 (сл), 860 (сл), 778 (уш, с), 675 (сл), 589 (ср), 492 (ср), 450 (ср), 425 (сл).

Спектр ЯМР 1H (D2O, ä, м.д., J, Гц): 1.12 т (2H, 2JH–H = 7.1, –CH2O), 3.58 м (4H, –OCH2). Спектр ЯМР 13С (D2O, ä, м.д.): 16.80 (–CH2), 58.33 (–CNH2), 61.64 (–OCH2).

Соединение 3 получали аналогично соединению 1, используя 1.41 г (6.7 ммоль) BIS-TRIS и 0.71 г (6.7 ммоль) GeO2. Продукт был выделен в виде порошка белого цвета с выходом 78% (1.76 г). Результаты элементного анализа представлены ниже.

 

 

С

Н

N

Найдено, %:

30.03;

6.76;

4.05.

Для C8H21GeNO8 рассчитано, ٪:

28.95;

6.38;

4.22.

 

ИК-спектр, см–1: 3375 (уш, оч. с), 3275 (уш, оч. с), 2991 (сл), 2973 (сл), 2947 (ср), 2885 (с), 2862 (с), 2708 (сл), 1633 (сл), 1486 (с), 1442 (с), 1384 (ср), 1358 (ср), 1306 (ср), 1262 (ср), 1226 (ср), 1196 (сл), 1167 (ср), 1144 (сл), 1079 (оч. с), 1040 (оч. с), 1022 (оч. с), 976 (с), 938 (ср), 927 (ср), 896 (с), 835 (ср), 745 (ср), 721 (сл), 685 (ср), 639 (оч. с), 618 (с), 589 (ср), 474 (сл), 449 (сл) 433 (ср), 417 (сл).

Спектр ЯМР 1H (D2O, ä, м.д., J, Гц): 2.90 д (2H, 2JH–H = 6.5, –CH2O), 3.43 д (2H, 2JH–H = 5.8, –CH2O), 3.73 м (10H, OCH2, NCH2). Спектр ЯМР 13С (D2O, ä, м.д.): 48.28 (–CH2O), 57.89 (–NCH2), 58.96 (–OCH2), 66.25 (–CN).

Соединение 4 получали аналогично соединению 1, используя 0.110 г (0.73 ммоль) BEA и 0.076 г (0.73 ммоль) GeO2. Продукт был выделен в виде порошка белого цвета с выходом 76% (0.19 г). Ниже даны результаты элементного анализа.

 

 

С

Н

N

Найдено, %:

31.58;

6.91;

4.28.

Для C9H23GeNO8 рассчитано, ٪:

31.25;

6.70;

4.05.

 

ИК-спектр, см–1: 3372 (уш, с), 3282 (уш, с), 3061 (с), 3027 (с), 2932 (с), 2844 (с), 2661 (ср), 1605 (с), 1497 (ср), 1453 (оч. с), 1412 (сл), 1361 (ср), 1260 (сл), 1211 (ср), 1156 (сл), 1074 (оч. с), 1025 (сл), 1002 (сл), 896 (с), 860 (с), 780 (оч. с), 747 (оч. с), 696 (оч. с), 595 (ср), 482 (оч. с), 443 (оч. c), 412 (ср).

1H ЯМР-спектр (D2O, ä, м.д., J, Гц): 2.92 т (2H, –NCH2), 3.68 т (2H, –OCH2), 3.99 с (2H, –CH2), 7.35 м (5H, –C6H5). 13С ЯМР-спектр (D2O, ä, м.д.): 48.63 (–CH2), 51.25 (–NCH2), 57.76 (–OCH2), 128.81–133.47 (–CAr).

Соединение 5 получали аналогично соединению 1, используя 0.100 г (0.96 ммоль) HEED и 0.101 г (0.96 ммоль) GeO2. Продукт был выделен в виде порошка желтого цвета с выходом 84% (0.198 г). Результаты элементного анализа представлены ниже.

 

 

С

Н

N

Найдено, ٪:

20.05;

7.07;

11.62.

Для C4H16GeN2O5 рассчитано, ٪:

19.62;

6.59;

11.44.

 

ИК-спектр, см–1: 3402 (уш, оч. с), 2935 (сл), 2887 (сл), 1629 (ср), 1587 (с), 1474 (с), 1410 (ср), 1324 (с), 1162 (сл.), 1121 (сл), 1060 (с), 928 (сл), 892 (ср), 777 (с), 743 (ср), 594 (сл), 490 (с), 447 (с).

Спектр ЯМР 1H (D2O, ä, м.д., J, Гц): 2.61–3.55 м (6H, CH2O, CH2NH, CH2NH), 3.56–3.88 м (2H, CH2NH2). Спектр ЯМР 13С (D2O, ä, м.д.): 38.23 (–CH2NH2), 46.75 (–CH2NH–), 49.65 (–NHCH2OCH2–), 59.14 (–OCH2).

Соединение 6 получали аналогично соединению 1, используя 0.226 г (0.96 ммоль) THEED и 0.100 г (0.96 ммоль) GeO2. Продукт был выделен в виде бесцветных кристаллов с выходом 94% (0.340 г). Ниже приведены результаты элементного анализа.

 

 

С

Н

N

Найдено, %:

31.52;

7.73;

7.29.

Для C10H28GeN2O8 рассчитано, ٪:

31.86;

7.49;

7.43.

 

ИК-спектр, см–1: 3370 (уш, оч. с), 2950 (ср), 2863 (с), 2727 (сл), 2699 (сл), 2580 (сл), 2227 (ср), 1675 (с), 1629 (сл), 1598 (сл), 1467 (с), 1437 (с), 1374 (ср), 1307 (с), 1272 (ср), 1245 (ср), 1164 (сл), 1103 (оч. с), 1062 (оч. с), 1042 (с), 1008 (с), 941 (ср), 927 (с), 897 (ср), 874 (ср), 813 (ср), 747 (ср), 706 (сл), 634 (оч. с), 599 (с), 562 (с), 546 (ср), 519 (с), 437 (ср), 422 (ср).

Спектр ЯМР 1H (D2O, ä, м.д., J, Гц): 2.73–3.45 м (12H, NCH2), 3.59–4.10 м (8H, CH2O). Спектр ЯМР 13С (D2O, ä, м.д.): 52.07, 53.90, 54.76 (–OCH2), 55.23, 56.85, 56.98 (NCH2), 57.34 (–H2CCH2–), 58.31 (–NCH2–), 58.58 (–NCH2–), 60.63 (–CH2OH).

Соединение 7 получали аналогично соединению 1, используя 0.100 г (0.34 ммоль) THPED и 0.036 г (0.34 ммоль) GeO2. Продукт был выделен в виде порошка белого цвета с выходом 93% (0.138 г). Данные элементного анализа представлены ниже.

 

 

С

Н

N

Найдено, %:

39.12;

8.55;

6.75.

Для C14H36GeN2O8 рассчитано, ٪:

38.83;

8.38;

6.47.

 

ИК-спектр, см–1: 3402 (уш, оч. с), 2967 (оч. с), 2924 (с), 2868 (с), 2628 (ср), 1660 (ср), 1463 (с), 1374 (с), 1340 (ср), 1288 (сл), 1148 (оч. с), 1105 (ср), 1056 (оч. с), 983 (с), 938 (с), 861 (с), 641 (оч. с), 583 (сл), 557 (сл), 519 (сл), 474 (сл).

Спектр ЯМР 1H (D2O, ä, м.д., J, Гц): 0.90–1.36 м (12H, CH3), 2.36–3.49 м (12H, NCH2), 3.59–4.44 м (4H, CH). Спектр ЯМР 13С (D2O, ä, м.д.): 20.40, 20.58, 21.49, 22.04 (–CH3), 50.67, 53.04, 54.74 (–OCH2), 60.19, 60.89 (–NCH2), 62.78 (–H2CCH2–), 63.08 (–NCH2–), 64.00, 64.49, 65.02 (–NCH2–), 67.09 (–CH2OH).

Соединение 8 получали аналогично соединению 1, используя 0.120 г (0.74 ммоль) BICINE и 0.077 г (0.74 ммоль) GeO2. Продукт был выделен в виде порошка светло-розового цвета с выходом 91% (0.20 г). Ниже показаны результаты элементного анализа.

 

 

С

Н

N

Найдено, %:

24.17;

6.02;

4.85.

Для C6H17GeNO8 рассчитано, ٪:

23.72;

5.64;

4.61.

 

ИК-спектр, см–1: 3424 (уш, оч. с), 3264 (уш, с), 3112 (ср), 2942 (ср), 2888 (ср), 1731 (оч. с), 1636 (оч. с), 1458 (ср), 1393 (ср), 1344 (с), 1268 (оч. с), 1164 (сл), 1087 (оч. с), 1056 (оч. с), 1015 (ср), 982 (сл), 925 (с), 899 (ср), 855 (оч. с), 752 (ср), 698 (сл), 659 (оч. с), 629 (оч. с), 585 (сл), 557 (сл), 499 (ср), 430 (сл).

Спектр ЯМР 1H (D2O, ä, м.д., J, Гц): 3.36 т (4H, –NCH2), 3.79 с (2H, –CH2), 3.83 т (4H, –OCH2). Спектр ЯМР 13С (D2O, ä, м.д.): 55.18 (–NCH2), 56.16 (–OCH2), 56.32 (–CH2), 170.26 (–C=O).

Соединение 9 получали аналогично соединению 1, используя 0.130 г (0.73 ммоль) TRICINE и 0.076 г (0.73 ммоль) GeO2. Продукт был выделен в виде порошка светло-розового цвета с выходом 77% (0.17 г). Результаты элементного анализа представлены ниже.

 

 

С

Н

N

Найдено, %:

24.36;

5.61;

4.83.

Для C6H15GeNO8 рассчитано, ٪:

23.88;

5.01;

4.64.

 

ИК-спектр, см–1: 3411 (уш, оч. с), 2960 (ср), 2877 (ср), 2440 (сл), 1644 (оч. с), 1391 (с), 1347 (с), 1244 (сл), 1144 (сл), 1056 (оч. с.), 927 (ср), 845 (с), 745 (ср), 688 (сл), 644 (сл), 600 (с), 541 (ср), 492 (сл), 420 (сл).

Спектр ЯМР 1H (D2O, ä, м.д., J, Гц): 3.61 c (2H, –NCH2), 3.68 c (6H, OCH2).13С ЯМР-спектр (D2O, ä, м.д.): 58.26 (–NCH2), 65.32 (–OCH2), 171.26 (–C=O).

Соединение 10 получали аналогично соединению 1, используя 0.100 г (0.47 ммоль) BES и 0.049 г (0.47 ммоль) GeO2. Продукт был выделен в виде порошка белого цвета с выходом 93% (0.14 г). Ниже приведены результаты элементного анализа.

 

 

С

Н

N

Найдено, %:

23.10;

5.12;

4.78.

Для C6H15GeNO7S рассчитано, ٪:

22.67;

4.76;

4.41.

 

ИК-спектр, см–1: 3401 (уш, оч. с), 3048 (с), 3012 (сл), 2975 (ср), 2922 (ср), 2854 (ср), 2654 (сл), 1630 (сл), 1471 (с), 1437 (ср), 1417 (ср), 1388 (ср), 1332 (ср), 1298 (сл), 1244 (с), 1223 (с), 1205 (оч. с), 1159 (оч. с), 1090 (с), 1059 (с), 1033 (оч. с), 1012 (ср), 961 (ср), 889 (с), 866 (оч. с), 765 (ср), 737 (с), 647 (ср), 589 (с), 533 (с), 517 (с), 494 (ср), 415 (сл).

Спектр ЯМР 1H (D2O, ä, м.д., J, Гц): 3.32 т (2H, CH2), 3.41 т (4H, NCH2), 3.67 т (2H, CH2S), 3.89 т (4H, OCH2). 13С ЯМР-спектр (D2O, ä, м.д.): 44.51 (–CH2), 49.97 (–CH2S), 55.06 (–NCH2), 55.41 (–OCH2).

Материалы и методы. Реагенты для синтеза соединений 110 были приобретены у следующих компаний: Sigma-Aldrich (BIS-TRIS, BEA, HEED, THPED, BES, BICINE, TRICINE и BIS-TRIS), ThermoScientific (THEED) и АО “Вектон” (GeO2, TEA и TRIS). Реагенты имели аналитическую чистоту и использовались без дополнительной очистки.

Элементный анализ на азот, углерод и водород выполняли на элементном анализаторе EuroEA3028-HT (EuroVector, Италия) методом сжигания образца в токе кислорода. Процентное содержание воды в образцах измеряли на кулонометрическом титраторе Фишера ПЭ-9210 (ячейка с диафрагмой) производства “Экросхим” (Россия). ИК-спектры регистрировали в таблетках KBr на ИК-Фурье-спектрометре ФСМ 2201 (Инфраспек, РФ) в спектральной области 4000–500 см–1. Спектры 1H, 13C ЯМР снимали в растворах D2O на спектрометре BrukerAvance III (400.13 (1Н), 100.613 MГц (13С)). Химические сдвиги были измерены относительно остаточных сигналов воды (4.79 м.д. для 1Н) [43].

Кривые термогравиметрического анализа (ТГ) и дифференциальной сканирующей калориметрии (ДСК) были получены на установке синхронного термоанализатора Netzsch 449 С (Германия) в интервале температур 40–950 °С со скоростью нагрева 10 град/мин в динамической атмосфере воздуха (поток воздуха 50 мл/мин).

Эксперимент in vitro. Для определения вирусной нагрузки использовали клеточную культуру почки спаниеля MDCK (Madin-Darby canine kidney) как наиболее чувствительную и пермиссивную в отношении различных вирусов гриппа человека. Клеточная линия MDCK London Line (пассаж 8/8) получена из Influenza Reagent Resource (CDC&P, Atlanta, Georgia, США, кат. № FR-58). После получения проведен один пассаж клеточной культуры с целью ее восстановления и создания коллекционного банка, проведен также второй пассаж культуры для создания рабочего банка. Клетки были разморожены из криопробирки и использованы на пассажном уровне 3.

На 100 мл среды DМЕМ (питательная среда DМЕМ с глутамином, Биолот, СПб, РФ) вносили 1 мл раствора антибиотиков (ципрофлоксацин производства “Синтез”, Курган) и 0.1 мл раствора TPCK-трипсина (конечная концентрация в среде 4 мкг/мл).

Вирус гриппа А/Aichi/2/68 (H3N2) получен из рабочей коллекции лаборатории химиотерапии вирусных инфекций ФГБУ “НИИ гриппа” Минздрава России, накоплен в куриных эмбрионах.

Вирус гриппа после адаптации был размножен в аллантоисной полости 10-дневных развивающихся куриных эмбрионов, после чего жидкость была собрана, осветлена при помощи центрифугирования и расфасована по аликвотам объемом 1 мл. Все аликвоты сделаны из единого стока аллантоисной жидкости и одномоментно заморожены при -80°С.

Статистический анализ проводили с использованием программного пакета GraphPadPrism и Microsoft Office Excel. Для анализа противовирусной активности соединений применяли метод нелинейной регрессии и определяли, насколько выбранные концентрации тестируемого препарата снижали титр вируса в клетках. На основании этих данных рассчитывали эффективную концентрацию препарата, которая снижает титр вируса на 50% (EC50).

Для характеристики перспективности соединений использовали показатель ХТИ (химиотерапевтический индекс), который определяется как отношение ЦТД50 (доза в лунке, при которой погибает 50% клеток) к EC50. Дополнительным критерием противовирусной активности является снижение титра вируса в наименьшей нетоксичной концентрации препарата на 2lgТИД50 (50% тканевых инфекционных доз) и более.

Дизайн эксперимента по определению цитотоксичности соединений 1–10. Соединения взвешивали в количестве 2 мг и растворяли в 100 мкл ДМСО. Далее полученный раствор доводили средой до концентрации 1000 мкг/мл и готовили из него серию двукратных разведений.

Односуточную культуру клеток MDCK, выращенную в 96-луночных планшетах (концентрация клеток 6 · 105/лунку планшета), проверяли визуально на инвертированном микроскопе на целостность монослоя. В работу отбирали планшеты, где сомкнутость клеток составляла ≥95%. Планшеты двукратно промывали теплой средой ДМЕМ, не содержащей сыворотки, после чего на клетки монослоя в планшете вносили разведения препаратов соответствующей концентрации объемом 100 мкл в каждую лунку. Процедуру выполняли 2 раза для каждой тестируемой концентрации. Планшеты инкубировали в течение 3 сут при температуре 37°С в присутствии 5% СО2.

Жизнеспособность клеток оценивали при помощи микротетразолиевого теста (МТТ), который основан на восстановлении МТТ (желтый водорастворимый тетразолиевый краситель) под действием дегидрогеназ живых клеток с образованием голубых кристаллов формазана, количество которого измеряется спектрофотометрически. Раствор МТТ готовили в физиологическом растворе в концентрации 0.5 мг/мл. Перед внесением раствора МТТ клетки промывали 0.1 мл физиологического раствора. Далее вносили 0.1 мл раствора МТТ в каждую лунку. После 1.5 ч контакта МТТ при 37°С и концентрации СО2 5% с клетками лунки промывали и заливали 0.1 мл 96%-ного этилового спирта, после чего измеряли оптическую плотность в лунках на планшетном ридере при длине волны 535 нм.

На основании полученных данных рассчитывали ЦТД50, т. е. дозу препарата в лунке, при которой погибает 50% клеток.

Дизайн эксперимента по оценке противовирусной активности соединений 1–10 in vitro на культуре клеток. Готовили серию трехкратных разведений соединений 110 на поддерживающей среде и наносили на культуру клеток в объеме 100 мкл, после чего инкубировали в течение 1 ч в темноте в СО2-инкубаторе при 37°С и 5% СО2, затем добавляли серию 10-кратных разведений вируса и инкубировали в течение 3 сут в СО2-инкубаторе при 37°С и 5% СО2. После инкубации культуральную среду отбирали и определяли в ней количество вируса с помощью реакции гемагглютинации, для этого культуральную среду переносили в соответствующие лунки иммунологических планшетов с U-образным дном и добавляли равный объем 1%-ной суспензии куриных эритроцитов в физиологическом растворе. По истечении 40 мин визуально оценивали наличие или отсутствие гемагглютинации в лунках. Титр вируса рассчитывали по методу Рида и Менча и выражали в 50%-ных тканевых инфекционных дозах (ТИД50) на 100 мкл объема [44]. Противовирусную активность оценивали по снижению титра вируса в опыте, по сравнению с контролем.

In silico ADME- и PASS-анализ. Веб-программу SwissADME, предоставленную Швейцарским институтом биоинформатики (Лозанна, Швейцария) [45], использовали для прогнозирования физико-химических и фармакокинетических свойств соединений.

Профили фармакологической активности были предсказаны с использованием программного обеспечения PASS [46, 47]. PASS — это веб-программа, используемая для прогнозирования спектра биологической активности на основе структурной формулы вещества.

Результаты и обсуждение

В результате одностадийной реакции GeO2 с гидроксиалкиламинами, сульфо- и аминокислотами было синтезировано девять новых аналогов (210) 1-герматранол гидрата (1), строение которых представлено на рис. 1. Элементный анализ и анализ содержания H2O по К. Фишеру свидетельствует о том, что синтезированные соединения выделены в виде кристаллогидратов, как и соединение 1. ИК-спектры соединений 210 были исследованы в интервале длин волн 4000–500 см–1. Уширенные и интенсивные полосы в области 3500–3200 см–1 соответствуют валентным колебаниям í(OH)-групп, связанных с атомом германия, OH-групп гидроксиалкиламинов (некоординированных) и молекул воды. В этой области также проявляются валентные колебания N–H-связей, которые содержат соединения 2, 4 и 5. Группа полос в интервале 3000–2700 см–1 соответствует валентным колебаниям связей C–H. В случае соединения 4 валентные колебания CAr–H ароматического кольца проявляются в более высокочастотной области 3100–3000 см–1. Полосы в области 1675–1590 см–1, присутствующие во всех ИК-спектрах, относятся к деформационным колебаниям ä(OH)-групп. В случае соединений 2, 4 и 5 в этой области также проявляются полосы, связанные с деформационными колебаниями ä(NH2)- и ä(NH)-групп. В случае соединений 8 и 9 валентные колебания í(COO)-групп проявляются в виде очень интенсивных полос в области 1730–1630 см–1. Валентные колебания í(S = O) соединения 10 фиксируются в виде группы полос высокой интенсивности в интервалах 1210–1160 и 890–860 см–1. В целом, полосы в ИК-спектрах соединений 210 хорошо согласуются со спектральными данными герматранов [48–50]. Во всех исследуемых ИК-спектрах наблюдаются полосы в области 1525–1200 см–1, связанные с колебаниями групп ä(C–H), ñ(C–H) и ù(C–H). Интенсивные полосы в области 1100–1000 см–1 относятся к валентным колебаниям связей O–C, N–C и С–С. Валентные колебания связей Ge–O присутствуют в спектральных диапазонах 700–630 см–1 as) и 595–520 см–1 s) в виде полос сильной и средней интенсивности.

Как известно из работы [2], в спектре ЯМР 1H сигналы герматранового остова N(CH2CH2O)3GeX проявляются в виде двух уширенных триплетов. Так, в 1Н ЯМР-спектре 1-герматранол гидрата наблюдаются два триплета при 3.0 и 3.8 м. д. При переходе к соединениям 210 вид спектров существенно изменяется из-за наличия дополнительных гидроксиалкильных или функциональных (CO2, SO3) групп. Так, в спектре соединения 4 появляются дополнительные сигналы при 4.0 и 7.3 м. д., соответствующие группе CH2C6H5. В случае соединений 2, 3, 57 сигналы герматранового остова проявляются в виде сложных мультиплетов. В спектрах соединений 8 и 10 фрагмент N(CH2CH2O)2Ge также проявляется в виде двух триплетов, но с дополнительными сигналами в виде синглета от CH2CO2-группы (соединение 8) и двух триплетов фрагмента NCH2CH2SO3 (соединение 10). В случае соединения 9 наблюдаются два уширенных синглета при 3.6 м.д. (CH2CO2) и 3.7 м. д. (CCH2O). Если сравнить 1H ЯМР-спектры соединений 110 со спектрами исходных гидроксиалкиламинов, то можно отметить небольшой слабопольный сдвиг сигналов протонов и повышение их мультиплетности, обусловленное дополнительным спин-спиновым взаимодействием 1H–73Ge.

Термическое поведение новых соединений было исследовано в интервале температур 40–950°С в атмосфере воздуха. Из литературы известно [15, 42], что 1-герматранол гидрат имеет температуру плавления в области 156–159°С, а его термическая деструкция наступает в интервале 240–265°С [51]. Действительно, на ДСК-кривой соединения 1 наблюдается уширенный эндотермический эффект в области температур 160–200°С с максимумом при 179°С, вероятно, связанный с процессом плавления. Однако на кривой ТГ образец начинает терять массу уже после 85 °С, и в интервале температур 85–219°С потеря массы составляет 12.1%. В этой области температур на ДСК-кривой также наблюдается эндотермический эффект при 128°С. Вероятно, данная стадия термической деструкции связана с потерей как физически связанной, так и кристаллизационной H2O. Основная стадия деструкции соединения 1, связанная с разрушением герматранового остова, наступает после 250°С и сопровождается потерей 35% массы в интервале температур 250–454°С. Термическое поведение соединений 57 было исследовано нами ранее [41]. Для них также наблюдалась небольшая потеря массы (~ 5–10%) до 100°С, связанная с удалением адсорбционной H2O. Схожий характер термической деструкции наблюдался и для соединений 24, 810 (табл. 1). Первая стадия потери массы, которая начинается до 100°С, соответствует удалению воды. Далее в интервале температур 170–300°С наступает основная стадия термической деструкции, которая сопровождается уширенным экзотермическим эффектом с максимумом в области 312–385°С, связанным с горением органических фрагментов. На последней стадии термической деструкции после 780°С на ДСК-кривых присутствует заметный экзотермический эффект в области 844–873°С, связанный с догоранием органического остатка. Конечным продуктом деструкции после нагревания образцов до 950°С является порошок белого цвета, соответствующий оксиду герма- ния(IV).

 

Таблица 1. Данные термического анализа образцов 2–4, 8–10

Соединение

Интервал температур, °С (потеря массы, ٪)

Экзо-(↓) и эндотермические (↑) эффекты*, °С

2

68–243 (–12.1)

243–414 (–31.8)

414–810 (–37.0)

810–885 (–16.3)

357 ↓ уш; 866 ↓ оч. с

3

100–298 (–10.8)

298–541 (–42.0)

541–786 (–18.1)

786–915 (–11.0)

385 ↓ уш; 610 ↓ уш, 845–872 ↓уш

4

76–568 (–56.7),

568–940 (–14.8)

312 ↓ уш, 873 ↓ ср

8

90–178 (–10.0)

178–802 (–52.6)

802–882 (–13.3)

106 ↑ сл, 320 ↓ уш, 862 ↓ с

9

80–218 (–13.5)

218–793 (–51.0)

793–871 (–19.5)

321 ↓ уш, 855 ↓ с

10

72–174 (–2.4)

174–422 (–46.1)

422–614 (–24.5)

614–875 (–12.5)

146 ↑ ср, 321 ↓ ср, 507 ↓ уш, 844 ↓ с

* Уш – уширенный; оч. с – очень сильный; с – сильный; ср – средний; сл – слабый.

 

С использованием ADME-анализа in silico были исследованы физико-химические и фармакокинетические свойства соединений 110 (без учета молекул H2O, табл. 2 и 3). Как видно из табл. 2, все исследуемые соединения полностью соответствуют критериям “правила пяти” Липинского: молекулярная масса <500 а.е.м., число донорных и акцепторных водородных связей не более 5 и 10 соответственно, коэффициент распределения октанол–вода (lgP ) < 5. Топологическая полярная площадь поверхности синтезированных соединений ниже 140 Å2 и варьируется в интервале 51–108 Å2, в зависимости от состава. Как правило, молекулы с полярной площадью поверхности >140 Å2 плохо проникают через клеточные мембраны [52]. Однако ни одно из рассмотренных соединений не способно преодолеть гематоэнцефалический барьер. Благодаря содержанию полярных групп соединения 110 классифицированы как хорошо растворимые в воде, что подтверждают экспериментальные данные. Предсказано, что соединения 1, 2, 4, 5, 7, 8 и 10 будут обладать высокой абсорбцией в желудочно-кишечном тракте. В то же время все соединения показали низкие значения коэффициента кожной проницаемости (lgKp) в диапазоне от -9.66 до -8.18, что указывает на низкую вероятность проникновения вещества через эпидермис. Показатель биодоступности для всех соединений, как и для большинства соединений, соответствующих правилу Липинского, составил 0.55, т. е. >50% введенного препарата попадет в системный кровоток. Индекс синтетической доступности для большинства соединений оказался <6, что согласуется с простым подходом к их получению.

 

Таблица 2. ADME физико-химические свойства безводных соединений 1–10 (M — молекулярная масса; lgP – коэффициент распределения октанол—вода; TPSA — топологическая полярная площадь поверхности; HBA — число акцепторных водородных связей; HBD — число донорных водородных связей; RB – количество вращающихся связей; Vio — количество исключений правила Липинского)

Соединение

М, г/моль

lgP

TPSA, Å2

HBA

HBD

RB

Правило Липинского (Vio)

1

235.81

–1.07

51.16

5

1

0

Да (0)

2

225.7

–2.23

105.17

6

4

1

Да (0)

3

295.86

–1.99

91.62

7

3

2

Да (0)

4

273.6

0.53

81.95

5

4

6

Да (0)

5

226.8

–2.27

107.97

6

5

6

Да (0)

6

322.93

–1.64

74.63

7

2

2

Да (0)

7

379.04

–0.69

74.63

7

2

2

Да (0)

8

249.80

–1.25

68.23

6

1

0

Да (0)

9

265.79

–1.91

97.25

7

3

1

Да (0)

10

299.88

–1.33

93.68

7

1

0

Да (0)

 

Таблица 3. ADME фармакокинетические свойства безводных соединений 1–10 (lgS – растворимость в воде; lgKp – проникновение через кожу; GIA – всасывание через желудочно-кишечный тракт; BBB – проникновение через гематоэнцефалический барьер; BAS – показатель биодоступности; SA – синтетическая доступность)

Соединение

lgS (ESOL)

lgKp

GIA

BBB

BAS

SA

1

–0.86

–8.24

Высокая

Нет

0.55

4.73

2

0.58

–9.66

Высокая

Нет

0.55

3.71

3

–0.16

–9.66

Низкая

Нет

0.55

5.20

4

–1.25

–8.18

Высокая

Нет

0.55

2.15

5

0.8

–9.62

Высокая

Нет

0.55

2.97

6

–0.86

–9.23

Низкая

Нет

0.55

5.51

7

–2.30

–8.34

Высокая

Нет

0.55

6.21

8

–0.99

–8.27

Высокая

Нет

0.55

4.69

9

–0.22

–9.27

Низкая

Нет

0.55

4.92

10

–0.99

–8.93

Высокая

Нет

0.55

5.56

 

PASS-анализ был использован для оценки спектра фармакологической активности соединений 110. Как и ожидалось, для 1-герматранола гидрата предсказан широкий спектр биологической активности (с вероятностью >0.7): лечение аутоиммунных заболеваний, функциональных заболеваний органов пищеварения, тревожно-фобических расстройств, обезболивающее действие, противовирусная активность (гепатит В). Экспериментальные данные подтверждают, что 1-герматранол гидрат является перспективным в качестве лекарственного средства, обладающего адаптогенной и иммуномодулирующей активностью [16]. Анализ соединений 210 показал, что большинство из них будут эффективны в лечении аутоиммунных заболеваний и тревожно-фобических расстройств и с вероятностью >0.7 будут обладать антигипоксической активностью. Для соединений 4 и 5 предсказана противовирусная активность (гепатит В), как и для соединения 1.

На следующем этапе был проведен in vitro первичный скрининг (табл. 4) противовирусной активности соединений 1–10 в отношении вируса гриппа А/Aichi/2/68 (H3N2). Данный штамм широко используется при оценке защитной эффективности лекарственных средств и иммунобиологических препаратов [53, 54].

 

Таблица 4. Противовирусная активность соединений 1–10 в отношении вируса гриппа А/Aichi/2/68 (H3N2) in vitro

Соединение

ЦТД50, мкг/мл

EC50, мкг/мл

ХТИ

Снижение титра вируса в максимальной дозе,

lg ТИД50

1

597.1

>500

1.19

0

2

867.9

132

6.58

1

3

371.5

354

1.05

0

4

547.3

87.6

6.25

1

5

579.7

523

1.11

0.5

6

571.6

>500

1.14

0

7

556.2

265

2.10

0.5

8

566.6

>500

1.13

0

9

551.9

124

4.45

0.5

10

531.8

>500

1.06

0

 

Как следует из полученных данных, большинство исследуемых соединений, включая 1-герматранол гидрат, проявляют слабую противовирусную активность. В частности, значения ХТИ для соединений 1, 3, 58 и 10 варьируются в диапазоне 1.05–2.10. Следует отметить, что если препарат имеет ХТИ < 1, то это практически неактивное вещество в отношении вируса. Однако в ряду синтезированных комплексов противовирусная активность соединений 2, 4 и 9 оказалась существенно выше (табл. 4). Следует также отметить, что соединения 2 и 9 являются производными трис(гидроксиметил)аминометана, координационные и органические соединения которого обладают широким спектром биологической активности [55–58]. При этом ХТИ соединений 2 и 4 оказался наиболее близким к пороговому значению 8, соответствующему высокой противовирусной активности.

Заключение

Таким образом, синтезирована серия координационных соединений германия с гидроксиалкиламинами, амино- и сульфокислотами, содержащими гидроксиалкильные группы. Соединения выделены в виде кристаллогидратов, они содержат донорно-акцепторную связь N → Ge и атрановый остов, что структурно приближает их к 1-герматранол гидрату и его квазианалогам. In silico анализ показал, что все соединения потенциально являются перорально активными водорастворимыми веществами с широким спектром фармакологической активности. In vitro эксперимент продемонстрировал эффективность двух соединений – гидроксикомплексов германия с TRIS (2) и BEA (4) в отношении вируса гриппа А/Aichi/2/68 (H3N2).

Финансирование

Работа выполнена в рамках государственного задания Института химии силикатов РАН при поддержке Минобрнауки России (тема № 0081-2022-0005).

Конфликт интересов

Авторы заявляют, что у них нет конфликта интересов.

 

1 Характеристики полос в ИК-спектрах: уш – уширенная; оч. с — очень сильная; с – сильная, ср – средняя, сл – слабая.

×

Авторлар туралы

Yu. Kondratenko

I.V. Grebenshchikov Institute of Solid State Chemistry UB RAS

Хат алмасуға жауапты Автор.
Email: kondratencko.iulia@yandex.ru
Ресей, Saint Petersburg

D. Lezov

I.V. Grebenshchikov Institute of Solid State Chemistry UB RAS

Email: kondratencko.iulia@yandex.ru
Ресей, Saint Petersburg

A. Stro

Smorodintsev Scientific Research Institute of Influenza of the Ministry of Health of Russia

Email: kondratencko.iulia@yandex.ru
Ресей, Saint Petersburg, 197376

V. Ugolkov

I.V. Grebenshchikov Institute of Solid State Chemistry UB RAS

Email: kondratencko.iulia@yandex.ru
Ресей, Saint Petersburg

T. Kochina

I.V. Grebenshchikov Institute of Solid State Chemistry UB RAS

Email: kondratencko.iulia@yandex.ru
Ресей, Saint Petersburg

Әдебиет тізімі

  1. Ребров В.Г., Громова О.А. Витамины и микроэлементы. М., 2003. С. 648.
  2. Карлов С.С., Зайцева Г.С. // Химия гетероцикл. соединений. 2001. № 11. С. 1451.
  3. Lukevics E., Ignatovich L. // PATAI’S Chem. Func. Groups / Ed. Rappoport Z. 2009. https://doi.org/10.1002/9780470682531.pat0275
  4. Lukevics E., Ignatovich L., Shul’ga T. et al. // J. Organomet. Chem. 2002. V. 659. P. 165. https://doi.org/10.1016/S0022-328X(02.01723-0
  5. Mertens R.T., Parkin S., Awuah S.G. // Inorg. Chim. Acta. 2020. V. 503. P. 119375. https://doi.org/10.1016/j.ica.2019.119375
  6. Nikolaevskaya E.N., Shangin P.G., Starikova A.A. et al. // Inorg. Chim. Acta. 2019. V. 495. P. 119007. https://doi.org/10.1016/j.ica.2019.119007
  7. Pi J., Zeng J., Luo J.-J. et al. // Bioorg. Med. Chem. Lett. 2013. V. 23. P. 2902. https://doi.org/10.1016/j.bmcl.2013.03.061
  8. Vishtorskaya A.A., Saverina E.A., Pechennikov V.M. et al. // J. Organomet. Chem. 2018. V. 858. P. 8. https://doi.org/10.1016/j.jorganchem.2018.01.004
  9. Nabiyeva T., Roufosse B., Odachowski M. et al. // ACS Omega. 2021. V. 6. P. 19252. https://doi.org/10.1021/acsomega.1c02665
  10. Кадомцева А.В., Мочалов Г.М., Кузина О.В. // Журн. орг. химии. 2021. Т. 57. № 6. С. 788. https://doi.org/10.31857/S0514749221060021
  11. Менчиков Л.Г., Шестов А.А., Попов А.В. // Успехи биолог. химии. 2023. Т. 63. С. 3.
  12. Awais M., Aizaz A., Nazneen A. et al. // Prosthesis. 2022. V. 4. P. 263. https://doi.org/10.3390/prosthesis4020026
  13. Cho J.M., Chae J., Jeong S.R. et al. // PLOS ONE. 2020. V. 15. P. e0240358. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0240358
  14. Менчиков Л.Г., Игнатенко М.А. // Хим.-фарм. журн. 2012. Т. 46. № 11. С. 3.
  15. Воронков М.Г., Овчинникова З.А., Барышок В.П. // Изв. АН СССР. Сер. Химия. 1987. Т. 4. С. 880.
  16. Барышок В.П., Абзаева К.А., Расулов М.М. и др. // Изв. вузов. Прикл. химия и биотехнология. 2018. Т. 8. № 1. С. 153. https://doi.org/10.21285/2227-2925-2018-8-1-153-158
  17. Расулов М.М., Стороженко П.А., Снисаренко Т.А. и др. / Пат. № 2553986 C1. Опубл. 20.06.2015. Бюл. № 17.
  18. Шигарова А.М., Грабельных О.И., Барышок В.П. и др. // Прикл. биохимия и микробиология. 2016. Т. 52. № 4. С. 410.
  19. Рачин А.П., Расулов Р.М., Барышок В.П. и др. / Пат. № 2741229. C. 1. Опубл. 22.01.2021. Бюл. № 3.
  20. Исаев А.Д., Башкирова С.А., Павлов К.В. / Пат. № 2272624 C1. Опубл. 27.03.2006. Бюл. № 9.
  21. Кондратенко Ю. А., Кочина Т. А. // Журн. общей химии. 2021. Т. 91. № 12. С. 1807.
  22. Akhtar M.N., Chen Y.C., Aldamen M.A. // Dalton Trans. 2017. V. 46. P. 116. https://doi.org/10.1039/C6DT03843C
  23. Kondratenko Y.A., Zavyalova D.A., Arsentev M.Y. et al. // Cryst. Growth Des. 2022. V. 22. P. 6886. https://doi.org/10.1021/acs.cgd.2c00331
  24. Завьялова Д.А., Кондратенко Ю.А., Золотарев А.А. и др. // Коорд. химия. 2023. Т. 49. № 8. С. 474.
  25. Karabach Y.Y., Kirillov A.M., Haukka M. et al. // J. Inorg. Biochem. 2008. V. 102. P. 1190. https://doi.org/10.1016/j.jinorgbio.2007.11.007
  26. Qin X., Dong Y., Wang M. et al. // ACS Sens. 2019. V. 4. P. 2351. https://doi.org/10.1021/acssensors.9b00914
  27. Qin X., Gu C., Minghan Wang M. et al. // Anal. Chem. 2018. V. 90. P. 2826. https://doi.org/10.1021/acs.analchem.7b04952
  28. Jia Z., Sun H., Gu Q. // Colloids Surf. A. 2013. V. 419. P. 174. https://doi.org/10.1016/j.colsurfa.2012.12.003
  29. Симоненко Т.Л., Симоненко Н.П., Горобцов Ф.Ю. и др. // Журн. неорган. химии. 2022. Т. 67. № 5. С. 575.
  30. Al-Hadeethi Y., Mkawi E.M., Al-Hartomy O. et al. // Int. J. Energy Res. 2022. V. 46. P. 7239. https://doi.org/10.1002/er.7632
  31. Шилова О.А., Халаман В.В., Комендантов А.Ю. и др. // Физика и химия стекла. 2021. Т. 47. № 2. С. 209.
  32. Кондратенко Ю.А., Голубева Н.К., Кочина Т.А. и др. // Физика и химия стекла. 2023. 2023. Т. 49. № 1. С. 80.
  33. Hang M., Zhou X., Wang J. et al. // Case Stud. Constr. Mater. 2023. V. 18. P. e01907. https://doi.org/10.1016/j.cscm.2023.e01907
  34. Good N.E., Winget G.D., Winter W. et al. // Biochemistry. 1966. V. 5. P. 467. https://doi.org/10.1021/bi00866a011
  35. Pannuru P., Rani A., Venkatesu P., Lee M.-J. et al. // Int. J. Biol. Macromol. 2018. V. 112. P. 720. https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2018.01.203
  36. Taha M., e Silva F.A., Quental M.V. et al. // Green Chem. 2014. V. 16. P. 3149. https://doi.org/10.1039/C4GC00328D
  37. Antuganov D., Nadporojskii M., Sysoev D. et al. // ChemistrySelect. 2020. V. 5. P. 10953. https://doi.org/10.1002/slct.202002891
  38. Kondratenko Y.A., Antuganov D.O., Zolotarev A.A. et al. // ChemistrySelect. 2022. V. 7. P. e202200660. https://doi.org/10.1002/slct.202200660
  39. Kondratenko Y.A., Shilova J.S., Gavrilov V.A. et al. // Pharmaceutics. 2023. V. 15. P. 694. https://doi.org/10.3390/pharmaceutics15020694
  40. Kondratenko Y.A., Makovskaya O.N., Antuganov D.O. et al. // J. Mol. Liq. 2022. V. 363. P. 119891. https://doi.org/10.1016/j.molliq.2022.119891
  41. Kondratenko Y.A., Ignatyev I.S., Lezov D.V. et al. // J. Organomet. Chem. 2022. V. 958. P. 122188. https://doi.org/10.1016/j.jorganchem.2021.122188
  42. Миронов В.Ф., Гар Т.К., Хромова Н.Ю. и др. // Журн. общей химии. 1986. Т. 56. № 3. С. 638.
  43. Gotltieb H.E., Kotlyar V., Nudelman A. // J. Org. Chem. 1997. V. 62. P. 7512. https://doi.org/10.1021/jo971176v
  44. Reed L.J., Muench H. // Am. J. Epidemiol. 1938. V. 27. P. 493.
  45. Daina A., Michielin O., Zoete V. // Sci. Rep. 2017. V. 7. P. 42717. https://doi.org/10.1038/srep42717
  46. Lagunin A., Stepanchikova A., Filimonov D. et al. // Bioinformatics. 2000. V. 16. P. 747. https://doi.org/10.1093/bioinformatics/16.8.747
  47. Поройков В.В., Филимонов Д.А., Глориозова Т.А. и др. // Изв. АН. Сер. Хим. 2019. № 12. С. 2143.
  48. Ignatyev I.S., Sundius T. // Spectrochim. Acta A. 2012. V. 95. P. 37. http://dx.doi.org/10.1016/j.saa.2012.04.037
  49. Игнатьев И.С., Воронков М.Г., Кочина Т.А. и др. // Журн. структур. химии. 2014. Т. 55. № 3. С. 462.
  50. Glowacki B., Lutter M., Hiller W. et al. // Iprg. Chem. 2019. V. 58. P. 4244. https://doi.org/10.1021/acs.iprgchem.8b03312
  51. Барышок В.П., Ле Н.Т.З. // Журн. общей химии. 2021. Т. 91. № 12. С. 1917. https://doi.org/10.31857/S0044460X21120118
  52. Pajouhesh H., Lenz G.R. // Neurotherapeutics. 2005. V. 2. P. 541. https://doi.org/10.1602/neurorx.2.4.541
  53. Bazhan S., Antonets D., Starostina E. et al. // Vaccines. 2020. V. 8. P. 448. https://doi.org/10.3390/vaccines8030448
  54. Wu W., Li R., Li X. et al. // Viruses. 2016. V. 8. P. 6. https://doi.org/10.3390/v8010006
  55. Lee S.M., Sim K.S., Lo K.M. // Inorg. Chim. Acta. 2015. V. 429. P. 195. https://doi.org/10.1016/j.ica.2015.01.017
  56. Varga G., Lajkó N., Ugocsai M. et al. // Eur. J. Pharmacol. 2016. V. 781. P. 181. http://dx.doi.org/10.1016/j.ejphar.2016.04.019
  57. Bhattacharya A., Chattopadhyay B., Chakraborty S. et al. // J. Pharm. Biomed. Anal. 2012. V. 70. P. 280. http://dx.doi.org/10.1016/j.jpba.2012.07.011
  58. Kondratenko Y.A., Nikonorova A.A., Zolotarev A.A. et al. // Inorg. Chim. Acta. 2022. V. 530. P. 120705. https://doi.org/10.1016/j.ica.2021.120705

Қосымша файлдар

Қосымша файлдар
Әрекет
1. JATS XML
2. Fig. 1. Structure of compounds 1–10.

Жүктеу (639KB)

© Russian Academy of Sciences, 2024

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».