MYCOBIOTA OF PEDUNCULATE OAK: RETROSPECTIVE, CURRENT STATE OF KNOWLEDGE, PROSPECTIVE PROBLEMS

Cover Page

Cite item

Full Text

Abstract

This review aims to evaluate the current state of knowledge regarding the mycobiota of English oak, focusing on biodiversity conservation, ecological and trophic aspects of fungi-plant interactions, forest phytopathology, and biotechnology. It also seeks to identify potential research opportunities for studying this vital tree species in European Russia. A retrospective examination of the fungal and oomycete biodiversity associated with English oak has been conducted, addressing the trophic classification challenges of these organisms. A comprehensive framework for assessing the trophic status of fungi is proposed, incorporating multiple criteria: 1) nutritional type (e.g., biotrophs, necrotrophs, saprotrophs, and hybrid categories such as “necrotrophs with residual saprotrophic activity” and “saprotrophs with necrotrophic activity”); 2) tissue specificity (including bark, cambium, sapwood with functional xylem, heartwood with non-functional xylem, wood detritus, and sclerenchyma in fruits and leaves); and 3) impact on living plants or mortality dynamics (e.g., pathogens or detrital saprobes). The review o¯ers detailed data on the distribution of fungi and oomycetes across di¯erent ecological macroniches. These include the phyllosphere (30 species), terminal shoots (26 species), trunks and skeletal branches undergoing senescence (475 species), wounds on living trees (230 species), litter (62 species), rhizosphere and mycorrhizosphere (47 + 137 species), and oak seedlings (83 species). Additionally, key diseases a¯ecting English oak and corresponding pathogen management strategies are discussed. The article examines studies focused on assessing oak stand conditions and developing forest scaling systems. It also highlights biotechnological and pharmacological research dedicated to specific fungal species associated with English oak. Finally, promising avenues for further investigation into the mycobiota of English oak are outlined.

About the authors

I. V. Zmitrovich

Komarov Botanical Institute of RAS

Email: iv_zmitrovich@mail.ru
Saint Petersburg, Russia

A. B. Shishlyannikova

Saint Petersburg State Forest Technical University

Saint Petersburg, Russia

A. G. Shiryaev

Institute of Plant and Animal Ecology, UB RAS

Yekaterinburg, Russia

References

  1. Андерссон Л., Алексеева Н.М., Кузнецова Е.С. Выявление и обследование биологически ценных лесов на Северо-Западе европейской части России. Т. 2. Пособие по определению видов, используемых при обследовании на уровне выделов. СПб.: Типография “Победа”, 2009. 261 с.
  2. Богданов П.Л. Дендрология. М.: Лесная пром-ть, 1974. 240 с.
  3. Большаков С.Ю., Волобуев С.В., Ежов О.Н. и др. Афиллофороидные грибы европейской части России: аннотированный список видов. СПб.: Изд-во СПбГЭТУ “ЛЭТИ”, 2022. 578 c.
  4. Бондарцев А.С. Грибные болезни культурных растений и меры борьбы с ними: Поле. Огород. Сад. СПб.: Тип. М. Меркушева, 1912. 399 с.
  5. Бондарцева М.А. Новая форма трутового гриба Laetiporus sulphureus (Fr.) Bond. et Sing. // Новости сист. низш. раст. 1972. Т. 9. С. 137–139.
  6. Булыгин Н.Е., Веретенникова Г.А., Решетняк В.Н. Дендроинвентаризация парка “Дубки”. Его геоботаническое обследование и разработки рекомендаций по сохранению дубов, представляющих историческую ценность: отчет по науч.-исслед. работе. Л.: ЛТА, 1978. № 3117. 26 с.
  7. Булыгин Н.Е., Ярмишко В.Т. Дендрология. СПб.: Наука, 2000. 528 с.
  8. Вакин А.Т. Грибные болезни и другие пороки дубрав. М.; Л.: Гослестехиздат, 1932. 162 с.
  9. Вакин А.Т. Фитопатологическое состояние дубрав Теллермановского леса // Тр. Ин-та леса АН СССР. 1954. Т. 16. С. 5–109.
  10. Василевич В.И., Бибикова Т.В. Широколиственные леса северо-запада Европейской России. I. Типы дубовых лесов // Бот. журн. 2001. Т. 86 (7). С. 88–101.
  11. Васильков Б.П. Систематический обзор осиновика Krombholzia aurantiaca (Roques) Gilb. и его форм, встречающихся в СССР // Ботанические мат-лы Ин-та споровых растений Гл. бот. сада РСФСР. 1956. Т. 11. С. 134–140.
  12. Васильков Б.П. Белый гриб. Опыт монографии одного вида. М.; Л.: Наука, 1966. 142 с.
  13. Веденяпина Е.Г., Волчанская А.В., Малышева В.Ф. и др. Почвообитающие виды рода Phytophthora в Ботаническом саду БИН РАН. I. Первые находки Ph. citricola, Ph. plurivora и Ph. quercina в России // Микол. и фитопатол. 2014. Т. 48 (4). С. 261–271.
  14. Вихров В.Е. Строение и физико-механические свойства древесины дуба. М.: Изд-во АН СССР, 1954. 264 с.
  15. Волкова Е.А., Исаченко Г.А., Храмцов В.Н. Природа заказника “Северное побережье Невской губы”. СПб., 2020. 240 с.
  16. Горностай Т.Г. Физико-химическая характеристика меланинов культуральной среды Inocutis dryophila (Berk) Flasson et Niemela // Изв. вузов. Прикладная химия и биотехнол. 2024. Т. 14 (3). С. 416–420. https://doi.org/10.21285/achb.930
  17. Государственная фармакопея Российской Федерации XV издания. Дуба кора – Quercus cortex. Приказ Минздрава России от 20.07.2023 № 377.
  18. Гроздов Б.В. Дендрология. М.; Л.: Гослесбумиздат, 1952. 436 с.
  19. Гусейнов Э., Мельник В., Сельчук Ф. Ceratophorum helicosporum – новый для микофлоры Турции вид и род гифомицетов семейства семейства Dematiaceae // Микол. и фитопатол. 2002. Т. 36 (3). С. 11–13.
  20. Дунаев А.В., Дунаева Е.Н., Калугина С.В. Ложный дубовый трутовик Phellinus robustus Bourd. et Galz. в белгородских дубравах (биоэкология, распространение, вредоносность) // Науч. ведомости. Сер. Естест. науки. 2011. № 9 (104). С. 35–42.
  21. Дунаев А.В., Дунаева Е.Н., Калугина С.В. Макромицеты, связанные с корневой системой дуба в лесостепных дубравах // Науч. ведомости. Сер. Естест. науки. 2010. № 15 (86). С. 79–81.
  22. Жукова Е.А. Морозова О.В., Волобуев С.В., Брянцева Ю.С. Базидиальные макромицеты и их влияние на состояние зеленых насаждений садов Русского музея (Санкт-Петербург) // Микол. и фитопатол. 2017. Т. 51 (6). С. 328–339.
  23. Звягинцев В.Б., Блинцов А.И., Козел А.В., и др. Защита леса. Минск: БГТУ, 2019. 164 с.
  24. Змитрович И.В. Предисловие редактора к кн.: Малышева В.Ф., Малышева Е.Ф. Высшие базидиомицеты лесных и луговых экосистем Жигулей. М.; СПб.: Тов-во науч. изд. КМК, 2008. С. 1–3.
  25. Змитрович И.В., Васильев Н.П. Грибы – возбудители заболеваний древесных пород в условиях Санкт-Петербурга. 1. Микозы дуба // Новости сист. низш. раст. 2006. Т. 40. С. 121–131.
  26. Змитрович И.В. Средняя тайга Карельского перешейка: зональные, интразональные и экстразональные явления // Вестн. экол. лесовед. и ландшафтовед. 2011. № 12. С. 54–76.
  27. Змитрович И.В., Васильев Н.П. Грибы – возбудители заболеваний древесных пород в условиях Санкт-Петербурга. 1. Микозы дуба // Новости сист. низш. раст. 2006. Т. 40. С. 121–131.
  28. Змитрович И.В., Васильев Н.П., Малышева В.Ф. Экотипическая дифференциация ключевых видов ксилотрофных базидиомицетов на древесных интродуцентах бореальной зоны // Turczaninowia. 2011. Т. 14 (1). C. 81–89.
  29. Змитрович И.В. Семейства ателиевые и амилокортициевые. СПб.: Тов-во науч. изд. КМК, 2008. 278 c.
  30. Иванов А.И., Ермолаева А.А. Влияние экологических факторов на пространственное распределение агарикомицетов (Agaricomycetes) в пойменных местообитаниях // Микол. и фитопатол. 2021. Т. 55 (4). С. 239–255. https://doi.org/10.31857/S002636482104005x
  31. Иващенко Л.О., Пантелеев С.В., Романенко М.О., Баранов О.Ю. Видовая идентификация грибных возбудителей болезней дуба черешчатого на основе размера маркерных ДНК локусов // Вестн. Поволжского гос. технологического ун-та. Сер. Лес. Экология. Природопользование. 2021. № 4 (52) С. 89–97. https://doi.org/10.25686/2306-2827.2021.4.89
  32. Каратыгин И.В. Коэволюция грибов и растений. СПб.: Гидрометеоиздат, 1993. 118 с.
  33. Ковязин В.Ф., Иванова Е.А. Почвенно-растительный комплекс парка “Дубки” Санкт-Петербурга // Изв. Санкт-Петербургской лесотехнической академии. 2022. Вып. 238. С. 6–22.
  34. Колмаков П.Ю. Агарикоидные базидиомицеты Белорусско-Валдайского Поозерья (в пределах Республики Беларусь и Псковской области России): Дис. … канд. биол. наук. СПб.: Ботанический ин-т им. В.Л. Комарова РАН, 2005. 220 с.
  35. Леонтьев Л.Л. Проблемы обследования и оценки состояния деревьев в городских условиях // Жизнь дворцовых садов и парков. Проблемы сохранения исторических насаждений и безопасности посетителей. СПб., 2022. С. 260–265.
  36. Неводовский Г.С. Грибы СССР (сер. эксик.). Алма-Ата, 1952–1961.
  37. Нездойминого Э.Л. Определитель грибов России. Порядок агариковые. Семейство паутинниковые. Вып. 1. СПб.: Наука, 1996. 408 с.
  38. Николаев М.В. Климатические изменения и ведение полеводства в зоне осушаемых земель европейского Нечерноземья России: уязвимость и адаптация // Сельскохоз. биол. 2023. Т. 58 (1). С. 60–74.
  39. Николаев М.В. Выявление уязвимых для дефицита влаги зернопроизводящих территорий на основе мезорайнирования зоны неустойчивого увлажнения при изменении климата в европейской части России // Сельскохоз. биол. 2024. Т. 59 (3). С. 473–491.
  40. Орлов Д.С. Гумусовые кислоты почв и общая теория гумификации. М.: Изд-во МГУ, 1990. 325 с.
  41. Попов Е.С., Коваленко А.Е., Гапиенко О.С. и др. Микобиота Белорусско-Валдайского поозерья. М.; СПб.: Тов-во науч. изд. КМК, 2013. 399 с.
  42. Попов Е.С., Волобуев С.В. Новые данные о деревообитающих макромицетах ключевых охраняемых природных территорий Юго-Западного Нечерноземья // Микол. и фитопатол. 2014. Т. 48 (4). С. 231–239.
  43. Постановление Правительства РФ от 09.12.2020 № 2047 “Об утверждении Правил санитарной безопасности в лесах”.
  44. Приказ Министерства природных ресурсов и экологии Российской Федерации от 09.11.2020 г. № 910 “Об утверждении Порядка проведения лесопатологических обследований и формы акта лесопатологического обследования”. Зарегистрирован 18.12.2020 г. № 61584 (с изменениями на 31 октября 2022 года).
  45. Ростовцев С.А. Районирование перебросок желудей дуба черешчатого. Воронеж: НИИЛГиС, 1962. 8 с.
  46. Светашева Т.Ю. Макромицеты окрестностей государственного музея-заповедника “Куликово поле” // Разнообразие растительного мира. 2021. № 4 (11). С. 61–79.
  47. Селочник Н.Н. Состояние дубрав среднерусской лесостепи и их грибные сообщества. М.; СПб.: Ин-т лесоведения РАН, 2015. 216 с.
  48. Селочник Н.Н., Каплина Н.Ф. Оценка состояния дубрав с учетом развития крон деревьев в неблагоприятных условиях: антропогенных (Московский регион) и климатических (лесостепь) // Вестн. Моск. гос. ун-та леса // Лесн. вестник. 2011. № 4 (80). С. 103–108.
  49. Сенников А.Н. Фитогеографическое районирование северо-запада европейской части России (Ленинградская, Псковская и Новгородская области) // Биогеография Карелии / Тр. Карельского науч. центра РАН. Вып. 7. Петрозаводск, 2005. С. 206–243.
  50. Сидельникова М.В., Тобиас А.В., Власов Д.Ю. Сумчатые грибы (телеоморфы) на древесно-кустарниковых растениях в пригородных парках Санкт-Петербурга // Микол. и фитопатол. 2018. Т. 52 (4). С. 259–266.
  51. Смирнова О.В. (ред.). Восточноевропейские леса: история в голоцене и современность: в 2 кн. М.: Наука, 2004. Кн. 1. 479 с. Кн. 2. 575 с.
  52. Стороженко В.Г., Коткова В.М., Чеботарев П.А. Динамика трансформации коренных дубрав и дереворазрушающие базидиальные грибы Теллермановского леса // Лесн. вестник. 2014. Т. 4. С. 77–85.
  53. Фирсов Г.А., Ярмишко В.А., Волчанская А.В. и др. Усыхание древесных пород и распространение видов рода Phytophthora и рода Pythium в Ботаническом саду Петра Великого БИН РАН: мониторинг 2018 года // Hortus Botanicus. 2019. T. 14. http://hb.karelia.ru
  54. Фирсов Г.А., Ярмишко В.Т., Змитрович И.В. и др. Морозобоины и патогенные ксилотрофные грибы в парке-дендрарии Ботанического сада Петра Великого. СПб.: Ладога, 2021. 304 с.
  55. Фурменкова Е.С., Кочергина М.В. Методы диагностики состояния древесных растений по внешним патологическим признакам // Вестн. Бурятской гос. сельскохоз. акад. им. В.Р. Филиппова. 2021. № 4 (65). С. 164–171.
  56. Харченко Н.А., Михно В.Б., Харченко Н.Н. Деградация дубрав Центрального Черноземья. Воронеж: Воронеж. лесотехн. акад., 2010. 604 с.
  57. Царалунга В.В. Цикличность ускоренного отмирания дуба // Лесн. вестник. 2002. № 2. С. 31–35.
  58. Чураков Б.П. Фитопатогенные грибы дубовых лесов. Грибные сообщества лесных экосистем. М.; Петрозаводск, 2000. С. 292–316.
  59. Чураков Б.П., Чураков Р.А. Изучение санитарного состояния дубрав Ульяновской области // Бюл. ГНБС. 2018. Вып. 128. С. 15–22.
  60. Чураков Р.А., Чураков Б.П., Чуракова Ю.А. Зараженность дуба возбудителями сердцевинных гнилей в насаждениях с разными таксационными характеристиками // Пробл. лесной фитопатологии и микологии / мат. XI междунар. конф. Петрозаводск, 2022. С. 111–113.
  61. Шабунин Д.А., Семакова Т.А. Этиология усыхания старовозрастных деревьев дуба в парках Санкт-Петербурга в связи с динамикой окружающего древостоя // Жизнь дворцовых садов и парков. Проблемы сохранения исторических насаждений и безопасности посетителей. СПб., 2022. С. 87–95.
  62. Шишлянникова А.Б. Ксилосапротрофный микокомплекс дуба черешчатого в зоне ценооптимума и на северной границе ареала: Дис. … канд. биол. наук. СПб.: СПбГЛТУ, 2024. 344 с.
  63. Шишлянникова А.Б., Зарудная Г.И., Зинчук Т.М. Анализ изменения фитопатологического состояния мемориальных лиственных древесных растений музея-заповедника “Парк Монрепо” // Изв. Санкт-Петербургской лесотехн. акад. СПб.: СПбГЛТУ, 2014. Вып. 207. С. 212–224.
  64. Шишлянникова А.Б., Зарудная Г.И., Поповичев Б.Г., Мусолин Д.Л. Болезни и стволовые вредители в Баболовском парке г. Пушкина // Дендробионтные беспозвоночные животные и грибы и их роль в лесных экосистемах (XI Чтения памяти О.А. Катаева). СПб.: СПбГЛТУ, 2020. С. 369–370.
  65. Шишлянникова А.Б., Змитрович И.В., Зарудная Г.И. и др. Результаты микологического обследования побеговой системы “Ириновского дуба” (Ленинградская область, Россия) // Микол. и фитопатол. 2023. Т. 57 (6). С. 456–461. https://doi.org/10.31857/S0026364823060120
  66. Шишлянникова А.Б., Данилов Д.А., Змитрович И.В., Бачериков И.В. Фитопатологическая характеристика дуба черешчатого в различных условиях произрастания // Изв. Санкт-Петербургской лесотехн. акад. 2024. Вып. 250. С. 116–143. https://doi.org/10.21266/2079-4304.2024.250.116-143
  67. Шишлянникова А.Б., Змитрович И.В. Дуб черешчатый в различных условиях произрастания: фитопатологический аспект // Леса России: политика, промышленность, наука, образование / Мат. IX Всерос. науч.-техн. конф. СПб.: СПбГЛТУ, 2024. С. 506–509.
  68. Шишлянникова А.Б., Змитрович Д.А., Бачериков И.В. Лесная и луговая группы экотипов дуба черешчатого и их фитопатологическая характеристика // Изв. Санкт-Петербургской лесотехн. акад. 2025. Вып. 251. С. 279-300. https://doi.org/10.21266/2079-4304.2025.254.279-300
  69. Шубин В.И. Значение симбиоза и содержания азота в почве для плодоношения эктомикоризных грибов. II. Значение азота // Микол. и фитопатол. 2010. Т. 44 (4). С. 352–358.
  70. Adamska I. The possibility of using sulphur shelf fungus (Laetiporus sulphureus) in the food industry and in medicine – a review // Foods. 2023. V. 12 (7). P. e1539. https://doi.org/10.3390/foods12071539
  71. Adaskaveg J.E., Förster H., O’Fallon C. New fungicides for managing Phytophthora diseases of tree crops with foliar and soil applications // J. Plant. Dis. Prot. 2024. V. 131. P. 1203–1209. https://doi.org/10.1007/s41348-024-00873-6
  72. Agerer R. Ramaria subbotrytis (Coker) Corner + Quercus robur L. // Descriptions of Ectomycorrhizae. 1996. V. 1. P. 125–130.
  73. Agerer R. Lyophyllum decastes. In: Colour atlas of Ectomycorrhizae. Schwabisch Gmund: Einhorn Verlag, 1998. Pl. 18.
  74. Agerer R. Elaphomyces aculeatus Tul. + Quercus robur L. // Descriptions of Ectomycorrhizae 1999. V. 4. P. 37–41.
  75. Agerer R. Elaphomyces aculeatus // Colour atlas of Ectomycorrhizae. Schwabisch Gmund: Einhorn Verlag, 2002. Pl. 158.
  76. Agerer R., Beenken L. Lyophyllum decastes (Fr.) Sing. + Quercus robur L. // Descriptions of Ectomycorrhizae. 1998. V. 3. P. 43–47.
  77. Aguín O., Mansilla J.P., Sainz J.M. In vitro selection of an effective fungicide against Armillaria mellea and control of white root rot of grapevine in the field // Pest. Manag. Sci. 2006. V. 62. P. 223–228. https://doi.org/10.1002/ps.1149
  78. Allesio C.L. Boletus Dill. ex L. (sensu lato). Fungi Europaei. V. 2. Saronno: Libreria editrice Giovanna Biella, 1985. 712 p.
  79. Amiri A., Schnabel G. Persistence of propiconazole in peach roots and efficacy of trunk infusions for Armillaria root rot control // Int. J. Fruit Sci. 2012. V. 12. P. 437–449. https://doi.org/10.1080/15538362.2012.679183
  80. Appel D.N. Billings R.F. (eds). Oak wilt perspectives // Proceedings of the National Oak Wilt Symposium, June 22–25, 1992, Austin, Texas. Austin, 1992.
  81. Arx J.A. von. Revision der zu Gloeosporium gestellten Pilze. Verhandelingen der Koninklijke Nederlandse Akademie van Wetenschappen. Afdeeling Natuurkunde, Sectie 2. 1957. V. 51 (3). P. 1–153.
  82. Badalyan S.M., Gharibyan N.G. Pharmacological properties and resource value of hymenochaetoid fungi (Agaricomycetes) distributed in Armenia // Int. J. Med. Mushrooms. 2020. V. 22 (12). P. 1135–1146.
  83. Beenken L. Russula virescens (Schaeff.) Fr. + Quercus robur L. // Descriptions of Ectomycorrhizae. 2001a. V. 5. P. 199–203.
  84. Beenken L. Russula vesca Fr. + Quercus robur L. // Descriptions of Ectomycorrhizae. 2001b. V. 5. P. 187–192.
  85. Belisle R.J., Hao W., McKee B. et al. New Oomycota fungicides with activity against Phytophthora cinnamomi and their potential use for managing avocado root rot in California // Plant Dis. 2019. V. 103. P. 2024–2032.
  86. Belisle R.J., Hao W., Riley N. et al. Root absorption and limited mobility of mandipropamid as compared to oxathiapiprolin and mefenoxam after soil treatment of citrus plants for managing Phytophthora root rot // Plant. Dis. 2023. V. 107. P. 1107–1114.
  87. Berkeley M.J., Broome C.E. Notices of British Fungi [615–639] // Annals Magaz. Nat. History. Ser. 2. 1852. V. 9 (52). P. 317–329.
  88. Biketova A.Yu., Svetasheva T.Yu., Taylor A.F.S. et al. Morphological and molecular re-assessment of European and Levantine species of the genus Hortiboletus (Boletaceae) // IMA Fungus. 2025. V. 16. P. e144731. https://doi.org/10.3897/imafungus.16.144731
  89. Billings R.F. State forest health programs: a survey of state foresters // J. For. 2000. V. 98. P. 20–25.
  90. Blashke H. Decline symptoms on roots of Quercus robur // Eur. J. Forest Pathol. 1994. V. 24 (6–7). P. 386–398. https://doi.org/10.1111/j.1439-0329.1994.tb00832.x
  91. Boh B., Berovič M. Grifola frondosa (Dicks.: Fr.) S.F. Gray (Maitake mushroom): medicinal properties, active compounds, and biotechnological cultivation // Int. J. Med. Mushrooms. 2007. V. 9 (2). P. 89–108. https://doi.org/10.1615/IntJMedMushr.v9.i2.10
  92. Bolton J. An history of fungusses, growing about Halifax. V. 2. L., 1788. 138 p.
  93. Bonorden H.F. Abhandlungen aus dem Gebiete der Mykologie // Abhandlungen der Naturforschenden Gesellschaft zu Halle. 1864. V. 8. P. 1–168.
  94. Borowska A. New species of Bactrodesmium, Corynespora, Septonema and Taeniolella // Acta Mycologica. 1975. V. 11 (1). P. 59–65.
  95. Britzelmayr M., Rehm H. Beiträge zur Ausburger Pilzflora. In: Rabenh. Krypt.-Fl., Edn 2 Leipzig, 1888. P. 49–89.
  96. Bulliard J.B.F. Herbier de la France; ou, Collection complette des plantes indigenes de ce royaume; avec leurs propriétés, et leurs usages en medecine. V. 5. Paris, 1785. Pl. 228.
  97. Bulliard J.B.F. Herbier de la France. V. 9. Paris, 1789. Pl. 432.
  98. Buxbaum J.C. Plantarum minus cognitarum. Plantas circa Byzantim et in Oriente observatas. Centuria V. Petropolis, 1740. 48 p.
  99. Campbell R.N., French D.W. A study of mycelial mats of oak wilt // Phytopathology. 1955. V. 45. P. 485–489.
  100. Cateni F., Zacchigna M., Altieri T. Antioxidant properties of oak bracket mushroom, Pseudoinonotus dryadeus (Higher Basidiomycetes): a mycochemical study // Int. J. Med. Mushrooms. 2015. V. 17 (7). P. 627–637. https://doi.org/10.1615/intjmedmushrooms.v17. i7.30
  101. Çayan F., Tel‐Çayan G., Deveci E. A comprehensive study on phenolic compounds and bioactive properties of five mushroom species via chemometric approach // J. Food Process Preserv. 2021. V. 45 (9). P. e15695.
  102. Christiansen M.P. Danish resupinate fungi // Dansk. Bot. Ark. 1960. V. 19 (2). P. 63–388.
  103. Ciferri R. Notae mycologicae et phytopathologicae // Annales Mycologici. 1922. V. 20 (1–2).
  104. Cooke M.C. Foliicolous Sphaeriae // J. Bot., British and Foreign. 1866. V. 4. P. 241–253.
  105. Cooke R.C., Whipps J.M. The evolution of modes of nutrition in fungi parasitic on terrestrial plants // Biol. Rev. 1980. V. 55. P. 341–362.
  106. Cox L.A., Hall A.M. Phylloplane fungi of Quercus robur // Annals Appl. Biol. 1978. V. 89 (1). P. 119–122.
  107. Crous P.W., Groenewald J.Z. The genera of fungi – G 4: Camarosporium and Dothiora. IMA Fungus. 2017. V. 8 (1). P. 131–152. https://doi.org/10.5598/imafungus.2017.08.01.10
  108. Crous P.W., Schumacher R.K., Wingfield M.J. et al. Fungal systematics and evolution // FUSE. 2018. V. 1 (1). P. 169–215. https://doi.org/10.3114/fuse.2018.01.08
  109. Crous P.W., Jurjević Z., Balashov S. et al. Fungal planet description sheets: 1614–1696 // Fungal Syst. Evol. 2024. V. 13. P. 183–440. https://doi.org/10.3114/fuse.2024.13.11
  110. Desmazières J.B.H.J. Notice sur quelques cryptogames inédites, récemment découvertes en France, et qui vent paraître publiées, en nature, dans les fascicules V et VI de la seconde édition des Plantes Cryptogames de France // Ann. Sci. Naturell. Botanique. Sér. 2. 1838. V. 10. P. 308–314.
  111. Desmazières J.B.H.J. Quatorzième notice sur les plantes cryptogames récemment découvertes en France // Ann. Sci. Naturell. Botanique. Sér. 3. 1847. V. 8. P. 9–37.
  112. Desmazières J.B.H.J. Seizième notice sur les plantes cryptogames récemment découvertes en France // Ann. Sci. Naturell. Botanique. Sér. 3. 1848. V. 10. P. 342–361.
  113. Desmazières M.J.-B.H.-J. Quelques Septoria noveaux // Ann. Sci. Nat. Bot. Ser. 3. 1853. V. 20. P. 85–96.
  114. Dighton J., White J.F., Oudemans P. (eds). The fungal community. Its organization and role in the ecosystem. Third edition. L.; N.Y.; Singapore: Taylor and Francis, 2005. 936 p.
  115. Dillenius J.J. Catalogus plantarum sponte circa Gissam nascentim. Frankfurt am Main, 1719. 240 p.
  116. Dodoens R. Histoire des plantes, en laquelle est contenue la description entire des herbes…non seulement de celles qui croissant en ce pais, mais aussi des autres estrangeres qui viennent en usage de medicine. Antwerpen, 1557. 644 p.
  117. Duby J.É. Botanicon Gallicum. 1830. V. 2. P. 545–1068.
  118. Elias-Roman R.D., Galderon-Zavala G., Guzman-Mendoza R. et al. ‘Mondragon’: a clonal plum rootstock to enhance management of Armillaria root disease in peach orchards of Mexico // Crop Protect. 2019. V. 121. P. 89–95. https://doi.org/10.1016/j. cropro. 2019.03.011
  119. Eriksson J., Ryvarden L. The Corticiaceae of North Europe. V. 4: Hyphodermella – Mycoacia. Oslo, 1976. P. 547–886.
  120. Fiasson J.L. Distribution of styrylpyrones in the basidiocarps of various Hymenochaetaceae // Biochem. Syst. Ecol. 1982. V. 10 (4). P. 289–296.
  121. Fransson P. Craterellus tubaeformis (Fr.) Quel. (syn. Cantharellus tubaeformis Fr.: Fr.) + Quercus robur L. // Descriptions of Ectomycorrhizae. 2004. V. 7–8. P. 37–43.
  122. Fries E. Systema mycologicum, sistens fungorum ordines, genera et species, huc usque cognitas, quas ad normam methodi naturalis determinavit, disposuii atque descripsit. V. 1. Gryphiswald, 1821. 520 p.
  123. Fries E. Systema mycologicum: sistens fungorum ordines, genera et species, huc usque cognitas, quas ad normam methodi naturalis determinavit. V. 3. Gryphiswald, 1823. 621 p.
  124. Fries E. Upsstalnning af de i Sverige Vartsvampar (Scleromyci) // Kungl. Svenska vetenskapsakademiens handlingar. Ser. 3. 1819. V. 6. P. 100–120.
  125. Fries E. Hymenomycetes Europaei sive epicriseos systematis mycologici. Uppsala, 1874. 755 p.
  126. Fuckel L. Symbolae mycologicae // Beiträge zur Kenntniss der Rheinischen Pilze. Jahrbücher des Nassauischen Vereins für Naturkunde. 1870. P. 1–459.
  127. Gachet H. Note sur quelques especes et une variete inedites de champignons // Actes de la Société Linnéenne de Bordeaux. 1832. V. 5. P. 227–233.
  128. Galli R. I Boleti. Atlante pratico-monographico per la determinazione dei boleti. 3rd ed. Milan: Dalla Natura, 2007. 295 p.
  129. Gebhardt P., Dornberger K., Gollmick F.A. Quercinol, an antiinflammatory chromene from the wood-rotting fungus Daedalea quercina (Oak Mazegill) // Bioorganic Med. Chem. Letts. 2007. V. 17 (9). P. 2558–2560. https://doi.org/10.1016/j.bmcl.2007.02.008
  130. Ghobad-Nejhad M., Zhou L.W., Tomšovský M. et al. Unlocking nature’s pharmacy: diversity of medicinal properties and mycochemicals in the family Hymenochaetaceae (Agaricomycetes, Basidiomycota) // Mycosphere. 2024. V. 15 (1). 6347–6438. https://doi.org/10.5943/mycosphere/15/1/27
  131. Goddard M.L., Tabacchi R. Total synthesis of bioactive frustulosin and frustulosinol // Tetrahedron Lett. 2006. V. 47. P. 909–911.
  132. Goonasekara I.D., Maharachchikumbura S.S.N., Wijayawardene N.N. et al. Seimatosporium quercina sp. nov. (Discosiaceae) on Quercus robur from Germany // Phytotaxa. 2016. V. 255 (3). P. 240–248. http://www.mapress.com/j/pt/article/view/phytotaxa.255.3.5
  133. Granetti B. Caratteristiche morfologiche, biometriche e strutturali delle micorrize di Tuber di interesse economic // Micologia Italiana. 1995. V. 2. P. 101–117.
  134. Griffon E., Maublanc A. Les Microsphaera des Chênes // Bull. Trim. Soc. Mycol. France. 1912. V. 28. P. 88–103.
  135. Guillemin J.P., Gianinazzi S., Gianinazzipearson V., Marchal J. Contribution of arbuscular mycorrhizas to biological protection of micropropagated pineapple (Ananas-comosus (L) Merr) against Phytophthora cinnamomi Rands // Agric. Sci. Finland. 1994. V. 3. P. 241–251.
  136. Haas H. The young specialist looks at fungi. L.: Burki, 1969. 240 p.
  137. Harms M., Lindequist U., Wende K. Biological activity of different inonotus species on human keratinocytes // Planta Medica. 2014. V. 80. P. 34.
  138. Hartig R. Lehrbuch der Baumkrankheiten. Berlin, 1880. P. 100.
  139. Hatsch E., Dupouey J.L., Dubreuil B., Guillaud J. Impact du champignon parasite Phellinus robustus et des cavités nidifiables sur la croissance des Chênes sessile et pédonculé // Revue Forestière Française. 1999. V. 51 (4). P. 511–521.
  140. Harvey A.E., Larsen M.J., Jurgensen M.F. Comparative distribution of ectomycorrhizae in soils of three Western Montana forest habitat types // Forest Sci. 1979. V. 25. P. 350–358.
  141. Höhnel F. von, Litschauer V. Beiträge zur Kenntnis der Corticieen: II // Sitzungsberichte der Kaiserlichen Akademie der Wissenschaften Math.-naturw. Klasse Abt. I. 1907. V. 116. P. 739–852.
  142. Huang J.R., Yang B.J., Mo M.H. et al. Secondary metabolites from the fungus Stereum gausapatum ATCC60954 // Phytochem. Lett. 2020. V. 35. P. 171–174.
  143. Hyun M.W., Kim J.H., Suh D.Y. et al. Fungi isolated from pine wood nematode, its vector Japanese pine sawyer, and the nematode-infected Japanese black pine wood in Korea // Mycobiology. 2007. V. 35 (3). P. 159–161. https://doi.org/10.4489/myco.2007.35.3.159
  144. İnci Ş., Sevindik M., Kırbağ S. et al. Antioxidant, antibacterial, and antifungal activity of Hymenochaete rubiginosa // Indian J. Nat. Prod. Res. 2022. V. 13 (1). P. 67–71.
  145. Isaeva O.V., Glushakova A.M., Yurkov A.M. et al. The yeast Candida railenensis in the fruits of English oak (Quercus robur L.) // Microbiology. 2009. V. 78. P. 355–359. https://doi.org/10.1134/S002626170903014x
  146. Jakucs E., Agerer R., Bratek Z. “Quercirhiza fibulocystidiata” + Quercus spec. // Descriptions of Ectomycorrhizae. 1997. V. 2. P. 67–71.
  147. Jakucs E. “Quercirhiza alboviolacea” + Quercus robur L. // Descriptions of Ectomycorrhizae. 2001. V. 5. P. 61–65.
  148. Jakucs E., Bratek Z. Genea verrucosa // Colour atlas of ectomycorrhizae. Schwabisch Gmund: Einhorn Verlag, 1998. Pl. 120.
  149. Jakuschkin B. Genetic architecture of the interactions between English oak (Quercus robur L.) and the microbial community of its phyllosphere. Symbiosis. Université de Bordeaux, 2015. 187 p.
  150. Janda V., Kříž M., Konvalinková T., Borovička J. Makroskopická variabilita druhu Rubroboletus legaliae se zvláštním zřetelem na Boletus spinarii // Czech Mycol. 2017. V. 69 (1). P. 31–50.
  151. Jankowiak R. Fungi occurring in acorn of Quercus robur L. infested by insects // Acta Sci. Pol. Silv. Colendar. Rat. Ind. Lignar. 2008. V. 7 (1). P. 19–29.
  152. Jankowiak R., Stępniewska H., Bilański P., Taerum S.J. Fungi as potential factors limiting natural regeneration of pedunculate oak (Quercus robur) in mixed-species forest stands in Poland // Plant Pathol. 2022. V. 1 (4). P. 805–817. https://doi.org/10.1111/ppa.13529
  153. Jankowiak R., Bilański P., Strzałka B. et al. Four new Ophiostoma species associated with conifer- and hardwood-infesting bark and ambrosia beetles from the Czech Republic and Poland // Antonie van Leeuwenhoek. 2019. V. 112. P. 1501–1521.
  154. Jung T., Cooke D.E.L., Blaschke H. et al. Phytophthora quercina sp. nov., causing root rot of European oaks // Mycol. Res. 1999. V. 103. P. 785–798.
  155. Jung T., Hansen E.M., Winton L. et al. Three new species of Phytophthora from European oak forests // Mycol. Res. 2002. V. 106 (4). P. 397–411.
  156. Jung T., Nechwatal J., Cooke D.E.L. et al. Phytophthora pseudosyringae sp. nov., a new species causing root and collar rot of deciduous tree species in Europe // Mycol. Res. 2003. V. 107. P. 772–789.
  157. Jung T., Nechwatal J. Phytophthora gallica sp. nov., a new species from rhizosphere soil of declining oak and reed stands in France and Germany // Mycol. Res. 2008. V. 112. P. 1195–1205.
  158. Karsten P.A. Kritisk öfversigt af Finlands Basidsvampar (Basidiomycetes; Gastero- and Hymenomycetes) // Bidr. Känned. Finl. Nat. Folk. 1889. V. 48. P. 1‒482.
  159. Kedves O., Shahab D., Champramary S. et al. Epidemiology, biotic interactions and biological control of armilla-rioids in the Northern Hemisphere // Pathogens. 2021. V. 16 (1). https://doi.org/10.3390/pathogens10010076
  160. Khatua S., Ghosh S., Acharya K. Laetiporus sulphureus (Bull.: Fr.) Murr. as food as medicine // Pharmac. J. 2017. V. 9 (6). S1–S15.
  161. Koch K.A., Quiram G.L., Venette R.C. A review of oak wilt management: a summary of treatment options and their efficacy // Urban Forestry and Urban Greening. 2010. V. 9 (1). P. 1–8. https://doi.org/10.1016/j.ufug.2009.11.004
  162. Kokkonen K. New northern records of Entoloma with three new species of subgenus Rhodopolia and typification of E. nidorosum // Karstenia. 2021. V. 59 (1–2). P. 55–69. https://doi.org/10.29203/ka.2021.510
  163. Kovács B., Zomborszki Z.P., Orban-Gyapai O. Investigation of antimicrobial, antioxidant, and xanthine oxidase inhibitory activities of Phellinus (Agaricomycetes) mushroom species native to central Europe // Int. J. Med. Mushrooms. 2017. V. 19 (5). P. 387–394.
  164. Kowalski T., Bartnik C. Cryptosporiopsis radicicola sp. nov. from roots of Quercus robur // Mycol. Res. 1995. V. 99 (6). P. 663–665. https://doi.org/10.1016/S0953-7562(09)80524-8
  165. Kowalski T., Butin H. Taxonomie bekannter und neuer Ceratocystis-Arten an eiche (Quercus robur L.) // J. Phytopathology. 1989. V. 124. P. 236–248.
  166. Kowalski T., Halmschlager E. Chalara angustata sp. nov. from roots of Quercus petraea and Quercus robur // Mycol. Res. 1996. V. 100. P. 1112–1116.
  167. Kropp B.R. Fungi from decayed wood as ectomycorrhizal symbionts of western helmlock // Can. J. Forest Res. 1982. V. 12. P. 36–39.
  168. Kunze G., Schmidt J.C. Mykologische Hefte. V. 1. Leipzig, 1817. 125 p.
  169. Kwaśna A., Szewczyk W. Effects of fungi isolated from Quercus robur roots on growth of oak seedlings // Dendrobiology. 2016. V. 75. P. 99–112. http://dx.doi.org/10.12657/denbio.075.010
  170. Kyhl J.F., Bartelt R.J., Cossé A. Semiochemical-mediated flight responses of sap beetle vectors of oak wilt, Ceratocystis fagacearum // J. Chem. Ecol. 2002. V. 28. P. 1527–1547. https://doi.org/10.1023/A:1019968211223
  171. Legon N., Henrici A. Marchandiomyces quercinus distribution and relationships // Field Mycol. 2015. V. 16 (1). P. 18–22.
  172. Leski T., Pietras M., Rudawska M. Ectomycorrhizal fungal communities of pedunculate and sessile oak seedlings from bare-root forest nurseries // Mycorrhiza. 2010. V. 20. P. 179–190. https://doi.org/10.1007/s00572-009-0278-6
  173. Lindsey J.K. Amanitaceae mycorrhizae. 2004. https://www.commanster.eu/Commanster/Plants/Trees/Trees/Quercus.robur_Amanitaceae_Mycorrhizae.html
  174. Lindsey J.K. Ecology of Commanster. 2008. https://www.commanster.eu/Commanster/Fungi/Agaric/AAgaric/Entoloma.lividoalbum.html
  175. Link H.F. Observationes in ordines plantarum naturales. Dissertatio Ima // Magazin für die Neuesten Entdeckungen in der Gesammten Naturkunde, Gesellschaft Naturforschender Freunde zu Berlin. 1809. V. 3 (1). P. 3–42.
  176. Linnaeus C. Species plantarum, exhibentes plantas rite cognitas ad genera relatas, cum differentiis specificis, nominibus trivialibus, synonymis selectis, locis natalibus, secundum systema sexuale digestas. T. 2. Holm: L. Salm, 1753. 1200 p.
  177. López-García N., Romeralo C., Andersen C.B. et al. Metabarcoding reveals rhizosphere microbiome shifts between healthy and declining Quercus robur trees // Rhizosphere. 2025. V. 34. 101070. https://doi.org/10.1016/j.rhisph.2025.101070
  178. Luppi A.M., Gautero C. Ricerche sulle micorrize di Quercus robur, Q. petraea e Q. pubescens in Piemonte // Allionia. 1967. V. 13. P. 129–148.
  179. Marais L.J., Kotze J.M. Ectomycorrhizae of Pinus patula as biological deterrents to Phytophthora cinnamomea // South African J. Forestry. 1976. V. 99. P. 35–39.
  180. Marçais B., Desprez-Loustau M.L. European oak powdery mildew: impact on trees, effects of environmental factors, and potential effects of climate change // Ann. For. Sci. 2014. V. 71. P. 633–642.
  181. Marčiulynas A., Sirgedaitė-Šėžienė V., Menkis A. Fungi inhabiting stem wounds of Quercus robur following bark stripping by deer animals // Forests. 2023. V. 14 (10). 2077. https://doi.org/10.3390/f14102077
  182. Massalongo C. Nuovi miceti dell’agro Veronese // Nuovo Giornale Botanico Italiano. 1889. V. 21 (2). P. 161–170.
  183. Meotto F., Mello A., Nosenzo C., Vezzola V. Morphological and molecular characterization of Amanita caesarea ectomycorrhizas // Allionia. 1997. V. 35. P. 87–93.
  184. Meotto F., Nosenzo C., Fontana A. Le micorrize delle specie pregiate di Tuber. L’Informatore Agrario. 1995. V. 31. P. 41–45.
  185. Micheli P.A. Nova plantarum genera juxta Tournefortii methodum disposita. Florentia, 1729. 234 p.
  186. Milović M., Kovačević B., Drekić M. et al. Ectomycorrhizal diversity in a mature pedunculate oak stand near Morović, Serbia // iForest 2023. V. 16. P. 345–351. https://doi.org/10.3832/ifor4362-016
  187. Moesz G. von. Mykologiai közlemények. IV // Botanikai Közlemények. 1921. V. 19. P. 44–66.
  188. Moody S.A., Newsham K.K., Ayres P.G., Nigel P.D. Variation in the responses of litter and phylloplane fungi to UV-B radiation (290–315 nm) // Mycol. Res. 1999. V. 103 (11). P. 1469–1477. https://doi.org/10.1017/S0953756299008783
  189. Nagy L.G., Riley R., Tritt A. Comparative genomics of early-diverging mushroom-forming fungi provides insights into the origins of lignocellulose decay capabilities // Mol. Biol. Evol. 2015. V. 334. P. 959–970. https://doi.org/10.1093/molbev/msv337
  190. Nair M., Anchel M. An antibacterial quinone hydroquinone pair from the ascomycete, Nectria coryli // Tetrahedron Lett. 1972. V. 9. P. 795–796.
  191. Nair M., Anchel M. Frustulosinol, an antibiotic metabolite of Stereum frustulosum: revised structure of frustulosin // Phytochemistry. 1977. V. 16. P. 390–392.
  192. Naseeb S., James S.A., Alsammar H. et al. Saccharomyces jurei sp. nov., isolation and genetic identification of a novel yeast species from Quercus robur // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2017. V. 67 (6). P. 2046–2052. https://doi.org/10.1099/ijsem.0.002013
  193. Nees von Esenbeck C.D.G. System der Pilze und Schwämme. Würzburg, 1816. P. 1–329.
  194. Nitschke T. Pyrenomycetes Germanici. V. 2. Breslau, 1870. P. 161–320.
  195. Olariaga I., Moreno G., Manjón J.L. et al. Cantharellus (Cantharellales, Basidiomycota) revisited in Europethrough a multigene phylogeny // Fungal Div. 2017. V. 83. P. 263–292. https://doi.org/10.1007/s13225-016-0376-7
  196. Olchowik J., Hilszczańska D., Bzdyk R.M. et al. Effect of deadwood on ectomycorrhizal colonisation of old-growth oak forests // Forests. 2019. V. 10. P. 480. https://doi.org/10.3390/f10060480
  197. Ordynets O. New records of corticioid fungi with heterobasidia from Ukraine // Turkish Bot. J. 2012. V. 36. P. 590–602. https://doi.org/10.3906/bot-1109-1
  198. Oudemans C.A.J.A. Contributions á la flore mycologique des Pays-Bas. XVIII // Nederlandsch Kruidkundig Archief. 1902. V. 2 (3). P. 633–781.
  199. Palfner G. Charakterisierung und Identifizierung einiger Ektomykorrhizen an Eiche (Quercus robur L.) in Slowenien. Dipl. Thesis. München: Univ. Press, 1994.
  200. Palfner G., Agerer R. Sind die Ektomykorrhizen von Xerocomus subtomentosus und X. armeniacus unterscheidbar? // Z. Mykol. 1995. V. 61 (1). P. 45–58.
  201. Palfner G. Quercirhiza squamosa // Colour atlas of ectomycorrhizae. Schwabisch Gmund: Einhorn Verlag, 1995. Pl. 86.
  202. Palfner G. Xerocomus subtomentosus // Colour atlas of ectomycorrhizae. Schwabisch Gmund: Einhorn Verlag, 1995. Pl. 90.
  203. Palfner G., Agerer R. Die Ektomykorrhizen von Lactarius chrysorrheus und L. serifluus an Quercus robur // Sendtnera. 1996. V. 3. P. 119–136.
  204. Palfner G. Lactarius chrysorrheus // Colour atlas of ectomycorrhizae. Schwabisch Gmund: Einhorn Verlag, 1998. Pl. 121.
  205. Pârvu M. Bolile plantelor forestiere (Ghid practic de fitopatologie). Cluj-Napoca: Ed. Presa Universitară Clujeană, 2000.
  206. Persoon C.H. Commentarius, Schaefferi fungorum Bavariae indigenorum icones pictas, differentiis specificis etc. illustrans. Erlangen, 1800a. 130 p.
  207. Persoon C.H. Observationes mycologicae. V. 1. Leipzig, 1796. 116 p.
  208. Persoon C.H. Observationes mycologicae. V. 2. Leipzig, 1799. 106 p.
  209. Persoon C.H. Neuer versuch einer systematischen eintheilung der scwämme // Neues Mag. Bot. Ihrem Ganzen Umfange. 1794. V. 1. P. 63–80.
  210. Persoon C.H. Synopsis methodica fungorum. Gotting, 1801. 706 p.
  211. Phillips A., Alves A., Correia A., Luque J. Two new species of Botryosphaeria with brown, 1-septate ascospores and Dothiorella anamorphs // Mycologia. 2005. V. 97 (2). P. 513–529.
  212. Phillips D.H., Burdekin, D.A. Diseases of oak (Quercus spp.) // Diseases of forest and ornamental trees. L.: Palgrave Macmillan, 1982. https://doi.org/10.1007/978-1-349-06177-8_10
  213. Pilát A. Houby Ceskoslovenska vesvem zivotm’m prostredi. Praha: Academia, 1969. P. 90.
  214. Pillukat A. Vergleichende Untersuchungen der Ektomykorrhizen von Russula ochroleuca und Paxillus involutus an verschiedenen Baumarten. Dipl thesis. München: Univ. Press., 1991.
  215. Primahana G., Narmani A., Surup F. Five tetramic acid derivatives isolated from the Iranian fungus Colpoma quercinum // Biomolecules. 2021. V. 11. P. 783. https://doi.org/10.3390/biom11060783
  216. Przybył K. Fungi and minerals occurring in heartwood discoloration in Quercus robur trees // Acta Soc. Bot. Polon. 2006. V. 76 (1). P. 55–60.
  217. Raidl S., Scattolin L., Agerer R. Gyroporus castaneus (Bull.: Fr.) Quél. + Quercus robur L. // Descriptiona of Ectomycorrhizae. 2006. V. 9/10. P. 39–44.
  218. Ray J. Synopsis methodica stirpium brittanicum. L., 1690. 356 p.
  219. Rebentisch J.F. Index plantarum circum Berolinum sponte nascentium adiectis aliquot fungorum descriptionibus. Berlin, 1805. 46 p.
  220. Roumeguère C., Saccardo P.A. Reliquiae mycologicae Libertianae. Series Altera // Revue Mycologique (Toulouse). 1881. V. 3 (11). P. 39–59.
  221. Ruppius H.B. Flora Jenensis. Frankfourt; Leipzig, 1718. 472 p.
  222. Saccardo P.A. Fungi Italici autographice delineati a Prof. P.A. Saccardo // Michelia. 1877. V. 1 (1). P. 73–100.
  223. Saccardo P.A. Fungi novi ex herbario professoris Doct. P. Magnus Berolinensis // Michelia. 1878. № 1. P. 117–132.
  224. Saccardo P.A. Fungi veneti novi vel critici // Michelia. 1878. № 1. P. 133–221.
  225. Saccardo P.A. Notae mycologicae. Series X // Annales Mycologici. 1908. V. 6 (6). P. 553–569.
  226. Saccardo P.A. Sylloge Sphaeropsidearum et Melanconiearum omnium hucusque cognitarum // Sylloge Fungorum. 1884. V. 3. P. 1–840.
  227. Schäffer J.C. Fungorum qui in Bavaria et Palatinatu circa Ratisbonam nascuntur Icones. T. 4. Palm, 1774. 136 p.
  228. Shishlyannikova A.B., Zmitrovich I.V., Zarudnaya G.I. Micromycetes Rossicae: chorological and taxonomical notes. 6. Diatrypella quercina (Xylariales, Ascomycota) in Russia // Mikologiya i fitopatologiya. 2023. V. 57 (5). P. 378–382. https://doi.org/10.31857/S0026364823050082
  229. Schrader H.A. Spicilegium Florae Germanicae. Hannover, 1794. P. 1–194.
  230. Selochnik N.N., Pashenova N.V., Sidorov E. et al. Ophiostomatoid fungi and their roles in Quercus robur die-back in Tellermann forest, Russia // Silva Fennica. 2015. V. 49 (5). Art. 1328. https://doi.org/10.14214/sf.1328
  231. Sieber T.N., Kowalski T., Holdenrieder O. Fungal assemblages in stem and twig lesions of Quercus robur in Switzerland // Mycol. Res. 1995. V. 99 (5). P. 534–538. https://doi.org/10.1016/S0953-7562(09)80709-0
  232. Song J., Cui B.K. Phylogeny, divergence time and historical biogeography of Laetiporus (Basidiomycota, Polyporales) // BMC Evol. Biol. 2017. V. 17. P. 102. https://doi.org/10.1186/s12862-017-0948-5
  233. Sulzbacher M.A., Grebenc T., Garcia M.A. et al. Molecular and morphological analyses confirm Rhizopogon verii as a widely distributed ectomycorrhizal false truffle in Europe, and its presence in South America // Mycorrhiza. 2016. № 26 (5). P. 377–388.
  234. Sunhede S., Vasiliauskas R. Ecology and decay pattern of Phellinus robustus in old-growth Quercus robur // Karstenia. 2002. V. 42. P. 1–11.
  235. Sutton B.C. Tubakia nom. nov. // Trans. Brit. Mycol. Soc. 1973. V. 60 (1). P. 164–165.
  236. Sydow H., Sydow P. Novae fungorum species // Annales Mycologici. 1915. V. 13 (1). P. 35–43.
  237. Tanahashi Y., Takahashi T. Sterol constituents of Daedalea quercina L. (Fr.) // Bull. Chem. Soc. Japan. 1966. V. 39 (4). P. 848–849.
  238. Tarkka M.T., Grams T.E.E., Angay O. Ectomycorrhizal fungus supports endogenous rhythmic growth and corresponding resource allocation in oak during various below- and aboveground biotic interactions // Sci. Rep. 2021. V. 11. P. 23680. https://doi.org/10.1038/s41598-021-03132-y
  239. Tăut I., Moldovan M., Șimonca V. et al. Control of pathogen Erysiphe alphitoides present in forest crops in current climatic conditions // Microbiol. Res. 2024. V. 15. P. 1441–1458. https://doi.org/10.3390/microbiolres15030097
  240. Tedersoo L., Magurno F., Alkahtani S., Mikryukov V. Phylogenetic classification of arbuscular mycorrhizal fungi: new species and higher-ranking taxa in Glomeromycota and Mucoromycota (class Endogonomycetes) // MycoKeys. 2024. V. 107. P. 273–325. https://doi.org/10.3897/mycokeys.107.125549
  241. Tian M., Zhao P., Li G. In depth natural product discovery from the basidiomycetes Stereum species // Microorganisms. 2020. V. 8. P. e1049. https://doi.org/10.3390/microorganisms8071049
  242. Tournefort J.P. Institutiones Rei herbariae. Paris, 1700. 697 p.
  243. Trollip C., Carnegie A.J., Anderson C.M.T. et al. Response to the detection of Rugonectria castaneicola and Rugonectria wingfieldii sp. nov. on Quercus in Australia // Fungal Syst. Evol. 2024. V. 13. P. 123–130.
  244. Tulasne L.R. Note sur l’appareil reproducteur multiple des Hypoxylées (DC.) ou Pyrénomycètes (Fr.) // Ann. Sci. Naturell. Botanique. Sér. 4. 1856. V. 5. P. 107–118.
  245. Ţura D., Zmitrovich I.V., Wasser S.P. et al. Biodiversity of Heterobasidiomycetes and non-gilled Hymenomycetes (former Aphyllophorales) of Israel. Ruggell: A.R.A. Gantner Verlag K.-G., 2011. 566 p.
  246. Turczański K., Bełka M., Spychalski M. et al. Resistance inducers for the protection of pedunculate oak (Quercus robur L.) seedlings against powdery mildew Erysiphe alphitoides // Plants. 2023. V. 12. P. 635. https://doi.org/10.3390/plants12030635
  247. Velíšek J., Cejpek K. Pigments of higher fungi – a review // Czech. J. Food Sci. 2011. V. 29. P. 87–102.
  248. Verkley G.J.M., Crous P.W., Groenewald J.Z. et al. Myco-sphaerella punctiformis revisited: morphology, phylogeny, and epitypification of the type species of the genus Mycosphaerella (Dothideales, Ascomycota) // Mycol. Res. 2004. V. 108. P. 1271–1282.
  249. Voiry H. Classification morphologique des ectomycorhizes du chene et du hetre dans le nord-est de la France // Eur. J. Forest Pathol. 1981. V. 11. P. 284–299.
  250. Walde J.S.L. An oak seedling disease caused by Rosellinia quercina Hartig // Int. J. Forest Res. 1930. V. 4 (1). P. 1–6.
  251. Walter M., Stevenson O.D., Amponsah N.T. et al. Sensitivity of Neonectria ditissima to carbendazim fungicide in New Zealand // N.Z. Plant Prot. 2014. V. 67. P. 133–138. https://doi.org/10.30843/nzpp.2014.67.5743
  252. Weber R.W.S. Biology and control of the canker fungus Neonectria ditissima (syn. N. galligena) from a Northwestern European perspective // Erwerbs-Obstbau. 2014. V. 56. P. 95–107. https://doi.org/10.1007/s10341-014-0210-x
  253. Westendorp G.D. Quatrième notice sur quelques cryptogames récemment découvertes en Belgique // Bulletin des Séances de la Classe des Sciences, Academie Royale des Sciences, des Lettres et des Beaux Arts de Belgique. 1854. V. 21 (2). P. 229–246.
  254. Wolfe B.E., Pringle A. Geographically structured host specificity is caused by the range expansions and host shifts of a symbiotic fungus // ISME J. 2012. V. 6 (4). P. 745–755. https://doi.org/10.1038/ismej.2011.155
  255. Wu F., Zhou L.W., Yang Z.L. Resource diversity of Chinese macrofungi: edible, medicinal and poisonous species // Fungal Div. 2019. V. 98 (1). P. 1–76. https://doi.org/10.1007/s13225-019-00432-7
  256. Yurchenko E., Krasowska M., Kowczyk-Sadowy M. et al. Investigation of the possible antibacterial effects of corticioid fungi against different bacterial species // Int. J. Mol. Sci. 2025. V. 26. P. e3292. https://doi.org/10.3390/ijms26073292
  257. Zeb M., Lee C.H. Medicinal properties and bioactive compounds from wild mushrooms native to North America // Molecules. 2021. V. 26 (2). P. 251. https://doi.org/10.3390/molecules26020251
  258. Zmitrovich I.V., Wasser S.P., Ţura D. Wood-inhabiting fungi // Fungi from different substrates / Eds J.K. Misra, J.P. Tewari, S.K. Deshmukh, C. Vágvölgyi. N.Y.: CRC Press, Taylor and Francis group, 2015. P. 17–74.
  259. Zmitrovich I.V., Kalinovskaya N.I., Myasnikov A.G. Additional data report on the mycobiota of “The Northern Coast of the Neva Bay” Nature Sanctuary: xylotrophic Basidiomycetes of the park at the “Blizhnie Dubki” estate // Mikologiya i fitopatologiya. 2020. V. 54 (3). P. 228–232.
  260. Zmitrovich I.V., Bondartseva M.A., Arefyev S.P., Perelygin V.V. Professor Solomon P. Wasser and Medicinal Mushroom Science with a special attention to the problems of mycotherapy in oncology // Int. J. Med. Mushrooms. 2022a. V. 24 (1). P. 13–26. https://doi.org/10.1615/IntJMedMushrooms.2021041831
  261. Zmitrovich I.V., Perelygin V.V., Zharikov M.V. Nomenclature and rank correlation of higher taxa of eukaryotes: monograph. Moscow: INFRA-M, 2022b. 183 p.
  262. Zmitrovich I.V., Arefiev S.P., Kapitonov V.I. et al. Substrate ecology of wood-inhabiting basidiomycetes // Ecology of macro­fungi / Eds K.R.Sridhar, S.K. Desmukh. Boca Raton: CRC Press, 2023. P. 179–221.
  263. Zmitrovich I.V., Shishlyannikova A.B. Xylosapotrophic fungi associated with Quercus robur within the northeastern part of its range (Central and Northwestern Regions of Russia) // Biol. Bull. Rev. 2025. V. 15 (4). P. 572–589. https://doi.org/10.1134/S2079086425600018

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML
Download

Copyright (c) 2025 Russian Academy of Sciences

Согласие на обработку персональных данных

 

Используя сайт https://journals.rcsi.science, я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных») даю согласие на обработку персональных данных на этом сайте (текст Согласия) и на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика» (текст Согласия).