Prospects of Analysis and Methods of Determining Netosis in Neutrophils in Thermal Trauma. A Brief Review of the Literature

Cover Page

Cite item

Full Text

Abstract

A brief summary of key literature data on NETosis in thermal injuries, including methods for its analysis, as well as information on the biological effects of RNA oligonucleotides is presented.

About the authors

V. M. Zemskov

Vishnevsky National Medical Research Center of Surgery

Email: arturrego@yandex.ru
Moscow, Russia

M. S. Solovieva

Vishnevsky National Medical Research Center of Surgery

Moscow, Russia

M. N. Kozlova

Vishnevsky National Medical Research Center of Surgery

Moscow, Russia

N. S. Shishkina

Vishnevsky National Medical Research Center of Surgery

Moscow, Russia

A. N. Kulikova

Vishnevsky National Medical Research Center of Surgery

Moscow, Russia

V. S. Demidova

Vishnevsky National Medical Research Center of Surgery

Moscow, Russia

O. S. Vasiliev

Sechenov First Moscow State Medical University

Moscow, Russia

References

  1. Айтбаев К.А., Муркамилов И.Т., Фомин В.В. и др. Нетоз как фактор, способствующий развитию и прогрессированию сахарного диабета и его микрососудистых осложнений // Clin. Med. Russ. J. 2021. Т. 99. С. 11–12. http://dx.doi.org/10.30629/0023-2149-2021-99-11-12-608-614
  2. Асланова З.Д., Хизроева Д.Х., Солопова А.Г. и др. Клиническое значение определения внеклеточных ловушек нейтрофилов у женщин с онкогинекологическими заболеваниями // Акушерство, гинекол. и репрод. 2023. Т. 17 (6). С. 751–768. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2023.447
  3. Бицадзе В.О., Слуханчук Е.В., Хизроева Д.Х. и др. Внеклеточные ловушки нейтрофилов (NETs) в патогенезе тромбоза и тромбовоспалительных заболеваний // Вестник РАМН. 2021. Т. 76 (1). С. 75–85. https://doi.org/10.15690/vramn1395
  4. Воробьева Н.В. Нейтрофильные внеклеточные ловушки: новые аспекты // Вестн. Моск. ун-та. 2020. Сер. 16. Биология. Т. 75 (4). С. 210–225.
  5. Воробьева Н.В., Черняк Б.В. НЕТоз: Молекулярные механизмы, роль в физиологии и патологии // Биохимия. 2020. Т. 85 (10). С. 1383–1397.
  6. Гаспарян С.А., Топузов А.Г., Орфанова И.А. и др. Нейтрофильные внеклеточные ловушки: молекулярно-клеточные механизмы формирования, роль в развитии плацентарных нарушений и преэклампсии // Альманах клинической медицины. 2023. Т. 51 (8). С. 469–477. https://doi.org/10.18786/2072-0505-2023-51-050
  7. Глухарева А.Е., Афонин Г.В., Мельникова А.А. и др. Феномен НЕТоза как функциональная особенность нейтрофилов периферической крови и его возможная роль в патогенезе инфекционных и онкологических заболеваний // Соврем. онкол. 2022. Т. 24 (4). С. 487–493. https://doi.org/10.26442/18151434.2022.4.201786
  8. Долгушин И.И., Мезенцева Е.А. Нейтрофильные внеклеточные ловушки в борьбе с биопленкообразующими микроорганизмами: охотники или добыча? // Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. 2020. Т. 97 (5). С. 468–481. https://doi.org/10.36233/0372-9311-2020-97-5-9
  9. Долгушин И.И., Шишкова Ю.С., Савочкина А.Ю. Нейтрофильные ловушки и методы оценки функционального статуса нейтрофилов. М.: РАМН, 2009.
  10. Евглевский А.А., Садков Б.О. Динамика нейтрофильных экстрацеллюлярных сетей в условиях экспериментальной модели инфекционно-воспалительного раневого и ожогового процесса при естественной репарации // Соврем. пробл. науки и образования. 2019. № 3.
  11. Земсков В.М., Шилов В.М., Цыганова Н.И. и др. Некоторые механизмы защитного действия дрожжевой РНК при бактериальных инфекциях в эксперименте // ЖМЭИ. 1974. № 1. С. 32–37.
  12. Земсков А.М., Земсков В.М., Передерий В.Г. Коррекция вторичной иммунологической недостаточности с помощью дрожжевой РНК // ЖМЭИ. 1984. № 9. С. 673–676.
  13. Земсков В.М., Лидак М.Ю., Земсков А.М., Микстайс У.Я. Низкомолекулярная РНК. Получение, гидролиз и применение в медицине. Рига: Зинатне, 1985. 191 с.
  14. Земсков А.М., Передерий В.Г., Земсков В.М. и др. Иммунокорригирующие нуклеиновые препараты и их клиническое применение. Киев: Здоровья, 1994. 232 с.
  15. Макацария А.Д., Слуханчук Е.В., Бицадзе В.О. и др. Внеклеточные ловушки нейтрофилов: участие в процессах воспаления и дизрегуляции гемостаза, в том числе у пациентов с COVID-19 и тяжелой акушерской патологией // Акушерство, гинекол. и репродук. 2021. Т. 15 (4). С. 335–350. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2021.238
  16. Насонов Е.Л., Авдеева А.С., Решетняк Т.М. и др. Роль нетоза в патогенезе иммуновоспалительных ревматических заболеваний // Науч.-практ. ревматол. 2023. Т. 61 (5). С. 513–530. https://doi.org/10.47360/1995-4484-2023-513-530
  17. Нестерова И.В., Чудилова Г.А., Ковалева С.В. и др. Методы комплексной оценки функциональной активности нейтрофильных гранулоцитов в норме и патологии (Методические рекомендации для иммунологов-аллергологов, врачей и биологов клинической лабораторной диагностики). Краснодар: Кубанский гос. мед. ун-т, 2017. 50 с.
  18. Щербакова Э.Г., Земсков В.М., Соболев В.Р. и др. Гистохимическое изучение перитонеальных макрофагов, активированных нуклеинатом натрия // Антибиотики. 1981. № 3. С. 119–123.
  19. Brinkmann V., Reichard U., Goosmann C. et al. Neutrophil extracellular traps kill bacteria // Science. 2004. V. 303 (5663). P. 1532–1535.
  20. Chamardani T.M., Amiritavassoli S. Inhibition of NETosis for treatment purposes: friend or foe? // Mol. Cell Biochem. 2022. V. 477 (3). P. 673–688.
  21. Chomczynski P., Sacchi N. Single-step method of RNA isolation by acid guanidinium thiocyanate-phenol-chloroform extraction // Anal. Biochem. 1987. V. 162 (1). P. 156–159.
  22. Delgado-Rizo V., Martínez-Guzmán M.A., Iñiguez-Gutiérrez L. et al. Neutrophil extracellular traps and its implications in inflammation: an overview // Front Immunol. 2017. V. 8 (81). https://doi.org/10.3389/fimmu.2017.00081
  23. Donkel S.J., Wolters F.J., Ikram M.A. et al. Circulating myeloperoxidase (MPO)–DNA complexes as marker for neutrophil extracellular traps (NETs) levels and the association with cardiovascular risk factors in the general population // PLoS One. 2021. V. 16. P. e0253698. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0253698
  24. Douda D.N., Khan M.A., Grasemann H. et al. SK3 channel and mitochondrial ROS mediate NADPH oxidase independent NETosis induced by calcium influx // PNAS USA. 2015. V. 112. P. 2817–2822. https://doi.org/10.1073/pnas.1414055112
  25. Elrod J., Lenz M., Kiwit A. et al. Murine scald models characterize the role of neutrophils and neutrophil extracellular traps in severe burns // Front. Immunol. 2023. V. 14. P. 1113948. https://doi.org/10.3389/fimmu.2023.1113948
  26. Farrera C., Fadeel B. Macrophage clearance of neutrophil extracellular traps is a silent process // J. Immunol. 2013. V. 191. P. 2647–2656. https://doi.org/10.4049/jimmunol.1300436
  27. Heuer A., Stiel C., Elrod J. et al. Therapeutic targeting of neutrophil extracellular traps improves primary and secondary intention wound healing in mice // Front. Immunol. 2021. V. 12. P. 614347.
  28. Kaufman T., Magosevich D., Moreno M.C. et al. Nucleosomes and neutrophil extracellular traps in septic and burn patients // Clin. Immunol. 2017. V. 183. P. 254–262. https://doi.org/10.1016/j.clim.2017.08.014
  29. Klopf J., Brostjan C., Eilenberg W. et al. Neutrophil extracellular traps and their implications in cardiovascular and inflammatory disease // Int. J. Mol. Sci. 2021. V. 22. P. 559. https://doi.org/10.3390/ijms22020559
  30. Korkmaz H.I., Ulrich M.M.W., Vogels S. et al. Neutrophil extracellular traps coincide with a pro-coagulant status of microcirculatory endothelium in burn wounds. Wound Repair Regen // Publ. Wound Heal Soc. Eur. Tiss. Repair Soc. 2017. V. 25 (4). P. 609–617.
  31. Laggner M., Lingitz M.-T., Copic D. Severity of thermal burn injury is associated with systemic neutrophil activation // Sci. Rep. 2022. V. 12 (1654). P. 1–10. https://doi.org/10.1038/s41598-022-05768-w
  32. Li Y., Liu B., Fukudome E.Y. et al. Identification of citrullinated histone H3 as a potential serum protein biomarker in a lethal model of lipopolysaccharide-induced shock // Surgery. 2011. V. 150 (3). P. 442–451. https://doi.org/10.1016/j.surg.2011.07.003
  33. Masuda S., Shimizu S., Matsuo J. et al. Measurement of NET formation in vitro and in vivo by flow cytometry // Cytometry A. 2017. V. 91 (8). P. 822–829.
  34. Monteith A.J., Miller J.M., Maxwell C.N. Neutrophil extracellular traps enhance macrophage killing of bacterial pathogens // Sci. Adv. 2021. V. 7 (37). P. 1–16.
  35. Yarets Y.I., Rubanov L.N., Dundarov Z.A. Indicators of neutrophil functional activity as predictors of skin grafting results // Novosti Khirurgii. 2017. V. 25 (4). P. 373-381. https://doi.org/10.18484/2305-0047.2017.4.373
  36. Zang T., Fear M.W., Parker T.J. et al. Inflammatory proteins and neutrophil extracellular traps increase in burn blister fluid 24h after burn // Burns. 2024. V. 50. P. 1180-1191. https://doi.org/10.1016/j.burns.2024.02.026
  37. Zemskov V., Zemskov A. The immunomodulating effects of a low molecular weight RNA. Paris- Philadelphia- Tokyo- Melbourne: Harwood. Publ., 1992, 113 p.
  38. Zemskov V.M., Neymann V.V., Pronko K.N., Zemskov A.M. Global role of low molecular weight nucleic acids in biological systems // Glob. J. Med. Res. C Microbiol. Pathol. 2020. V. 20 (2). P. 5-10.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML
Download

Copyright (c) 2025 Russian Academy of Sciences

Согласие на обработку персональных данных

 

Используя сайт https://journals.rcsi.science, я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных») даю согласие на обработку персональных данных на этом сайте (текст Согласия) и на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика» (текст Согласия).