Bioactive compounds of medicinal plants with anti-herpes effect (part 1)

Cover Page

Cite item

Full Text

Abstract

Part 1 of the review summarizes data on antiviral activity of 24 medicinal plants from 18 families against herpes simplex virus type I and II. It is shown that active compounds of medicinal plants possessing different mechanisms of action can effectively inhibit the development of herpesvirus infection.

Full Text

ВВЕДЕНИЕ

Герпетическая инфекция является одной из самых распространенных вирусных инфекций на нашей планете. Согласно статистике, около 98% населения планеты контактировало с вирусом простого герпеса I или II типа и имеет антитела к нему [1]. По данным Всемирной организации здравоохранения (ВОЗ) герпесвирусная инфекция занимает второе место среди вирусных заболеваний человека, уступая лишь гриппу. Легкость инфицирования, пожизненная персистенция вируса в организме, развитие вторичного иммунодефицита и ряда других серьезных осложнений, делают актуальной разработку методов эффективной профилактики и лечения заболеваний, вызванных этим вирусом.

Многочисленные представители семейства вирусов герпеса человека (HHV) являются возбудителями различных заболеваний. Многие HHV-инфекции ассоциируются с вирусом простого герпеса I (HSV-1) и II типа (HSV-2). Другими представителями вирусов герпеса являются HHV-3 (вирус Varicella-Zoster), HHV-4 (вирус Эпштейна—Барр), HHV-5 (цитомегаловирус), HHV-6, HHV-7 и HHV-8. HSV-1 и HSV-2 — инкапсулированные дсДНК-вирусы семейства Herpesviridae.

Для лечения герпетической инфекции используют иммуномодуляторы, патогенетические и симптоматические средства, а также химиопрепараты, действующие непосредственно на вирусы [2]. Противовирусные лекарственные средства, применяемые в настоящее время против герпеса, имеют синтетическое (ацикловир, зовиракс, лавомакс, валтрекс, фамвир, иммунорикс) или растительное происхождение (гипорамин, панавир, алпизарин, госсипол, хелепин). «Золотым стандартом» противогерпетической химиотерапии является синтетический нуклеозид — ацикловир, ациклический аналог гуанозина. Механизм действия ацикловира основан на его специфичности в отношении вирусной тимидинкиназы, которая фосфорилирует ацикловир. ДНК-полимераза вируса ошибочно включает фосфорилированный ацикловир вместо естественного дезоксигуанозинтрифосфата в концевые участки новых вирусных ДНК, что обрывает процесс репликации вируса на любой стадии, и новые генерации вирусов не образуются.

Противовирусная химиотерапия способствует клиническому улучшению у большинства пациентов. Однако химические аналоги нуклеозидов не влияют на риск, частоту или тяжесть рецидивов после прекращения лечения. Значительной проблемой является также прогрессивное увеличение количества ацикловир-устойчивых штаммов вирусов. Применяемые в современной клинической практике методы иммунотерапии не дают гарантированного клинико-лабораторного эффекта при профилактике и лечении герпесвирусных заболеваний; кроме того, они небезопасны. В связи с этим очевидна необходимость поиска безопасных высокоэффективных противовирусных средств, оказывающих иммуномодулирующее действие.

Особый интерес вызывают лекарственные растения, применяемые в терапии заболеваний, вызванных вирусами герпетической группы. Фитотерапия при этом может быть как этиологической (направленной на снижение активности вируса), так и патогенетической (способствующей формированию иммунитета, ликвидации нежелательных последствий острого воспаления, сопутствующего инфекции). Выбор средств фитотерапии для лечения герпесвирусной инфекции разнообразен. Это, прежде всего, лекарственные растения, обладающие противовоспалительным, обезболивающим и антитоксическим эффектами, а также эфирные масла и другие компоненты, обладающие антивирусным действием. Препараты растительного происхождения благодаря наличию различных биологически активных веществ мягко воздействуют на организм, восстанавливают нарушенные функции иммунного ответа и возможны к применению у пациентов всех возрастных групп. Главным их преимуществом является малая токсичность и возможность длительного применения без риска возникновения существенных побочных эффектов, использование в составе поддерживающей и курсовой терапии, а также для профилактики заболевания.

На нынешний день практическая медицина обладает достаточно внушительным арсеналом противовирусных средств, способных подавлять репродукцию вируса на любой стадии процесса. Однако, несмотря на определенные успехи, достигнутые в противовирусной химиотерапии, появление резистентности вируса к тем или иным противовирусным лекарственным средствам является серьезной проблемой. Изучение растительных препаратов, обладающих антивирусными свойствами, показало, что устойчивости вирусов к данным препаратам, не наблюдается [3]. Большое разнообразие биологически активных соединений, находящихся в растениях, позволяет рассчитывать на возможность получения новых высокоактивных препаратов, обладающих сложным механизмом действия (противовирусным, противовоспалительным и иммуномодулирующим) и способных блокировать вирулентность вирусов.

МЕХАНИЗМЫ ДЕЙСТВИЯ

Растительные экстракты привлекают большое внимание при поиске альтернативных соединений с противогерпетической активностью. Препараты растительного происхождения по сравнению с химическими соединениями являются практически нетоксичными и обладают разными механизмами действия, позволяющими эффективно бороться с вирусной инфекцией [4—6].

Основой противовирусной терапии является воздействие на вирус или его составляющие компоненты на той или иной стадии репродукции (на стадиях: неспецифическая и специфическая адсорбция, проникновение вируса в клетку и освобождение внутреннего компонента вируса; экспрессия вирусного генома; сборка и выход вирусных частиц).

Неспецифическая стадия блокирования адсорбции вируса, в первую очередь, связана с электростатическими взаимодействиями между вирусом и клеткой, поэтому использование полисахаридов и некоторых пептидов, выделенных из растений и несущих большой отрицательный заряд, эффективно ингибирует адсорбцию вирусов. Не менее интересной группой химических соединений, подавляющих адсорбцию вирусов, являются тритерпеновые сапонины, которые в силу своих структурных особенностей, связываясь с холестерином мембраны, способны изменять пространственную структуру мембраны клетки [7]. Другой группой веществ, блокирующих репликацию вирусов, являются полифенольные соединения, не только изменяющие заряд поверхности клетки, но и препятствующие специфической сорбции вируса на рецепторы.

После проникновения вириона в клетку происходит целый комплекс превращений вируса, смысл которых заключается в удалении вирусных защитных оболочек, препятствующих экспрессии вирусного генома. Этот процесс сопровождается рядом характерных особенностей: исчезает инфекционность вируса, появляется чувствительность к нуклеазам, возникает устойчивость к нейтрализующему действию антител. Основной группой растительных соединений, способных подавлять репродукцию вирусов на стадии освобождения внутреннего компонента вируса, являются аналоги силимарина, лютеолина и кверцетина [8—10].

Репродукция вирусов на этапе экспрессии вирусного генома и сборка вирионов успешно блокируется двумя основными группами растительных соединений: ингибиторами РНК полимераз и ингибиторами посттрансляционных модификаций белков. Механизм действия таких веществ связан с образованием ацил-ферментных производных и основан на блокировании одной из трех основных областей, критичных для активности аспарагиновой протеазы вируса: каталитическое ядро фермента, содержащее пару Asp-Thr/Ser-Gly триад, мобильная flap-область и домен димеризации на N- и С-концах протеазы [11—13].

Блокировать механизм выхода вируса из инфицированной клетки сложно. Одним из способов является использование ингибиторов ферментативной активности вируса, участвующей в почковании вируса. К соединениям с антинейраминидазным действием «имитирующим» структуру натуральных субстратов каталитического сайта нейраминидазы, «привлекает» вирус к большему взаимодействию с ними, относятся коричные и оксикоричные кислоты, галлаты и др. [14, 15].

Эти соединения ингибируют специфические процессы в вирусном цикле репликации [16], проникновение вируса в клетки-мишени [17], а также ингибируют экспрессию вирусных генов и белков, подавляют NF-kB активность [18], что может помочь предотвратить распространение вирусов.

В настоящее время идентифицированные соединения с антивирусной активностью растительного происхождения, как правило, принадлежат к терпенам (эфирные масла), полифенолам, в том числе флавоноидам, пептидам, полисахаридам. Также показано, наличие противовирусной активности против двух серотипов HSV для стероидов, сапонинов, дубильных веществ, алкалоидов, лигнанов, проантоцианидинов, хинонов и тиосульфинатов.

Эфирные масла представляют собой смесь летучих веществ, которые могут содержать более 150 различных химических веществ (альдегиды, кетоны, спирты, фенолы, терпены, сесквитерпены, сложные эфиры, лактоны и простые эфиры). Они способны ингибировать проникновение вируса в клетку и подавлять выработку гликопротеинов HSV-1 (gC) и HSV-2 (gG), что было установлено для производных спирокеталенолового эфира, выделенных из экстракта корневищ пижмы обыкновенной (Tanacetum vulgare) [19]. Клетки Vero после инкубации с HSV и эфирными маслами, полученными из растений семейств Яснотковые (Labiatae) и Вербеновые (Verbenaceae), в течение 48—72 часов резко снижали титр вирусов HSV-1 и HSV-2 [20].

Полифенолы являются естественными антиоксидантами. Это большая группа разнообразных в химическом отношении веществ различного спектра действия, широко распространенных в природе как в виде гликозидов, так и свободных агликонов. Антивирусная активность полифенолов, в целом, связана с прямой инактивацией вируса и/или ингибированием связывания вируса с клетками.

Госсипол (экстракт семян и корней хлопчатника лохматого) представляет собой природный полифенол, который имеет как прямое инактивирующее воздействие на вирусы, взаимодействуя с оболочечными белками вирусных частиц, так и опосредованное, через механизмы индукции интерферонов [21].

Куванон X, активное соединение производного полифенола стильбена, обнаруженное в этом растении, проявляет противовирусную активность против HSV на разных стадиях инфекционного процесса, предотвращая адсорбцию и проникновение, а также экспрессию ранних и поздних генов HSV-1, и репликацию ДНК HSV-1 [22].

Гипорамин, представляющий собой экстракт на основе полифенольного комплекса, полученный из листьев облепихи крушиновидной, блокирует синтез вирусной ДНК [4].

Полисахариды — общее название класса сложных высокомолекулярных углеводов, молекулы которых состоят из десятков, сотен или тысяч мономеров — моносахаридов. Механизмы связывания антивирусных агентов с вирионами и взаимодействия вируса с клеткой хозяина в присутствии полисахарида, вероятно, имеют отношение к его связыванию с гликопротеидами вирусной оболочки, которые затем препятствуют взаимодействию вируса с клеточной плазматической мембраной [23]. Блокирование прикрепления вируса к клетке хозяина препятствует продуктивному инфекционному циклу и внедрению вирусного генома в клетку [14]. Показано, что содержащий гексозные гликозиды экстракт побегов паслена клубневидного, блокирует синтез вирусной ДНК [24].

Флавоноиды — это группа полифенольных соединений, в основе которых лежит дифенилпропановый скелет. В ряде работ показано, что флавоноиды, изолированные из сумаха сочного (Rhus succedanea) и из гарцинии многоцветковой (Garcinia multiflora), проявляют антивирусный эффект в отношении вирусов герпеса (HSV-1, HSV-2, вируса герпес-зостер) [25].

Противовирусное действие флавоноидов связано с разнообразием их химических структур. Функциональные группы (в основном фенильные кольца, гидроксильные группы и связанные с ними сахарные молекулы) и их расположение играют важную роль в индуцировании противовирусных эффектов. Механизм антивирусного действия флавоноидов изучен недостаточно. Однако известно, что флавоноиды и фенилпропаноиды (розмариновая кислота, низкомолекулярные гликозидобразующие компоненты хлорогеновой кислоты, кофейной кислоте и их производные) подавляют репликацию вирусов [26].

Хелепин, представляющий собой экстракт леспедецы двуцветной (Lespedeza bicolor), содержащий сумму флавоноидов, проявляет вирулицидную активность при местном применении [6].

Можно также упомянуть и другие соединения, извлеченные из растений, обладающие противовирусным действием. Так, например, Самарангенин Б, выделенный из листьев морской лаванды (Limonium sinense), подавляет экспрессию гена HSV-1α [27]. Исследование ингибирующего действия этанольных экстрактов морской лаванды Limonium sinense (Girard) Kuntze на репликацию HSV-1 показало, что основной его компонент самарангенин Б (Sam B), значительно подавляет размножение HSV-1 в клетках Vero без явной цитотоксичности [27]. Проведенные эксперименты позволили предположить, что этот противовирусный эффект не связан с блокированием адсорбции вируса. Sam B прерывает образование мультибелкового комплекса альфа-транс-индуктор/C1/Oct-1/GARAT. Механизмы противовирусного действия Sam B, по-видимому, опосредованы, по крайней мере, частично, ингибированием экспрессии альфа-генов HSV-1, включая экспрессию генов ICP0 и ICP4, блокированием бета-транскриптов, таких как мРНК ДНК-полимеразы, и остановкой синтеза ДНК HSV-1 и экспрессии структурных белков в клетках Vero.

Ятеин, выделенный из кипарисовика туполистного (Chamaecyparis obtusa (Siebold et Zucc.) Endl.), ингибирует репликацию HSV-1 на клетках HeLa без заметного цитотоксического эффекта, экспрессию альфа-генов HSV-1, включая экспрессию генов ICP0 и ICP4, а также остановку синтеза ДНК и экспрессию структурных белков [28, 29]. Ятеин препятствует образованию мультибелкового комплекса альфа-транс-индукционный фактор/C1/Oct-1/GARAT.

Птерокарнин — соединение, выделенное из птерокарии стеноптеровидной (Pterocarya stenoptera Kunth.) препятствует адгезии и проникновению HSV-2 в клетки хозяина [30]. Ятеин, выделенный из кипарисовика туполистного (Chamaecyparis obtusa), ингибирует репликацию HSV-1 в клетках HeLa без заметного цитотоксического эффекта [29], а также предотвращает экспрессию гена HSV-1α, наряду с экспрессией генов ICP0 и ICP4, останавливая репликацию ДНК HSV-1 и экспрессию структурных белков в клетках HeLa [30]. Глюкоэватромонозид и карденолид из наперстянки шерстистой (Digitalis lanata Ehrh.), изменяют клеточный электрохимический градиент и препятствуют пролиферации HSV-1 и HSV-2 в клетках [31]. Водный экстракт из рододендрона ржавого (Rhododendron ferrugineum L.), экстракт из миротамнуса (Myrothamnus flabellifolia Welw.), обогащенные проантоцианидином, предотвращают развитие инфекции HSV-1 [32—34]. Водный экстракт, полученный из надземных частей рододендрона ржавого (Rhododendron ferrugineum), препятствует прикреплению и проникновению вируса HSV-1 (штамм 17 synþ) в клетки хозяина при концентрациях более 1 мг/мл и 25 мг/мл [33]. Спиртовой экстракт из листьев эвкалипта кальмадульского (Eucalyptus camaldulensis Dehnh.) предотвращает инфекцию HSV-1 и HSV-2 во время и после заражения культуры клеток Vero. Противовирусная активность против HSV-2 проявлялась путем ингибирования проникновения вирусов и последующих инфекционных процессов [37]. Ксантотоксин, бергаптен, императорин, феллоптерин, изоимператорин, императорин и феллоптерин, выделенные из дихлорметанового экстракта плодов дягиля (дудника) лекарственного (Angelica archangelica L.), были исследованы как противовирусные агенты против HSV-l. Императорин и феллоптерин оказались наиболее эффективными, минимизировали репликацию HSV-1 и снижали титр вируса [36].

Также известно, что некоторые алкалоиды растений (йохимбин, винкамин, скополамин, капсаицин, аллантоин, октопамин, синефрин, колхицин и тригонеллин) оказывают выраженное противовирусное действие на HSV-1. Было показано, что йохимбин, винкамин и атропин ингибируют и снижают цитопатогенный эффект (ЦПЭ), вызванный вирусом HSV-1 в культуре клеток MDBK с ингибирующей концентрацией 0.8 мкг/мл, а ингибирующая концентрация тригонеллина и капсаицина составляла 0.4 мкг/мл. Алкалоиды скополамин, аллантоин, октопамин, синефрин, колхицин и тригонеллин в концентрации 1.6 мкг/мл также проявили значительную ингибирующую активность в отношении HSV-1 и снижали ЦПЭ вируса [37].

В экспериментах на клетках роговицы глаза кролика было показано, что манзамин А в концентрации 1 мкМ эффективно ингибирует репликацию HSV-1. Ацикловир, как препарат сравнения, продемонстрировал аналогичную активность в более высокой концентрации 50 мкМ. Более того, манзамин А уменьшил выделение инфекционных вирусов в 1011 раз при подсчете бляшек, снижал транскрипцию гена ICP0, согласно данным полимеразной цепной реакции (ПЦР). Среднеэффективная HSV-1-вирусингибирующая концентрация (IC50) манзамина А составила 5.6 мкМ [38].

Раннее лечение на 0-й день инфекции алкалоидом тетрандрином предотвращало развитие герпетического кератита (HSK), вызываемого вирусом HSV-1, у 55% особей мышей линии BALB/c. Введение тетрандрина на 7-й день инфекции было гораздо менее эффективным — снижение признаков HSK-инфекции было выявлено только у 8.5% мышей. Дальнейший анализ показал, что тетрандин не оказывает прямого противовирусного действия, а уменьшение заболеваемости HSK обусловлено снижением воспалительных реакций [39].

В другом исследовании на зостериформной модели было показано, что внутрижелудочное введение мышам 6-O-бутаноил кастаноспермина задерживало развитие поражений, вызванных штаммом SC-16 вируса HSV-1. Кроме того, количество вируса, выделенного из мозга мышей, также уменьшилось. По сравнению с контрольной группой, которой не проводили лечение, вирусная нагрузка в тканях мозга животных, получивших профилактику за 2 дня до заражения, была меньше в 100 раз. IC50 6-O-бутаноил кастаноспермина против HSV-1 составляла 15 ± 4.8 мкМ при введении до заражения и 37 ± 5.5 мкМ — при введении после заражения [40].

Алкалоид гомохаррингтонин в концентрации от 500 до 1000 нМ также подавлял репликацию HSV-1, что было подтверждено в экспериментах на клетках Vero. В основе его механизма действия лежит снижение экспрессии ICP8, одноцепочечного ДНК-связывающего белка (SSB) HSV-1, который необходим для вирусной репликации. Гомохаррингтонин, синтетический аналог алкалоида, также снижал активность eLF4E-белка (eIF4E является кэп-связывающим белком, который присоединяется к мРНК в сочетании с белками геликаза eIF4A и белок-скаффолдинг eIF4G, облегчая рекрутирование рибосом и начало процесса трансляции белка) [41], что указывает на то, что алкалоид ингибирует HSV-1 путем снижения степени фосфорилирования эндогенного и экзогенного eIF4E [42].

Наиболее выраженным действием обладают протобербериновые алкалоиды, содержащиеся в ряде лекарственных растений (сем. Berberidoideae и т. д.). На клетках Vero показана противовирусная активность у алкалоида берберина, выделенного из корневища коптиса китайского (Coptis chinensis Franch.), в отношении вируса HSV-1 и HSV-2. Берберин тормозит синтез вирусного белка слияния HSV, который необходим для проникновения в клетки хозяина во время инфекции. Эти белки слияния gB и gE также известны как поздние генные продукты вируса. IC50 берберина в отношении HSV-1 и HSV-2 составили 8.2 ± 1.2 × 10–2 и 8.2 ± 1.2 × 10–2 мг/мл соответственно [43].

β-карболиновые алкалоиды (гармин и соединение-4), выделенные из семян гармалы обыкновенной (Peganum harmala L.) семейства Zygophyllaceae, показали выраженную ингибирующую активность в отношении HSV-1 и HSV-2. Гармин и соединение-4 эффективно уменьшали бляшкообразующие единицы HSV-1 и HSV-2 с IC50, равной 4.06 ± 0.68 и 2.12 ± 0.14 мкМ соответственно. Цитотоксическая концентрация (CC50) для гармина и соединения-4 составили 87.15 ± 0.79 и 74.17 ± 0.62 мкМ соответственно [44]. Экстракты, полученные из гармалы обыкновенной (P. harmala), показали противовирусную активность против HSV-2. В основе механизма действия лежит способность активных компонентов растения нарушать проникновение вируса в клетки [45]. На клетках Vero у метанольного экстракта семян P. harmala в отношении HSV-2 были определены IC50 и селективный индекс (SI), равные 161 и 13.2 мкг/мл соответственно [46]. Экстракт растения оказывал вирусоцидное действие как при проникновении вирусов, так и при высвобождении новообразованных вирионов, при этом защитного эффекта на клетки не наблюдалось.

Произрастающие на территории ЕС и РФ лекарственные растения, обладающие противогерпетической активностью, представлены далее, а общие сведения о них суммированы в табл. 1.

 

Таблица 1. Список активных компонентов лекарственных растений, произрастающих в Европе и РФ, обладающих противовирусной активностью в отношении вируса простого герпеса

Table1. List of active compounds of European and Russian medicinal plants with antiviral activity against herpes simplex virus

Название

Species

Семейство

Family

Тип исследования

Type of the study

Тип вируса

Virus type

Компоненты

Compound

Механизм

Action

Ссылки

Reference

Алое настоящее / Aloe vera

Xanthorrhoeacea

in vitro

HSV-1 /

HSV-2

Полисахариды, эмодин, антрахинон

Polysaccharides, emodin, anthraquinone

Ингибирование репликации вирусной оболочки

Inhibition of viral envelope replication

[52, 53]

Базилик душистый / Ocimum basilicum

Lamiaceae

HSV-1 /

HSV-2

Метанольный и дихлорметановый экстракты

Methanol and dichloromethane extracts

Ингибирование активности вируса на различных этапах цикла размножения вируса

Inhibition of virus activity at different stages of the virus reproduction cycle

[56]

Береза повислая / Betula pendula

Betulaceae

HSV-1

Тритерпены, бетулин, лупеол и бетулиновая кислота

Triterpenes, betulin, lupeol, betulinic acid

[57]

Гармала обыкновенная / Peganum harmala

Nitrariaceae

HSV-2

Гармин

Garmin

Ингибирование проникновения вируса в клетку, вирусоцидное действие при высвобождении новообразованных вирионов

Inhibition of virus entry into the cell, virucidal action on release of new virions

[46, 47]

Герань кроваво-красная / Geranium sanguineum

Geraniaceae

HSV-1/

HSV-2

Полифенольные соединения

Polyphenolic compounds

Подавление репликации вируса

Suppression of virus replication

[59]

Горечавка жёлтая / Gentiana lutea

Gentianaceae

Гентиозид

Gentioside

Нет свед.

No data

[60]

Дудник лекарственный / Angelica archangelica

Apiaceae

HSV-1

Императорин, фелоптерин

Imperatorin, felopterin

Подавление репликации вирионов

Suppression of virus replication

[61]

Имбирь обыкновенный / Zingiber officinale

Zingiberaceae

HSV-1/

HSV-2

Квитерпены (цингиберен, бисаболен, сесквифелландрен, куркумен)

Quiterpenes (zingiberene, bisabolene, sesquiphellandrene, curcumen)

Ингибирование репликации до взаимодействия вириона с клеткой

Inhibition of replication prior to virion-cell interaction

[62]

Инжир / Ficus carica

Moraceae

HSV-1

Гексановый и гексан-этилацетатный экстракты

Hexane and hexane-ethyl acetate extracts

Ингибирование проникновения, адсорбции и репликации вируса

Inhibition of virus penetration, adsorption and replication

[64]

Камелия китайская / Camellia sinensis

Theaceae

in vitro

HSV-1/

HSV-2

Галлат эпикатехина

Gallate epicatechin

Ингибирование адсорбции вируса путём связывания вирусного гликопротеина

Inhibition of virus adsorption by binding viral glycoprotein

[65, 66]

Кипарисовик туполистный / Chamaecyparis obtuse

Cupressaceae

HSV-1

Ятеин

Jatein

Нарушение синтеза вирусной ДНК и структурных белков (ингибирование экспрессии генов HSV-1 ICP0 и ICP4)

Disruption of viral DNA and structural protein synthesis (inhibition of HSV-1 ICP0 and ICP4 gene expression)

[28, 29]

Кипрей узколистный / Epilobium angustifolium

Onagraceae

HSV-2

Экстракт ферментированных листьев

Fermented leaf extract

Ингибирующая активность по отношению к вирионам

Virion inhibition

[25, 49]

Копеечник альпийский / Hedysarum alpinum

Копеечник желтованый / Hedysarum flavescens

Fabaceae

HSV-1/

HSV-2

Мангиферин

Mangiferin

Подавление проникновения вируса в клетку

Suppression of virus entry into the cell

[68]

Коровяк обыкновенный / Verbascum thapsus

Scrophulariaceae

HSV-1

Компоненты метанольного экстракта листьев

Components of leaf methanol extract

Вирусингибирующая активностью

Virus inhibitory activity

[71]

Куркума длинная / Curcuma longa

Zingiberaceae

HSV-1/

HSV-2

Куркумин

Curcumin

Снижение репликации HSV-1 путём подавления вирусной VP16-опосредованного рекрутмента РНК-полимеразы II.

Подавление процесса адсорбции вирионов HSV-1/ HSV-2 к клеткам

Reduction of HSV-1 replication by inhibition of viral VP16-mediated recruitment of RNA polymerase II.

Suppression of adsorption of HSV-1/ HSV-2 virions to cells

[69, 70]

Лопух большой / Arctium lappa

Asteraceae

HSV-1

Арктигенин, кофейная и хлорогеновая кислоты

Arctigenin, caffeic acid and chlorogenic acid

Подавление репликации вируса

Suppression of virus replication

[66, 67]

Манго индийское / Mangifera indica

Anacardiaceae

in vitro /

in vivo

HSV-1

Мангиферин, тетрагидроксипирролидоновый сапонин

Mangiferin, tetrahydroxypyrrolidone saponin

Для HSV-1: Подавление репликации путём связывания основных оболочечных белков

Для HSV-2: Подавление происходит на поздних этапах репликации

For HSV-1: Suppression of replication by binding of major envelope proteins

For HSV-2: Suppression occurs at late stages of replication

[75, 76]

Манжетка обыкновенная / Alchemilla vulgaris

Rosaceae

in vitro

HSV-1 /

HSV-2

Флаваноиды

Flavanoids

Вирусингибирующее действие

Virus inhibitory effect

[77]

Мелисса лекарственная / Melissa officinalis

Lamiaceae

HSV-1 /

HSV-2

Монотерпенальдегиды цитраль a, цитраль b и цитронеллаль

Подавление репликации, препятствует адсорбции вирионов

Suppression of virus replication, suppression of virion adsorption

[80—82]

Мирт обыкновенный / Myrtus communis

Myrtaceae

HSV-1

Гидроспиртовой экстракт

Hydroalcoholic extract

Вирусингибирующее действие

Virus-inhibiting effect

[83]

Морская лаванда / Limonium sinense

Plumbaginaceae

HSV-1

Самарангенин Б

Samarangenin B

Подавление репликации вирионов (подавление экспрессии вирусной ДНК и снижая продукцию гликопротеинов B (gB), gC, gD, gG и белка ICP 5). Подавление экспрессии мРНК gB

Suppression of virion replication (suppressing viral DNA expression and reducing production of glycoprotein B (gB), gC, gD, gG and ICP 5 protein). Suppression of gB mRNA expression

[27]

Мята душистая / Mentha suaveolens

Lamiaceae

HSV-1

Эфирные масла

Essential oils

Ингибирование внутриклеточного метаболизма вируса

Inhibition of intracellular virus metabolism

[81]

Мята перечная / Mentha piperita

Lamiaceae

HSV-1

Эфирные масла

Essential oils

Подавление репликации и блокирование адсорбции вируса

Suppression of replication and blocking of virus adsorption

[84]

Примечание. HSV-1 — вирус простого герпеса 1 типа; HSV-2 — вирус простого герпеса 2 типа.

Note. HSV-1 — herpes simplex virus type 1; HSV-2 — herpes simplex virus type 2.

 

Алоэ настоящее (Aloe vera (L.) Burm.f.) в своем составе имеет широкий спектр веществ, таких как эмодин и алоээмодин, которые проявляют противовирусную активность против двух серотипов HSV [47]. Экстракт A. vera ингибировал HSV-1 с IC50, равной 10 000 ± 55 мкг/мл, CC50 — 20 000 ± 94 мкг/мл и SI — 2.0 [48]. Гель, активным компонентом которого является A. vera, в концентрации от 0.2 до 5% подавлял рост HSV-I и не проявлял цитотоксичности [49]. Экстракт в концентрациях 2—5% оказывал выраженное влияние на уменьшение количества вирусных бляшек после заражения клеток вирусом. Противовирусная активность гелей, содержащих экстракт A. vera, и ацикловира были сопоставимы. Горячий глицериновый экстракт A. vera способен ингибировать HSV-2 со значениями IC50, CC50 и селективный индекс (SI), равными 428 мкг/мл, 3238 мкг/мл и 7.56 соответственно [50].

Ингибирующий эффект A. vera в отношении HSV-1 может быть обусловлен полисахаридами, фенолами, полифенолами, эмодином и антрахиноном [32, 49, 51]. Показано, что эмодин ингибирует репликацию оболочечных вирусов [50].

Водный и этаноловый экстракты Ocimum basilicum L. ингибируют оба серотипа HSV. Значения EC50 и SI водных экстрактов в отношении HSV-1 составляют 90.9 мг/мл и 16.2, а для HSV-2 — 51.4 мг/мл и 28.6 соответственно. Этаноловый экстракт проявил ингибирующую активность в отношении HSV-1. EC50 (среднеэффективная концентрация) и SI составили 108.3 мкг/мл и 6.3 [52].

На клетках Vero была продемонстрирована противовирусная активность базилика разных видов — дихлорметановых и метаноловых экстрактов туласи Ocimum sanctum L., Ocimum basilicum L. и Ocimum americanum L. [53] Терапевтический индекс (ТI) дихлорметанового экстракта O. americanum при обработке клеток до заражения составил 1,865, а метанольного экстракта O. sanctum — 1.644. При обработке клеток метанольными экстрактами O. americanum, O. sanctum и O. basilicum с ТI 2.345, 2.473 и 1.563 соответственно, а дихлорметановыми экстрактами O. americanum и O. basilicum — 2.623 и 1.835 соответственно, наблюдали подавление адсорбции вируса HSV-2. Метанольный экстракт O. americanum и дихлорметановый экстракт O. basilicum после адсорбции вируса ингибировали HSV-1F с ТI 1.63 и 2.215 соответственно. Ингибирующее действие экстрактов на HSV-2G после адсорбции вируса было достаточно высоким для дихлорметанового экстракта O. sanctum и метанольного экстракта O. sanctum с ТI 10.003 и 29.395 соответственно. При обработке клеток дихлорметановым и метанольным экстрактами O. americanum наблюдали снижение титров вирусов в 8.0 и 10.8 раза. Кроме того, было продемонстрировано зависящее от времени вирусоцидное действие экстракта на вирусные частицы: прямое ингибирование HSV-1F и HSV-2G проявлялось в 100% уменьшении количества бляшек после обработки дихлорметановым и метаноловым экстрактами O. americanum. Таким образом, дихлорметановый и метаноловый экстракты O. sanctum, O. basilicum и O. americanum проявили антивирусную активность на различных этапах цикла размножения вируса.

Экстракт коры березы повислой (Betula pendula Roth), содержащий тритерпены, бетулин, лупеол и бетулиновая кислота, показал высокие уровни противовирусной активности против вирусов простого герпеса HSV-1 со значениями IC50 в диапазоне от 0.2 до 0.5 мкг/мл [54]. Под влиянием всех исследованных веществ вирусы, чувствительные к ацикловиру и кинические изоляты, устойчивые к нему штаммы HSV-1 были достоверно угнетены. Добавление веществ к неинфицированным вирусом герпеса клеткам до заражения или во время внутриклеточной репликации слабо влияли на размножение вируса. Все вещества проявляли противовирусную активность, когда вирусы предварительно обрабатывали ими до заражения клеток.

Экстракты, полученные из гармалы обыкновенной (Peganum harmala L.), проявили противовирусную активность против HSV-2. В основе механизма действия лежит способность активных компонентов растения нарушать проникновение вируса в клетки [55]. На клетках Vero у метанольного экстракта семян P. harmala в отношении HSV-2 были определены IC50 и SI, равные 161 и 13.2 мкг/мл соответственно [51]. Экстракт растения оказывал вирусоцидное действие как при проникновении вирусов, так и при высвобождении новообразованных вирионов, при этом защитного эффекта на клетки не наблюдали.

В культурах клеток Vero и человеческой эмбриональной кожно-мышечной ткани (E6SM) у экстракта герани кроваво-красной (Geranium sanguineum L.) показано дозозависимое ингибирование вируса HSV-1 и HSV-2 [46]. Спирто-водный экстракт вызывал значительный противовирусный эффект только при добавлении к клеткам после инфицирования. При добавлении к клеткам до инфицирования, во время адсорбции или проникновения вируса противовирусного эффекта не обнаружили. Водный экстракт из корней растения оказался наименее токсичным для клеточных культур и значительно подавлял репликацию HSV-1 и HSV-2 (EC50 = 3.6—6.2 мкг/мл), что проявлялось в снижении ЦПЭ, индуцируемого вирусом, и защите клеток в МТТ-тесте (метилтиазолил тетразолиевый тест). Ингибирование было дозозависимым, штаммоспецифичным и зависело от инокулята вируса. В эксперименте на морских свинках-альбиносах экстракт тормозил развитие герпетических пузырьков после первичного заражения вирусом HSV-1 (штамм Kupka). Ингибирующее действие экстракта на репликацию вируса простого герпеса связано с богатым содержанием в нем полифенольных соединений.

Показано наличие вирус-ингибирующего эффекта у суммы ксантоновых гликозидов из корней горечавки желтой Gentiana lutea L. (в концентрации 100 мкг/мл ингибирует 1 ТЦД50 (50% тканевая цитопатегенная доза) вируса герпеса (штаммы 1С, 9С, 64) [56]. Данное противовирусное действие обусловлено наличием биологически активного вещества гентиозида — ксантонового гликозида изогентизина.

Дихлорметановый экстракт плодов дудника лекарственного (Angelica archangelica L.) и пять фуранокумаринов: ксантотоксин, бергаптен, императорин, феллоптерин и изоимператорин, а также смесь императорина и феллоптерина, были исследованы как потенциальные противовирусные агенты против вируса герпеса. Показано, что наибольшую активность проявили экстракт плодов, императорин, фелоптерин и смесь императорина и фелоптерина, которые позволили снизить репликацию HSV-1 на 5.61 log, 4.7 log, 3.01 log и 3.73 log соответственно. Данные результаты исследования свидетельствуют о том, что фуранокумарины A. archangelica могут быть потенциальными кандидатами для разработки природного препарата против HSV-1 [37].

Эфирное масло имбиря аптечного (Zingiber officinale Roscoe) проявляет противовирусную активность против многочисленных вирусов, в том числе ингибирует HSV-2 со значением IC50, равным 0.001% [57].

В экспериментах с использованием чувствительного к ацикловиру штамма HSV-1 KOS(15) и резистентных к ацикловиру изолятов пациентов (1246/99 и 496/02) показано, что эфирное масло, полученное из Z. officinale, воздействует на вирус до его адсорбции [58].

У инжира (Ficus carica L.) также была выявлена противогерпетическая активность. Гексановый и гексан-этилацетатный экстракты растения вызвали наибольшее ингибирование HSV-1, предотвращая проникновение вируса, адсорбцию и внутриклеточную репликацию во всех протестированных концентрациях (от 78 мг/мл до 100 мг/мл) [59].

Камелия китайская (Camellia sinensis L.) обладает многими лечебными свойствами, в том числе противовирусным потенциалом для ингибирования вируса герпеса HSV-1 со значениями IC50 и SI, равными 20 и 50 мг/мл [60]. Экстракты C. sinensis в концентрации 12 мкг/мл полностью ингибируют оба серотипа HSV [61]. Один из основных компонентов C. sinensis эпигаллокатехин галлат (EGCG) обладает высокой противовирусной активностью в отношении HSV‐1 и HSV‐2 и снижает титры вируса герпеса обоего типа в 1000 раз. Противовирусная активность EGCG обусловлена прямым воздействием на вирион. Было показано, что инкубация клеток Vero и CV1 с EGCG в течение 48 ч до заражения HSV-1 и HSV-2, не приводит к снижению продукции HSV [62]. Таким образом, применение C. sinensis с целью профилактики герпесвирусного заболевания не эффективно.

Модификация полифенола зеленого чая эпигаллокатехина галлата (EGCG) пальмитатом повышает эффективность EGCG как противовирусного агента. В концентрации 50 мкМ и выше он блокировал образование инфекционных частиц HSV-1, ингибировал адсорбцию HSV-1 на клетках Vero [63].

Выраженная противовирусная активность против HSV-2 продемонстрирована для экстракта ферментированных листьев кипрея узколистного (Epilobium angustifolium L., Onagraceae) c СC50, равной 85 700 мкг/мл [25]. Выявленное инактивирующее действие на репликацию HSV‐2 может быть объяснено входящими в его состав полифенольными соединениями. У экстракта ферментированных листьев Epilobium angustifolium на клетках Vero была определена СС50, которая составила 85 700 мкг/мл, и ЕС50, равная 10.68 мкг/мл [64].

Клинические результаты применения спиртовой настойки корней копеечника альпийского (Hedysarum alpinum L.) показали ее высокую эффективность в отношении вируса герпеса: быстрое уменьшение местных симптомов заболевания (локальной болезненности, зуда, жжения, отека и гиперемии слизистой оболочки полости рта). Пациенты, которые наряду с общепринятым лечением хронического рецидивирующего герпеса, принимали настойку, отмечали со 2-го дня лечения улучшение общего самочувствия, исчезновение субъективных и объективных симптомов. Эпителизация эрозий наступала на 7-й день. У 22 из 31 больного (70.9%) наблюдали увеличение продолжительности ремиссии в 2 раза [63]. Экстракты копеечника альпийского (Hedysarum alpinum) и копеечника желтоватого (Hedysarum flavescens Regel et Schmalh), содержащие γ-ксантоновый С-гликозид мангиферин, препятствуют проникновению вируса внутрь клетки [5].

Мангиферин, получаемый из листьев манго (Mangifera indica L.), подавляет репродукцию вирусов герпеса Herpes simplex и Varicella zoster, цитомегаловируса. Являясь активным компонентом препарата Алпизарин, он не только оказывал прямое действие на вирусы, но и обладал способностью индуцировать продукцию INF-ɣ в клетках крови, способствуя повышению устойчивости организма к вирусным заболеваниям [5]. В экспериментах in vitro и in vivo показана активность мангиферина в отношении штаммов HSV-1 (AR-29), устойчивых к ацикловиру, с CC50, равной более 500 мкг/мл и IC50—2.9 мкг/мл [65]. На мышах Balb/c продемонстрировано, что 0.7%-ный раствор магниферина при его местном применении эффективно ингибирует штамм AR-29, снижая очаги поражения, и ускорял заживление. Было доказано, что мангиферин контролирует репликацию HSV. Изучение действия мангиферина и тетрагидроксипирролидонового сапонина, выделенного из листьев Mangifera indica, против HSV-2 показало их эффективность. EC50 против образования бляшек HSV-2 на клетках HeLa составила 111.7 мкг/мл, терапевтический индекс (IC50/EC50) — 8.1. Мангиферин не оказывает прямого инактивирующего действия на HSV-2, а вероятнее всего, он ингибирует поздние этапы репликации HSV-2 [66].

Показано, что метанольный экстракт листьев коровяка обыкновенного Verbascum thapsus L. подавляет цитопатическое действие HSV-1 [67]. Лопух большой (Arctium lappa L.) обладает противовирусной активностью в отношении двух серотипов HSV. Фенольные компоненты растения, такие как кофейная и хлорогеновая кислоты, обладают выраженным ингибирующим действием на вирус герпеса (HSV-1, HSV-2) [68]. В экспериментах in vitro было выявлено, что водноспиртовой экстракт Arctium lappa в концентрации 400 мг/мл ингибировал HSV-1 [69].

Экстракт куркумы (Curcuma longa L.) содержит полифенольное соединение куркумин, который влияет на вирусный трансактиваторный белок VP16 — опосредованное привлечение РНК-полимеразы II (Pol II) к промоторам гена Immediate early (IE) и ингибирует репликацию HSV-1. В ряде исследований продемонстрировано, что C. longa ингибирует HSV-1, а IC50, CC50 и SI составили 33.0, 484.2 мкг/мл и 14.6 соответственно [70] и уменьшает образование бляшек HSV-1 [70, 71]. Куркумин обладает значительной противогерпетической активностью и ингибирует HSV-2 со значением ED50, равным 0.32 мг/мл [72]. Обработка вирусов HSV-1 и HSV-2 куркумином в концентрации 30 мкМ снижала продукцию инфекционных вирионов HSV-1 и HSV-2 в культуре клеток Vero за счет вмешательства в процесс адсорбции [73].

Основным действующим компонентом манжетки обыкновенной Alchemilla vulgaris L. является полифенольный комплекс и, в первую очередь, флавоноиды [11, 12]. В экспериментах на культуре клеток почки африканской зеленой мартышки (Vero) показана противовирусная активность в отношении HSV-1 (штамм VR-3) и HSV-2 (штамм MS) водных растворов высушенного этилацетатного извлечения (экстракта) из корней манжетки обыкновенной и этанольного извлечения из ее надземной части [74]. Более выраженный эффект проявлял экстракт, полученный из корней.

Значительная часть исследований европейских трав семейства Lamiaceae сосредоточена на мелиссе лекарственной Melissa officinalis L. Экстракты и эфирные масла из этого растения обладают противовирусной активностью в отношении обоих типов вируса герпеса Herpes simplex. Основными компонентами эфирного масла Melissa officinalis являются монотерпенальдегиды цитраль a, цитраль b и цитронеллаль.

Исследование профилактического и терапевтического действия экстрактов Melissa officinalis на HSV-1 (штамм DA) показало, что при инкубации с вирионами HSV-1 полная инактивация вируса отмечалась через 3 часа при использовании водного экстракта и через 12 часов при использовании неводных экстрактов [75]. Однако при добавлении водных экстрактов к клеткам почек кролика (RK) до и после инфицирования не наблюдали подавления размножения вируса. Анализ количества бляшек показал, что при концентрации 0.002% эфирного масла Melissa officinalis количество бляшек HSV-1 (штамм KOS) сократилось на 98.8% и на 97.2% снизилось число бляшек HSV-2 (штамм HG) [76]. При более высоких дозах вирулентность практически полностью отсутствовала. IC50 и SI соответственно составили 0.0004% и 7.5 для HSV-1 и 0.00008% и 37.5 для HSV-2. Когда HSV-1 и HSV-2 были предварительно обработаны маслом M. officinalis в его максимальной нецитотоксической концентрации (0.002%), вирулентность значительно снижалась. Однако когда обработку применяли к вирусам во время вирусной адсорбции, отмечали умеренное снижение образования бляшек на 64.8% и 39.9% для HSV-1 и HSV-2 соответственно. Когда клетки RC-37 были обработаны эфирным маслом до или во время инфицирования образование бляшек не изменялось.

Спирто-водный экстракт Melissa officinalis обладал выраженным противовирусным действием на HSV-2 после проникновения вируса в клетку [77]. Экстракт не обладал цитотоксичностью при его использовании в концентрациях до 1 мг/мл. При обработке клеток Vero экстрактом в дозе 0.5 мг/мл после инфицирования, цитопатический эффект был снижен на 60%. Однако инкубация экстракта с вирионами HSV-2 не уменьшала проникновение вируса. Авторы статьи предполагают, что Melissa officinalis не связывается с HSV-2 для предотвращения проникновения в клетки хозяина, а оказывает свое действие после проникновения. У водного экстракта Melissa оfficinalis при предварительной обработке вириона IC50 составила 0.4 мг/мл, а SI — 875, и более 99% инактивации вируса наблюдали при концентрации 15 мг/мл [78]. Кроме того, экстракт ингибировал прикрепление вирусов к RC-37 на 98% при концентрации 7.5 мг/мл, что в 20 раз ниже максимальной нецитотоксической концентрации (150 мг/мл). Авторы делают вывод, что экстракт Melissa fficinalis продемонстрировал как инактивацию вирусов, так и ингибирование их прикрепления. Таким образом, это растение может быть хорошим кандидатом для его использования в качестве профилактического средства при инфекциях HSV.

В экспериментах in vitro на культуре клеток HEp-2 при оценке влияния летучих масел Melissa officinalis на репликацию HSV-2 было показано, что титр вируса был снижен до 78% при 1 ТИД50 (50% тканевой инфекционной дозе). Противовирусный эффект летучих масел при значениях 1 ТИД50 и 10 ТИД50 статистически значимо не отличался от ацикловира, но при значении 100 ТИД50 эффект оказался ниже, чем у ацикловира. Летучие масла, полученные из Melissa officinalis, ингибируют пролиферацию HSV-2, причем этот эффект изменялся обратно пропорционально концентрации вируса. Противовирусная активность может быть обусловлена цитралем и цитронеллалом, которые занимают важное место среди компонентов летучих масел растений и отвечают за ингибирование синтеза белка в клетках [79].

В экспериментах in vitro на культуре клеток почки хомяка (ВНК) у спирто-водного экстракта мирта обыкновенного Myrtus communis L. была доказана ингибирующая активность в отношении HSV-1, а IC50 и CC50 составили 3100 и 4960 мкг/мл [80]. Обнаружена значимая связь между концентрацией экстракта и клеточной гибелью в исследуемой клетке. IC50 экстракта в отношении вируса до его прикрепления к клеткам и после проникновения в них составили 3.1 и 1.11 мг/мл соответственно. Согласно модели Probit при увеличении концентрации экстракта процент ингибирования ЦПЭ увеличивался на обеих стадиях.

Эфирное масло мяты душистой (Mentha suaveolens Briq.) обладает выраженной противирусной активностью в отношении HSV-1 (штамм F) [81]. При сочетании его с эфирным маслом из чайного дерева (Melaleuca alternifolia (Maiden et Betche) Cheel) и ацикловиром наблюдали аддитивный противовирусный эффект. Каждый экстракт ингибировал внутриклеточный метаболизм вирусов, но не препятствовал их адсорбции.

Исследование противовирусного действия водных экстрактов различных видов растений семейства Lamiaceae, включая экстракты мелиссы лекарственной (Melissa officinalis Gren. ex Mutel), мяты перечной (Mentha piperita L.), черноголовки обыкновенной (Prunella vulgaris L.), розмарина лекарственного (Rosmarinus officinalis Spenn), шалфея лекарственного (Salvia officinalis L.) и тимьяна обыкновенного (Thymus vulgaris L.) показало, что все они обладают противовирусной активностью в отношении вирусов HSV-1 и HSV-2. Более выраженный ингибирующий эффект в отношении HSV-1 (штамм KOS) по сравнению с HSV-2 (штамм HG) был описан в том случае, когда вирионы обрабатывали экстрактами из этих растений до заражения [82]. В то же время, ни один из экстрактов не продемонстрировал способность ингибировать вирусную репликацию при обработке после заражения. Mentha piperita и Salvia officinalis снижали вирулентность на 85 и 97% соответственно в отношении штамма HSV-1, устойчивого к ацикловиру. Предварительная обработка вируса 20%-ным этанольным экстрактом Mentha piperita и 80%-ным этанольным экстрактом Prunella vulgaris, Mentha piperita и Thymus vulgaris обеспечивала полное снижение репликации вируса. Использование других экстрактов уменьшало бляшки более чем на 75%. При добавлении экстрактов во время адсорбции вирусов 80%-ные этанольные экстракты Prunella vulgaris и Mentha piperita полностью подавляли репродукцию вируса, в то время как все другие экстракты, за исключением 80%-ного этанольного экстракта Rosmarinus officinalis, уменьшали образование бляшек более чем на 50%. Авторы пришли к выводу, что 80%-ные этанольные экстракты Mentha piperita и Prunella vulgaris демонстрируют разные механизмы действия и являются перспективными для лечения HSV инфекций.

При предварительной обработке вирионов 0.01%-ным эфирным маслом Mentha piperita в течение 1 часа наблюдали уменьшение образования бляшек HSV-1 (штамм KOS) на 82% и HSV-2 (штамм HG52) на 92% [83]. Значения IC50 для HSV-1 и HSV-2 составили 0.002 и 0.0008% соответственно. Когда вирионы HSV-1 инкубировали с эфирным маслом в течение 3 часов, бляшки уменьшились на 99%. Наибольший противовирусный эффект отмечался при предварительной обработке вирусов эфирным маслом. Кроме того, предварительная обработка маслом в концентрации 0.01% подавляла устойчивый к ацикловиру штамм HSV-1 на 99%. Авторы статьи предполагают, что Mentha piperita оказывает противовирусное действие путем блокирования адсорбции вирусов.

Исследование противовирусной активности горячего водного экстракта Mentha piperita на различных стадиях репликации HSV-1 показало, что экстракт частично предотвращал инфекцию HSV-1 и ингибировал адсорбцию, когда клетки были предварительно обработаны экстрактом, а также ингибировал цикл вирусной репликации HSV-1. При этом ED50 была определена как 62.70 мг/мл, а терапевтический индекс (TI) — 1.79 [84]. Добавление экстракта после адсорбции вирусов показало, что вирусные частицы были полностью неактивны в течение 2 часов, а выход из клетки вируса был подавлен через 30 часов после заражения.

БЛАГОДАРНОСТИ

Работа проведена в рамках выполнения государственного задания МЗ РФ «Молекулярно-биологические подходы к разработке нового лекарственного средства для терапии заболеваний, вызванных штаммами вируса простого герпеса, резистентными к существующим этиотропным препаратам, TVKQ-2024-0004» (2024-2026).

×

About the authors

K. V. Sivak

Smorodintsev Research Institute of Influenza, Ministry of Health of the Russian Federation

Email: labtox6@rambler.ru
Russian Federation, Saint-Petersburg

K. I. Stosman

Smorodintsev Research Institute of Influenza, Ministry of Health of the Russian Federation

Author for correspondence.
Email: labtox6@rambler.ru
Russian Federation, Saint-Petersburg

E. E. Lesiovskaya

Golikov Research Clinical Center of Toxicology, Federal Medical Biological Agency

Email: labtox6@rambler.ru
Russian Federation, Saint-Petersburg

References

  1. Allakhyarov D. Z., Petrov Y. A., Allakhyarova N. V., Palieva N. V. 2022. Genital herpes: clinical and pathogenetic aspects of its course in pregnant women. — Modern problems of science and education. 4. https://science-education.ru/ru/article/view?id=31796 (In Russian)
  2. Isakov V. A., Arkhipova E. I., Isakov D. V. 2006. [Human herpesvirus infections]. St. Petersburg. 303 p. (In Russian)
  3. Bogoyavlensky A. P., Turmagambetova A. S., Berezin V. E. 2013. Antiviral preparations of plant origin. — Fundamental research. 6(5): 1141—1145. (In Russian)
  4. Krepkova L. V., Bortnikova V. V., Shkarenkov A. A., Kuznetsov Y. B. 2001. [Toxicological evaluation of a new antiviral drug hyporamine]. — In: [Development and introduction of new methods and means of traditional medicine]. Vol. 2. Moscow. P. 191—192. (In Russian)
  5. Vichkanova S. A. 2000. [Effectiveness of alpizarin in herpesvirus diseases in children and adults]. — Practical phytotherapy 1: 34—39. (In Russian)
  6. Vichkanova S. A. 2006. [Clinical studies of helepin — antiviral agent from the herb Lespedeza hedysaroides (Pall.) Kitag.]. — Chemistry, technology, medicine: Collection of scientific papers dedicated to the 75th anniversary of the All-Russian Institute of Medicinal and Aromatic Plants. Mosсow. P. 480—484. (In Russian)
  7. Li Y., Jiang R., Ooi L. S.M., But P. P.H., Ooi V. E.C. 2007. Antiviral triterpenoids from the medicinal plant Schefflera heptaphylla. — Phytother Res. 21(5): 466—470. https://doi.org/10.1002/ptr.1962
  8. Balunas M. J., Kinghorn A. D. 2005. Drug discovery from medicinal plants. — Life Sci. 78(5): 431—441. https://doi.org/10.1016/j.lfs.2005.09.012
  9. Wagoner J., Morishima C., Graf T. N., Oberlies N. H., Teissier E., Pécheur E. I., Tavis J. E., Polyak S. J. 2011. Differential in vitro effects of intravenous versus oral formulations of silibinin on the HCV life cycle and inflammation. — PLoS One. 6(1): e16464. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0016464
  10. Wagoner J., Negash A., Kane O. J., Martinez L. E., Nahmias Y., Bourne N., Owen D. M., Grove J., Brimacombe C., McKeating J.A., Pécheur E. I., Graf T. N., Oberlies N. H., Lohmann V., Cao F., Tavis J. E., Polyak S. J. 2010. Multiple effects of silymarin on the hepatitis C virus lifecycle. — Hepatology. 51(6): 1912—1921. https://doi.org/10.1002/hep.23587
  11. Galegov G. A., Andronova V. L., Leontyeva N. A., Lvov N. D., Petrova I. G. 2004. Etiotropic medicinal therapy of viral infections. — Problems of Virology. 49(3): 35—40. https://elibrary.ru/item.asp?id=17039285 (In Russian)
  12. Deyrup M., Sidwell R., Little R., Druzgala P., Bodor N., Brewster M. E. 1991. Improved delivery through biological membranes. Synthesis and antiviral activity of a series of ribavirin chemical delivery systems: 2′ and 3′ derivatives. — Antivir. Chem. Chemother. 2(6): 337—55. https://doi.org/10.1177/095632029100200603
  13. Patick A. K., Potts K. E. 1998. Protease inhibitors as antiviral agents. — Clinic. Microbiol. Rev. 11(4): 614—627. https://doi.org/10.1128/cmr.11.4.614
  14. Bantia S., Parker C. D., Ananth S. L., Horn L. L., Andries K., Chand P., Kotian P. L., Dehghani A., El-Kattan Y., Lin T., Hutchison T. L., Montgomery J. A., Kellog D. L., Babu Y. S. 2001. Comparison of the anti-influenza virus activity of RWJ-270201 with those of oseltamivir and zanamivir. — Antimicrob. Agents Chemother. 45(4): 1162—1167. https://doi.org/10.1128/AAC.45.4.1162-1167.2001
  15. Sidwell R. 1995. Ribavirin: A review of antiviral efficacy. — In: Abstr. Recent. Res. Devel. in Antimicrob. Agents and Chemother. Research Signpost. India. 1: 219—256.
  16. Hassan S., Berchová-Bímová K., Šudomová M., Malaník M., Šmejkal K., Rengasamy K. 2018. In vitro study of multi-therapeutic properties of Thymus bovei Benth. essential oil and its main component for promoting their use in clinical practice. — J. Clin. Med. 7(9): 283. https://doi.org/10.3390/jcm7090283
  17. Rouf R., Uddin S. J., Sarker D. K., Islam M. T., Ali E. S., Shilpi J. A., Nahar L., Tiralongo E., Sarker S. D. 2020. Antiviral potential of garlic (Allium sativum) and its organosulfur compounds: A systematic update of pre-clinical and clinical data. — Trends Food Sci. Technol. 104: 219—234. https://doi.org/10.1016/j.tifs.2020.08.006
  18. Hutterer C., Milbradt J., Hamilton S., Zaja M., Leban J., Henry C., Vitt D., Steingruber M., Sonntag E., Zeitträger I., Bahsi H., Stamminge T., Rawlinson W., Strobl S., Marschall M. 2017. Inhibitors of dual-specificity tyrosine phosphorylation-regulated kinases (DYRK) exert a strong anti-herpesviral activity. — Antivir. Res. 143: 113—121. https://doi.org/10.1016/j.antiviral.2017.04.003
  19. Brand Y. M., Roa-Linares V. C., Betancur-Galvis L. A., Durán-García D. C., Stashenko E. 2016. Antiviral activity of Colombian Labiatae and Verbenaceae family essential oils and monoterpenes on Human Herpes viruses. — J. Essent. Oil Res. 28(2): 130—137. https://doi.org/10.1080/10412905.2015.1093556
  20. Baram N. I., Ismailov A. I., Ziyaev Kh. L., Rezhepov K. Zh. 2004. Biological activity of gossypol and its derivatives. — Chem. Nat. Compd. 40(3): 199—205. https://doi.org/10.1023/B: CONC.0000039123.09208.79
  21. Ma F., Shen W., Zhang X., Li M., Wang Y., Zou Y., Li Y., Wang H. 2016. Anti-HSV activity of Kuwanon X from mulberry leaves with genes expression inhibitory and HSV-1 induced NF-kB deactivated properties. — Biol. Pharm. Bull. 39(10): 1667—1674. https://doi.org/10.1248/bpb.b16-00401
  22. Marchetti M., Pisani S., Pietropaolo V., Seganti L., Nicoletti R., Degener A., Orsi N. 1996. Antiviral effect of a polysaccharide from Sclerotium glucanicum towards herpes simplex virus type 1 infection. — Planta Med. 62(4): 303—307. https://doi.org/10.1055/s-2006-957889
  23. Panavir in the treatment of viral infections. 2005. Мoscow. 172 p. (In Russian)
  24. Lin Y. M., Flavin M. T., Schure R., Chen F. C., Sidwell R., Barnard D. L., Huffman J. H., Kern E. R. 1999. Antiviral activities of biflavonoids. — Planta Med. 65(2): 120—125. PMID: 10193201. https://doi.org/10.1055/s-1999-13971
  25. Litvinenko V. I., Popova T. P., Simonjan A. V., Zoz I. G., Sokolov V. S. 1975. Tannins and derivatives of hydroxycinnamic acid in Labiatae. — Planta Med. 27(4): 372—380. https://doi.org/10.1055/s-0028-1097817
  26. Kuo Y. C., Lin L. C., Tsai W. J., Chou C. H., Kung S. H., Ho Y. H. 2002. Samarangenin B from Limonium sinense suppress herpes simplex virus type1 replication in Vero cells by regulation of viral macromolecular synthesis. — Antimicrob. Agents Chemother. 46(9): 2854—2864. https://doi.org/10.1128/AAC.46.9.2854-2864.2002
  27. Kuo Y. C., Kuo Y. H., Lin Y. L., Tsai W. J. 2006. Yatein from Chamaecyparis obtusa suppresses herpes simplex virus type 1 replication in HeLa cells by interruption the immediate-early gene expression. — Antivir. Res. 70(3): 112—120. https://doi.org/10.1016/j.antiviral.2006.01.011
  28. Wang Y., Wang X., Xiong Y., Kaushik A. C., Muhammad J., Khan A., Dai H., Wei D. Q. 2020. New strategy for identifying potential natural HIV-1 non-nucleoside reverse transcriptase inhibitors against drug-resistance: an in silico study. — J. Biomol. Struct. Dyn. 38(11): 3327—3341. https://doi.org/10.1080/07391102.2019.1656673
  29. Cheng H. Y., Lin T. C., Yang C. M., Wang K. C., Lin C. C. 2004. Mechanism of action of the suppression of herpes simplex virus type 2 replication by pterocarnin A. — Microbes Infect. 6(8): 738—744. https://doi.org/10.1016/j.micinf.2004.03.009
  30. Faith S. A., Sweet T. J., Bailey E., Booth T., Docherty J. J. 2006. Resveratrol suppresses nuclear factor-kB in herpes simplex virus infected cells. — Antivir. Res. 72(3): 242—251. https://doi.org/10.1016/j.antiviral.2006.06.011
  31. Danaher R. J., Wang C., Dai J., Mumper R. J., Miller C. S. 2011. Antiviral effects of blackberry extract against herpes simplex virus type 1. — Oral Surg Oral Med Oral Pathol Oral Radiol Endod. 112(3): e31—35. https://doi.org/10.1016/j.tripleo.2011.04.007
  32. Gescher K., Kühn J., Hafezi W., Louis A., Derksen A., Deters A., Lorentzen E., Hensel A. 2011. Inhibition of viral adsorption and penetration by an aqueous extract from Rhododendron ferrugineum L. as antiviral principle against herpes simplex virus type-1. — Fitoterapia. 82(3): 408—413. https://doi.org/10.1016/j.fitote.2010.11.022
  33. Gescher K., Kühn J., Lorentzen E., Hafezi W., Derksen A., Deters A., Hensel A. 2011. Proanthocyanidin-enriched extract from Myrothamnus flabellifolia Welw. exerts antiviral activity against herpes simplex virus type 1 by inhibition of viral adsorption and penetration. — J. Ethnopharmacol. 134(2): 468—474. https://doi.org/10.1016/j.jep.2010.12.038
  34. Okba M. M., El Gedaily R. A., Ashour R. M. 2017. UPLC–PDA–ESI–qTOF-MS profiling and potent anti-HSV-II activity of Eucalyptus sideroxylon leaves. — J. of Chromatography B. 1068—1069: 335—342. https://doi.org/10.1016/j.jchromb.2017.10.065
  35. Rajtar B., Skalicka-Woźniak K., Świątek Ł., Stec A., Boguszewska A., Polz-Dacewicz M. 2017. Antiviral effect of compounds derived from Angelica archangelica L. on herpes simplex virus-1 and Coxsackievirus B3 infections. — Food Chem. Toxicol. 109(Pt. 2): 1026—1031. https://doi.org/10.1016/j.fct.2017.05.011
  36. Özçelik B., Kartal M., Orhan I. 2011. Cytotoxicity, antiviral and antimicrobial activities of alkaloids, flavonoids, and phenolic acids. — Pharm. Biol. 49(4): 396—402. https://doi.org/10.3109/13880209.2010.519390
  37. Palem J. R., Bedadala G. R., El Sayed K. A., Hsia S. C. V. 2011. Manzamine A as a novel inhibitor of herpes simplex virus type-1 replication in cultured corneal cells. — Planta Med. 77(01): 46—51. https://doi.org/10.1055/s-0030-1250093
  38. Hu S., Dutt J., Zhao T., Foster C. S. 1997. Tetrandrine potently inhibits herpes simplex virus type-1-induced keratitis in BALB/c mice. — Ocul. Immunol. Inflamm. 5(3): 173—180. https://doi.org/10.3109/09273949709116892
  39. Bridges C. G., Ahmed S. P., Kang M. S., Nash R. J., Porter E. A., Tyms A. S. 1995. The effect of oral treatment with 6-O-butanoyl castanospermine (MDL 28,574) in the murine zosteriform model of HSV-1 infection. — Glycobiology. 5(2): 249—253. https://doi.org/10.1093/glycob/5.2.249
  40. Amorim I. S., Lach G., Gkogkas C. G. 2018. The role of the eukaryotic translation initiation factor 4E (eIF4E) in neuropsychiatric disorders. — Front Genet. 9: 561. https://doi.org/10.3389/fgene.2018.00561
  41. Dong H. J., Wang Z. H., Meng W., Li C. C., Hu Y. X., Zhou L., Wang X. J. 2018. The natural compound homoharringtonine presents broad antiviral activity in vitro and in vivo. — Viruses. 10(11): 601. https://doi.org/10.3390/v10110601
  42. Chin L. W., Cheng Y. W., Lin S. S., Lai Y. Y., Lin L. Y., Chou M. Y., Chou M. C., Yang C. C. 2010. Anti-herpes simplex virus effects of berberine from Coptidis Rhizoma, a major component of a Chinese herbal medicine, Ching-Wei-San. — Arch Virol. 155(12): 1933—1941. https://doi.org/10.1007/s00705-010-0779-9
  43. Wu Z. N., Chen N. H., Tang Q., Chen S., Zhan Z. C., Zhang Y. B., Wang G. C., Li Y. L., Ye W. C. 2020. β-carboline alkaloids from the seeds of Peganum harmala and their anti-HSV-2 virus activities. — Org Lett. 22(18): 7310—7314. https://doi.org/10.1021/acs.orglett.0c02650
  44. Benzekri R., Bouslama L., Papetti A., Hammami M., Smaoui A., Limam F. 2018. Anti HSV-2 activity of Peganum harmala (L.) and isolation of the active compound. — Microb. Pathog. 114: 291—298. https://doi.org/10.1016/j.micpath.2017.12.017
  45. Serkedjieva J., Ivancheva S. 1999. Antiherpes virus activity of extracts from the medicinal plant Geranium sanguineum L. — J. Ethnopharmacol. 64(1): 59—68. https://doi.org/10.1016/s0378-8741(98)00095-6
  46. Ebrahimi E., Mousavi-Jazayeri S., Rezaee M., Parsania M. 2021. Antiviral effects of Aloe vera (L.) Burm. f. and Ruta graveolens L. extract on acyclovir-resistant herpes simplex virus type 1. — JMPB. 10(1): 103—108. https://doi.org/10.22092/jmpb.2021.352463.1286
  47. Silantieva E. N. 2017. Phytotherapy in complex treatment of chronic recurrent herpes of the oral mucosa. — Science almanac. 7—1(33): 218—220. https://www.elibrary.ru/item.asp?id=29864684 (In Russian)
  48. Rezazadeh F., Moshaverinia M., Motamedifar M., Alyaseri M. 2016. Assessment of anti HSV-1 Activity of Aloe vera gel extract: an in vitro study. — J. Dent. (Shiraz). 17(1): 49—54. http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/pmc4771053/
  49. Zandi K., Zadeh M. A., Sartavi K., Rastian Z. 2007. Antiviral activity of Aloe vera against herpes simplex virus type 2: an in vitro study. — Afr. J. Biotechnol. 6(15): 1770—1773. https://doi.org/10.5897/AJB2007.000-2276
  50. Motamedifar M., Ghafari N., Talezadeh Shirazi P. 2010. The effect of cumin seed extracts against herpes simplex virus type 1 in Vero cell culture. — Iran. J. Med. Sci. 35(4): 304—309. https://ijms.sums.ac.ir/article_39801.html
  51. Chiang L. C., Ng L. T., Cheng P. W., Chiang W., Lin C. C. 2005. Antiviral activities of extracts and selected pure constituents of Ocimum basilicum. — Clin. Exp. Pharmacol. Physiol. 32(10): 811—816. https://doi.org/10.1111/j.1440-1681.2005.04270.x
  52. Yucharoen R., Anuchapreeda S., Tragoolpua Y. 2011. Anti-herpes simplex virus activity of extracts from the culinary herbs Ocimum sanctum L., Ocimum basilicum L., Ocimum americanum L. — Afr. J. Biotechnol. 10(5): 860—866. https://www.ajol.info/index.php/ajb/article/view/92439
  53. Navid M. H., Laszczyk-Lauer M. N., Reichling J., Schnitzler P. 2014. Pentacyclic triterpenes in birch bark extract inhibit early step of herpes simplex virus type 1 replication. — Phytomedicine. 21(11): 1273—1280. https://doi.org/10.1016/j.phymed.2014.06.007
  54. Brezáni V., Leláková V., Hassan S. T. S., Berchová-Bímová K., Nový P., Kloucek P., Maršík P., Dall’Acqua S., Hošek J., Šmejkal K. 2018. Anti-infectivity against herpes simplex virus and selected microbes and anti-inflammatory activities of compounds isolated from Eucalyptus globulus Labill. — Viruses. 10(7): 360. https://doi.org/10.3390/v10070360
  55. Nikolaev S. M., Vichkanova S. A., Nikolaeva G. G., Tsyrenzhapov A. V., Sambueva Z. G., Glyzin V. I., Dargaeva T. D., Brednyova T. D. 2001. The studies of antimicrobial activity of xanthones from overground part and root Gentiana lutea L. — The Siberian Medical Journal. 25: 44—46. https://cyberleninka.ru/article/n/izuchenie-antimikrobnoy-aktivnosti-ksantonovyh-soedineniy-vydelennyh-iz-gorechavki-zhyoltoy (In Russian)
  56. Koch C., Reichling J., Schneele J., Schnitzler P. 2008. Inhibitory effect of essential oils against herpes simplex virus type 2. — Phytomedicine. 15(1-2): 71—78. https://doi.org/10.1016/j.phymed.2007.09.003
  57. Schnitzler P., Koch C., Reichling J. 2007. Susceptibility of drug-resistant clinical herpes simplex virus type 1 strains to essential oils of ginger, thyme, hyssop, and sandalwood. — Antimicrob. Agents Chemother. 51(5): 1859—1862. https://doi.org/10.1128/AAC.00426-06
  58. Aref H. L., Gaaliche B., Fekih A., Mars M., Aouni M., Chaumon J. P., Said K. 2011. In vitro cytotoxic and antiviral activities of Ficus carica latex extracts. — Nat. Prod. Res. 25(3): 310—319. https://doi.org/10.1080/14786419.2010.528758
  59. Farahani M. 2014. Anti-herpes simplex virus effect of Camellia Sinesis, Echiumamoenum and Nerium oleander. — Journal of Applied and Environmental Microbiology. 2(4): 102—105. http://pubs.sciepub.com/jaem /abstract/1879
  60. Deepika G., Durgadevi H., Narayan R., Sudanthira M., Manickan E. 2014. Anti-Herpes Simplex Viruses activity of Camellia sinensis, member of the family Theaceae (green tea). — BMC Infectious Diseases. 14(Suppl 3): P47. https://doi.org/10.1186/1471-2334-14-S3-P47
  61. Isaacs C. E., Wen G. Y., Xu W., Jia J. H., Rohan L., Corbo C., Di Maggio V., Jenkins E. C. Jr., Hillier S. 2008. Epigallocatechin gallate inactivates clinical isolates of herpes simplex virus. — Antimicrob. Agents Chemother. 52(3): 962—970. https://doi.org/10.1128/AAC.00825-07
  62. de Oliveira A., Adams S. D., Lee L. H., Murray S. R., Hsu S. D., Hammond J. R., Dickinson D., Chen P., Chu T. C. 2013. Inhibition of herpes simplex virus type 1 with the modified green tea polyphenol palmitoyl-epigallocatechin gallate. — Food Chem. Toxicol. 52: 207—215. https://doi.org/10.1016/j.fct.2012.11.006
  63. Kazachinskaia E. I., Chepurnov A. A., Shelemba A. A., Guseinova S. A., Magomedov M. G., Kononova Y. V., Romanyuk V. V., Shestopalov A. M. 2022. Inhibitory activity of aqueous extracts of tea compositions, individual ingredients for their preparation and some plants on replication of Herpes simplex virus type 2 in vitro. — South of Russia: ecology, development. 17(3): 135—152. https://doi.org/10.18470/1992-1098-2022-3-135-152 (In Russian)
  64. Rechenchoski D. Z., Agostinho K. F., Faccin-Galhardi L. C., Lonni A. A. S. G., da Silva J. V. H., de Andrade F. G., Cunha A. P., Ricardo N. M. P. S., Nozawa C., Linhares R. E. C. 2020. Mangiferin: A promising natural xanthone from Mangifera indica for the control of acyclovir — resistant herpes simplex virus 1 infection. — Bioorg. Med. Chem. 28(4): 115304. https://doi.org/10.1016/j.bmc.2020.115304
  65. Zhu X. M., Song J. X., Huang Z. Z., Wu Y. M., Yu M. J. 1993. [Antiviral activity of mangiferin against herpes simplex virus type 2 in vitro]. — Zhongguo Yao Li Xue Bao. 14(5): 452—454. PMID: 8010041. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/8010041/ (In Chinese)
  66. McCutcheon A. R., Roberts T. E., Gibbons E., Ellis S. M., Babiuk L. A., Hancock R. E., Towers G. H. 1995. Antiviral screening of British Columbian medicinal plants. — J. Ethnopharmacol. 49(2): 101—110. https://doi.org/10.1016/0378-8741(95)90037-3
  67. Chan Y. S., Cheng L. N., Wu J. H., Chan E., Kwan Y. W., Lee S. M., Leung G. P., Yu P. H., Chan S. W. 2011. A review of the pharmacological effects of Arctium lappa (burdock). — Inflammopharmacology. 19(5): 245—254. https://doi.org/10.1007/s10787-010-0062-4
  68. Dias M. M., Zuza O., Riani L. R., de Faria Pinto P., Pinto P. L. S., Silva M. P., de Moraes J., Ataíde A. C. Z., de Oliveira Silva F., Cecílio A. B., Da Silva Filho A. A. 2017. In vitro schistosomicidal and antiviral activities of Arctium lappa L. (Asteraceae) against Schistosoma mansoni and Herpes simplex virus-1. — Biomed. Pharmacother. 94: 489—498. https://doi.org/10.1016/j.biopha.2017.07.116
  69. Lyu S. Y., Rhim J. Y., Park W. B. 2005. Antiherpetic activities of flavonoids against herpes simplex virus type 1 (HSV-1) and type 2 (HSV-2) in vitro. — Arch. Phar. Res. 28(11): 1293—1301. https://doi.org/10.1007/bf02978215
  70. Fani M. M., Motamedifar M., Kordshouli M. Z. 2015. In vitro assessment of the anti-viral effect of Curcumin longa on herpes simplex virus type 1. — J. Biol. Today’s World. 4(5): 115—119. https://www.iomcworld.org/articles/in-vitro-assessment-of-the-antiviral-effect-of-curcumin-longa-on-herpes-simplex-virus-type-1.pdf
  71. Kutluay S. B., Doroghazi J., Roemer M. E., Triezenberg S. J. 2008. Curcumin inhibits herpes simplex virus immediate-early gene expression by a mechanism independent of p300/CBP histone acetyltransferase activity. — Virology. 373(2): 239—247. https://doi.org/10.1016/j.virol.2007.11.028
  72. Flores D. J., Lee L. H., Adams S. D. 2016. Inhibition of curcumin-treated herpes simplex virus 1 and 2 in Vero cells. — Adv. Microbiol. 6(4): 276—287. https://doi.org/10.4236/aim.2016.64027
  73. Mazurkova N. A., Kukushkina T. A., Vysochina G. I., Ibragimova Z. B., Lobanova I. E., Filippova E. I., Mazurkov O. Yu., Makarevich E. V., Shishkina L. N., Agafonov A. P. 2016. Study of anti-herpetic activity of Lady’s mantle (Alchemilla vulgaris L.) extracts. — Drug Development and Registration. 1(14): 118—127. https://www.pharmjournal.ru/jour/article/view/230 (In Russian)
  74. Dimitrova Z., Dimov B., Manolova N., Pancheva S., Ilieva D., Shishkov S. 1993. Antiherpes effect of Melissa officinalis L. extracts. — Acta Microbiol. Bulg. 29: 65—72.
  75. Schnitzler P., Schuhmacher A., Astani A., Reichling J. 2008. Melissa officinalis oil affects infectivity of enveloped herpesviruses. — Phytomedicine. 15(9): 734—740. https://doi.org/10.1016/j.phymed.2008.04.018
  76. Mazzanti G., Battinelli L., Pompeo C., Serrilli A. M., Rossi R., Sauzullo I., Mengoni F., Vullo V. 2008. Inhibitory activity of Melissa officinalis L. extract on Herpes simplex virus type 2 replication. — Nat. Prod. Res. 22(16): 1433—1440. https://doi.org/10.1080/14786410802075939
  77. Astani A., Reichling J., Schnitzler P. 2012. Melissa officinalis extract inhibits attachment of herpes simplex virus in vitro. — Chemotherapy. 58(1): 70—77. https://doi.org/10.1159/000335590
  78. Allahverdiyev A., Duran N., Ozguven M., Koltas S. 2004. Antiviral activity of the volatile oils of Melissa officinalis L. against Herpes simplex virus type-2. — Phytomedicine. 11(7—8): 657—661. https://doi.org/10.1016/j.phymed.2003.07.014
  79. Moradi M. T., Karimi A., Rafieian-Kopaei M., Kheiri S., Saedi-Marghmaleki M. 2011. The inhibitory effects of myrtle (Myrtus communis) extract on herpes simplex virus-1 replication in baby hamster kidney cells. — J. Shahrekord University of Medical Sciences. 12(4): 54—61. (In Arabic)
  80. Civitelli L., Panella S., Marcocci M. E., De Petris A., Garzoli S., Pepi F., Vavala E., Ragno R., Nencioni L., Palamara A. T., Angiolella L. 2014. In vitro inhibition of herpes simplex virus type 1 replication by Mentha suaveolens essential oil and its main component piperitenone oxide. — Phytomedicine. 21(6): 857—865. https://doi.org/10.1016/j.phymed.2014.01.013
  81. Nolkemper S., Reichling J., Stintzing F. C., Carle R., Schnitzler P. 2006. Antiviral effect of aqueous extracts from species of the Lamiaceae family against herpes simplex virus type 1 and type 2 in vitro. — Planta Med. 72(15): 1378—1382. https://doi.org/10.1055/s-2006-951719
  82. Schuhmacher A., Reichling J., Schnitzler P. 2003. Virucidal effect of peppermint oil on the enveloped viruses herpes simplex virus type 1 and type 2 in vitro. — Phytomedicine. 10(6—7): 504—510. https://doi.org/10.1078/094471103322331467
  83. Omidian J., Sheikhi-Shooshtari F., Fazeli M. 2014. Inhibitory effect of Mentha piperita extracts against herpes simplex virus isolated from eye infection. — Iran. J. Virol. 8(1): 35—41. https://doi.org/10.21859/isv.8.1.35

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

Copyright (c) 2024 Russian Academy of Sciences

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».