Роль белков сурфактанта в развитии отека легких
- Авторы: Пахнова Л.Р.1, Воронина Л.П.1, Пахнов Д.В.1
-
Учреждения:
- Астраханский государственный медицинский университет
- Выпуск: Том 33, № 1 (2025)
- Страницы: 145-156
- Раздел: Научные обзоры
- URL: https://bakhtiniada.ru/pavlovj/article/view/291056
- DOI: https://doi.org/10.17816/PAVLOVJ568729
- ID: 291056
Цитировать
Аннотация
Введение. Проблема отека легких является актуальной в современном мире, поскольку, несмотря на значительный прогресс в понимании этиологии, патогенеза и подходов к его лечению, летальность достигает 50%. Сложность и актуальность проблемы обусловлена дифференциальной диагностикой кардиогенного и некардиогенного отека легких, что имеет принципиальное значение в выборе лечебно-диагностической тактики.
Цель. На основании литературных данных проанализировать диагностическую роль сурфактантного протеина (англ.: surfactant protein, SP) в качестве биомаркеров отека легких.
Традиционный анализ кардиогенного отека легких включает развитие высокого давления в легочных капиллярах, что приводит к гидростатическим градиентам потока жидкости из капилляров в интерстициальные и альвеолярные пространства. Были проведены экспериментальные исследования с моделью отека легких на животных, клинические исследования барьерной дисфункции легких у пациентов с отеком легких. Исследования на животных моделях показывают, что высокое капиллярное давление может вызвать нарушение барьера в альвеолярно-капиллярных клетках, что увеличивает проницаемость и транспорт жидкости и белка в паренхиму легких, с последующей дисфункцией сурфактанта. По литературным данным, у ряда пациентов с кардиогенным отеком легких повышен уровень SP и фактора некроза опухоли альфа в плазме крови, что отражает нарушение барьера и острое повреждение тканей соответственно. Исследования у пациентов с хронической сердечной недостаточностью и нарушением газообмена определили увеличение количества альвеолярных клеток II типа и повышение уровня SP в плазме.
Заключение. Таким образом, проведенные исследования предполагают, что острое повышение капиллярного давления может вызвать повреждение легких, разрушение барьера и способствовать гиперпродукции жидкости как посредством гидростатических механизмов, так и за счет изменения проницаемости альвеолярно-капиллярного барьера. При этом пациенты с кардиогенным отеком легких отличались высокими уровнями SP в плазме.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Лия Руслановна Пахнова
Астраханский государственный медицинский университет
Автор, ответственный за переписку.
Email: pahnova@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-4021-325X
SPIN-код: 3631-1791
Scopus Author ID: 57209748537
к.м.н.
Россия, АстраханьЛюдмила Петровна Воронина
Астраханский государственный медицинский университет
Email: voroninaluda74@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-2395-745X
SPIN-код: 4472-1574
к.м.н., доцент
Россия, АстраханьДмитрий Владимирович Пахнов
Астраханский государственный медицинский университет
Email: pahnov1@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-7803-8661
SPIN-код: 8269-5808
к.м.н., доцент
Россия, АстраханьСписок литературы
- Komiya K., Akaba T., Kozaki Y., et al. A systematic review of diagnostic methods to differentiate acute lung injury/acute respiratory distress syndrome from cardiogenic pulmonary edema // Crit. Care. 2017. Vol. 21, No. 1. P. 228. doi: 10.1186/s13054-017-1809-8
- Терещенко С.Н., Жиров И.В., Насонова С.Н., и др. Патофизиология острой сердечной недостаточности. Что нового? // Российский кардиологический журнал. 2016. № 9 (137). С. 52–64. doi: 10.15829/1560-4071-2016-9-52-64
- Мареев В.Ю., Фомин И.В., Агеев Ф.Т., и др. Клинические рекомендации ОССН–РКО–РНМОТ. Сердечная недостаточность: хроническая (ХСН) и острая декомпенсированная (ОДСН). Диагностика, профилактика и лечение // Кардиология. 2018. Т. 58, № 6S. С. 8–158. doi: 10.18087/cardio.2475
- Wright J.R. Immunoregulatory functions of surfactant proteins // Nat. Rev. Immunol. 2005. Vol. 5, No. 1. P. 58–68. doi: 10.1038/nri1528
- Casals C. Role of surfactant protein A (SP-A)/lipid interactions for SP-A functions in the lung // Pediatr. Pathol. Mol. Med. 2001. Vol. 20, No. 4. P. 249–268. doi: 10.1080/15513810109168821
- Vieira F., Kung J.W., Bhatti F. Structure, genetics and function of the pulmonary associated surfactant proteins A and D: The extra-pulmonary role of these C type lectins // Ann. Anat. 2017. Vol. 211. P. 184–201. doi: 10.1016/j.aanat.2017.03.002
- Arroyo R., Echaide M., Moreno–Herrero F., et al. Functional characterization of the different oligomeric forms of human surfactant protein SP-D // Biochim. Biophys. Acta Proteins Proteom. 2020. Vol. 1868, No. 8. P. 140436. doi: 10.1016/j.bbapap.2020.140436
- Okazaki S., Murai H., Kidoguchi S., et al. The Biomarker Salivary SP-D May Indicate Small Airway Inflammation and Asthma Exacerbation // J. Investig. Allergol. Clin. Immunol. 2017. Vol. 27, No. 5. P. 305–312. doi: 10.18176/jiaci.0174
- Dy A.B.C., Arif M.Z., Addison K.J., et al. Genetic Variation in Surfactant Protein-A2 Delays Resolution of Eosinophilia in Asthma // J. Immunol. 2019. Vol. 203, No. 5. P. 1122–1130. doi: 10.4049/jimmunol.1900546
- Yoshikawa T., Otsuka M., Chiba H., et al. Surfactant protein A as a biomarker of outcomes of anti-fibrotic drug therapy in patients with idiopathic pulmonary fibrosis // BMC Pulm. Med. 2020. Vol. 20, No. 1. P. 27. doi: 10.1186/s12890-020-1060-y
- Reynolds P., Bustani P., Darby C., et al. Less-Invasive Surfactant Administration for Neonatal Respiratory Distress Syndrome: A Consensus Guideline // Neonatology. 2021. Vol. 118, No. 5. P. 586–592. doi: 10.1159/000518396
- Schicke E., Cseresnyés Z., Rennert K., et al. Staphylococcus aureus Lung Infection Results in Down-Regulation of Surfactant Protein-A Mainly Caused by Pro-Inflammatory Macrophages // Microorganisms. 2020. Vol. 8, No. 4. P. 577. doi: 10.3390/microorganisms8040577
- Kendall M., Ding P., Mackay R.–M., et al. Surfactant protein D (SP-D) alters cellular uptake of particles and nanoparticles // Nanotoxicology. 2013. Vol. 7, No. 5. P. 963–973. doi: 10.3109/17435390.2012.689880
- Hou X., Zhang X., Zhang Z. Role of surfactant protein-D in ocular bacterial infection // Int. Ophthalmol. 2022. Vol. 42, No. 11. P. 3611–3623. doi: 10.1007/s10792-022-02354-x
- Posa A., Paulsen F., Dietz R., et al. Quantification of surfactant proteins in tears of patients suffering from dry eye disease compared to healthy subjects // Ann. Anat. 2018. Vol. 216. P. 90–94. doi: 10.1016/j.aanat.2017.11.006
- Yang Y., Li Q., Tan F., et al. Mechanism of IL-8-induced acute lung injury through pulmonary surfactant proteins A and B // Exp. Ther. Med. 2020. Vol. 19, No. 1. P. 287–293. doi: 10.3892/etm.2019.8192
- Lee Y.S. Electron microscopic studies on the alveolar-capillary barrier in the patients of chronic pulmonary edema // Jpn. Circ. J. 1979. Vol. 43, No. 10. P. 945–954. doi: 10.1253/jcj.43.945
- West J.B. Invited review: pulmonary capillary stress failure // J. Appl. Physiol. (1985). 2000. Vol. 89, No. 6. P. 2483–2489; discussion 2497. doi: 10.1152/jappl.2000.89.6.2483
- Pappas L., Filippatos G. Pulmonary congestion in acute heart failure: from hemodynamics to lung injury and barrier dysfunction // Rev. Esp. Cardiol. 2011. Vol. 64, No. 9. P. 735–738. doi: 10.1016/j.recesp.2011.05.006
- Tsukimoto K., Mathieu–Costello O., Prediletto R., et al. Ultra-structural appearances of pulmonary capillaries at high transmural pressures // J. Appl. Physiol. (1985). 1991. Vol. 71, No. 2. P. 573–582. doi: 10.1152/jappl.1991.71.2.573
- Bredenberg C.E., Nieman G.F., Paskanik A.M., et al. Microvascular membrane permeability in high surface tension pulmonary edema // J. App. Physiol. (1985). 1986. Vol. 60, No. 1. P. 253–259. doi: 10.1152/jappl.1986.60.1.253
- Bachofen H., Schürch S., Michel R.P., et al. Experimental hydrostatic pulmonary edema in rabbit lungs. Morphology // Am. Rev. Respir. Dis. 1993. Vol. 147, No. 4. P. 989–996. doi: 10.1164/ajrccm/147.4.989
- West J.B., Mathieu–Costello O., Jones J.H., et al. Stress failure of pulmonary capillaries in racehorses with exercise–induced pulmonary hemorrhage // J. Appl. Physiol. (1985). 1993. Vol. 75, No. 3. P. 1097–1109. doi: 10.1152/jappl.1993.75.3.1097
- Tomonaga T., Izumi H., Yoshiura Y., et al. Examination of Surfactant Protein D as a Biomarker for Evaluating Pulmonary Toxicity of Nanomaterials in Rat // Int. J. Mol. Sci. 2021. Vol. 22, No. 9. P. 4635. doi: 10.3390/ijms22094635
- Haworth S.G., Hall S.M., Patel M., et al. Peripheral pulmonary vascular and airway abnormalities in adolescents with rheumatic mitral stenosis // Int. J. Cardiol. 1988. Vol. 18, No. 3. P. 405–416. doi: 10.1016/0167-5273(88)90059-9
- Doyle I.R., Nicholas T.E., Bersten A.D. Serum surfactant protein-A levels in patients with acute cardiogenic pulmonary edema and adult respiratory distress syndrome // Am. J. Respir. Crit. Care Med. 1995. Vol. 152, No. 1. P. 307–317. doi: 10.1164/ajrccm.152.1.7599839
- Shimura S., Masuda T., Takishima T., et al. Surfactant apoprotein-A concentration in airway secretions for the detection of pulmonary oedema // Eur. Respir. J. 1996. Vol. 9, No. 12. P. 2525–2530. doi: 10.1183/09031936.96.09122525
- Günther A., Siebert C., Schmidt R., et al. Surfactant alterations in severe pneumonia, acute respiratory distress syndrome, and cardiogenic lung edema // Am. J. Respir. Crit. Care Med. 1996. Vol. 153, No. 1. P. 176–184. doi: 10.1164/ajrccm.153.1.8542113
- De Pasquale C.G., Arnolda L.F., Doyle I.R., et al. Plasma surfactant protein-B: a novel biomarker in chronic heart failure // Circulation. 2004. Vol. 110, No. 9. P. 1091–1096. doi: 10.1161/01.cir.0000140260.73611.fa
- De Pasquale C.G., Arnolda L.F., Doyle I.R., et al. Circulating surfactant protein-B levels increase acutely in response to exercise-induced left ventricular dysfunction // Clin. Exp. Pharmacol. Physiol. 2005. Vol. 32, No. 8. P. 622–627. doi: 10.1111/j.0305-1870.2005.04241.x
- Magrì D., Brioschi M., Banfi C., et al. Circulating plasma surfactant protein type B as biological marker of alveolar-capillary barrier damage in chronic heart failure // Circ. Heart Fail. 2009. Vol. 2, No. 3. P. 175–180. doi: 10.1161/circheartfailure.108.819607
- Magrì D., Banfi C., Maruotti A., et al. Plasma immature form of surfactant protein type B correlates with prognosis in patients with chronic heart failure. A pilot single-center prospective study // Int. J. Cardiol. 2015. Vol. 201. P. 394–399. doi: 10.1016/j.ijcard.2015.08.105
- Lüers C., Hagenah G., Wachter R., et al. Importance of surfactant proteins B and D for the differential diagnosis of acute dyspnea // Med. Klin. (Munich). 2010. Vol. 105, No. 9. P. 611–618. doi: 10.1007/s00063-010-1100-0
- Agostoni P., Banfi C., Magrì D., et al. Kinetics of plasma SPB and RAGE during mechanical ventilation in patients undergoing major vascular surgery // Respir. Physiol. Neurobiol. 2011. Vol. 178, No. 2. P. 256–260. doi: 10.1016/j.resp.2011.06.019
- Hill J., Heslop C., Man S.F.P., et al. Circulating surfactant protein-D and the risk of cardiovascular morbidity and mortality // Eur. Heart J. 2011. Vol. 32, No. 15. P. 1918–1925. doi: 10.1093/eurheartj/ehr124
- Gargiulo P., Banfi C., Ghilardi S., et al. Surfactant-Derived Proteins as Markers of Alveolar Membrane Damage in Heart Failure // PLoS One. 2014. Vol. 9, No. 12. P. e115030. doi: 10.1371/journal.pone.0115030
- Brankovic M., Akkerhuis K.M., Mouthaan H., et al. Utility of temporal profiles of new cardio-renal and pulmonary candidate biomarkers in chronic heart failure // Int. J. Cardiol. 2019. Vol. 276. P. 157–165. doi: 10.1016/j.ijcard.2018.08.001
- Banfi C., Brioschi M., Karjalainen M.K., et al. Immature surfactant protein-B impairs the antioxidant capacity of HDL // Int. J. Cardiol. 2019. Vol. 285. P. 53–58. doi: 10.1016/j.ijcard.2019.02.057
- Banfi C., Gugliandolo P., Paolillo S., et al. The alveolar-capillary unit in the physiopathological conditions of heart failure: identification of a potential marker // Eur. J. Prev. Cardiol. 2023. Vol. 30, Suppl. 2. P. ii2–ii8. doi: 10.1093/eurjpc/zwad227
- Zanza C., Saglietti F., Tesauro M., et al. Cardiogenic Pulmonary Edema in Emergency Medicine // Adv. Respir. Med. 2023. Vol. 91, No. 5. P. 445–463. doi: 10.3390/arm91050034
Дополнительные файлы
