Взаимосвязь минерального и витаминного статусов в сыворотке крови беременных женщин с врожденными пороками развития плода

Обложка


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Обоснование. Изменения, происходящие в организме во время беременности, существенно влияют на обмен веществ, что определяет значимость контроля питания и приема добавок витаминов и минералов для здоровья матери и нормального развития плода. Дисбаланс витаминов и микроэлементов в организме приводит к нарушению клеточных процессов, что может повысить риск возникновения врожденных пороков развития плода, особенно связанных с дефектами нервной трубки.

Цель — оценить взаимосвязь минерального и витаминного статусов в сыворотке крови беременных женщин с врожденными пороками развития плода.

Материалы и методы. В сыворотке крови исследованы комплекс основных минералов (магний, кальций, медь, цинк, железо), неорганический фосфор, показатели железодефицитной анемии, а также витамины (D, B12, фолиевая кислота) и уровень гомоцистеина у 82 беременных женщин на сроке 19,0 (15,0–21,0) нед. с различными врожденными пороками развития плода. Все пациентки разделены на три группы: первая — без хромосомных аномалий и с дефектами нервной трубки плода (n = 18), вторая — без хромосомных аномалий и без дефектов нервной трубки плода (n = 35), третья — с хромосомными аномалиями у плода, преимущественно синдромом Дауна (n = 29).

Результаты. Пациентки всех групп исследования были сопоставимы по индексу массы тела, количеству беременностей, родов, абортов в анамнезе, частоте встречаемости сахарного диабета и эндокринных заболеваний, воздействию экзогенных повреждающих факторов. У женщин с дефектами нервной трубки плода отмечено больше случаев острой респираторно-вирусной инфекции на ранних сроках беременности, было ниже содержание витамина B12 и неорганического фосфора, прямо зависящего от уровня цинка.

Заключение. Представленные данные указывают на необходимость дальнейших исследований с более крупными выборками для выяснения роли микроэлементов и витаминов в формировании различных врожденных пороков развития плода и целесообразности назначения витаминов группы B, а также пищевых добавок, содержащих соединения цинка и фосфора, до или во время беременности.

Об авторах

Юлия Павловна Милютина

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Автор, ответственный за переписку.
Email: milyutina1010@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-1951-8312
SPIN-код: 6449-5635

канд. биол. наук

Россия, Санкт-Петербург

Маргарита Олеговна Шенгелия

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии имени Д.О.Отта

Email: bakleicheva@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-0103-8583
SPIN-код: 7831-2698

канд. мед. наук

Россия, Санкт-Петербург

Анастасия Павловна Сазонова

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Email: nastenka.sazonova.97@mail.ru
ORCID iD: 0009-0007-4567-7831
SPIN-код: 8721-1390
Россия, Санкт-Петербург

Олеся Николаевна Беспалова

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии имени Д.О. Отта

Email: shiggerra@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-6542-5953
SPIN-код: 4732-8089
Scopus Author ID: D-3880-2018

д-р мед. наук

Россия, Санкт-Петербург

Андрей Валентинович Кореневский

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Email: a.korenevsky@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-0365-8532
SPIN-код: 7942-6016

д-р мед. наук

Россия, Санкт-Петербург

Список литературы

  1. Li H., Zhang J., Chen S., et al. Genetic contribution of retinoid-related genes to neural tube defects // Hum Mutat. 2018. Vol. 39. N 4. P. 550–562. dоi: 10.1002/humu.23397
  2. Sirinoglu H.A., Pakay K., Aksoy M., et al. Comparison of serum folate, 25-OH vitamin D, and calcium levels between pregnants with and without fetal anomaly of neural tube origin // J Matern Fetal Neonatal Med. 2017. Vol. 31. N 11. P. 1490–1493. dоi: 10.1080/14767058.2017.1319924
  3. Kirke P.N., Molloy A.M., Daly L.E., et al. Maternal plasma folate and vitamin B12 are independent risk factors for neural tube defects // Q J Med. 1993. Vol. 86. N 11. P. 703–708.
  4. Groenen P.M.W., van Rooij I.A.L.M., Peer P.G.M., et al. Marginal maternal vitamin B12 status increases the risk of offspring with Spina bifida // Am J Obstet Gynecol. 2004. Vol. 191. N 1. P. 11–17. dоi: 10.1016/j.ajog.2003.12.032
  5. Molloy A.M., Pangilinan F., Brody L.C. Genetic risk factors for folate-responsive neural tube defects // Annu Rev Nutr. 2017. Vol. 37. N 1. P. 269–291. dоi: 10.1146/annurev-nutr-071714-034235
  6. Lewicka I., Kocyłowski R., Grzesiak M., et al. Selected trace elements concentrations in pregnancy and their possible role – literature review // Ginekologia Polska. 2017. Vol. 88. N 9. P. 509–514. dоi: 10.5603/GP.a2017.0093
  7. Willekens J., Runnels L.W. Impact of zinc transport mechanisms on embryonic and brain development // Nutrients. 2022. Vol. 14. N 12. P. 2526. dоi: 10.3390/nu14122526
  8. Suliburska J., Kocyłowski R., Komorowicz I., et al. Concentrations of mineral in amniotic fluid and their relations to selected maternal and fetal parameters // Biol Trace Elem Res. 2015. Vol. 172. N 1. P. 37–45. dоi: 10.1007/s12011-015-0557-3
  9. Tian T., Liu J., Lu X., et al. Selenium protects against the likelihood of fetal neural tube defects partly via the arginine metabolic pathway // Clin Nutr. 2022. Vol. 41. N 4. P. 838–846. dоi: 10.1016/j.clnu.2022.02.006
  10. Stothard K.J., Tennant P.W.G., Bell R., et al. Maternal overweight and obesity and the risk of congenital anomalies // Jama. 2009. Vol. 301. N 6. P. 636. dоi: 10.1001/jama.2009.113
  11. Korkmaz L., Baştuğ O., Kurtoğlu S. Maternal obesity and its short- and long-term maternal and infantile effects // Journal of Clinical Research in Pediatric Endocrinology. 2016. Vol. 8. N 2. P. 114–124. dоi: 10.4274/jcrpe.2127
  12. Werler M.M., Ahrens K.A., Bosco J.L.F., et al. Use of antiepileptic medications in pregnancy in relation to risks of birth defects // Ann Epidemiol. 2011. Vol. 21. N 11. P. 842–850. dоi: 10.1016/j.annepidem.2011.08.002
  13. Becerra J.E., Khoury M.J., Cordero J.F., et al. Diabetes mellitus during pregnancy and the risks for specific birth defects: a population-based case-control study // Pediatrics. 1990. Vol. 85, N 1. P. 1–9.
  14. Kakebeen A.D., Niswander L. Micronutrient imbalance and common phenotypes in neural tube defects // Genesis. 2021. Vol. 59, N 11. ID: e23455 dоi: 10.1002/dvg.23455
  15. Cavdar A.O., Bahceci M., Akar N., et al. Zinc status in pregnancy and the occurrence of anencephaly in Turkey // J Trace Elem Electrolytes Health Dis. 1988. Vol. 2. N 1. P. 9–14. DОI:
  16. Groenen P.M.W., van Rooij I.A.L.M., Peer P.G.M., et al. Low maternal dietary intakes of iron, magnesium, and niacin are associated with Spina bifida in the offspring // J Nutr. 2004. Vol. 134. N 6. P. 1516–1522. dоi: 10.1093/jn/134.6.1516
  17. Shaw G.M., Todoroff K., Schaffer D.M., et al. Periconceptional nutrient intake and risk for neural tube defect-affected pregnancies // Epidemiology. 1999. Vol. 10, N 6. P. 711–716.
  18. Burgess A.M.C., Vere D.W. Teratogenic effects of some calcium channel blocking agents in xenopus embryos // Pharmacol Toxicol. 2009. Vol. 64, N 1. P. 78–82. dоi: 10.1111/j.1600-0773.1989.tb00605.x
  19. Durlach J., Pages N., Bac P., et al. New data on the importance of gestational Mg deficiency // Magnes Res. 2004. Vol. 17, N 2. P. 116–125.
  20. Sergeenko O.M., Savin D.M., Diachkov K.A. Association of spinal cord abnormalities with vertebral anomalies: an embryological perspective // Child Nerv Syst. 2024. Vol. 40, N 5. P. 1415–1425. dоi: 10.1007/s00381-024-06336-5
  21. Wysocka J., Wasilewska A., Żelazowska B., et al. Serum 25-hydroxyvitamin D, osteocalcin, and parathormone status in children with meningomyelocele // Neuropediatrics. 2012. Vol. 43, N 6. P. 314–319. dоi: 10.1055/s-0032-1327126
  22. Taylor C.W., Tovey S.C. From parathyroid hormone to cytosolic Ca2+ signals // Biochem Soc Trans. 2012. Vol. 40, N 1. P. 147–152. dоi: 10.1042/BST20110615
  23. Berndt T., Kumar R. Novel mechanisms in the regulation of phosphorus homeostasis // Physiology. 2009. Vol. 24, N 1. P. 17–25. dоi: 10.1152/physiol.00034.2008
  24. Umehara T., Mimori M., Kokubu T., et al. Serum phosphorus levels associated with nigrostriatal dopaminergic deficits in drug-naïve Parkinson’s disease // J Neurol Sci. 2024. Vol. 464. ID: 123165. dоi: 10.1016/j.jns.2024.123165
  25. Morota N., Sakamoto H. Surgery for spina bifida occulta: spinal lipoma and tethered spinal cord // Childs Nerv Syst. 2023. Vol. 39, N 10. P. 2847–2864. dоi: 10.1007/s00381-023-06024-w
  26. de Bree K., de Bakker B.S., Oostra R.J. The development of the human notochord // PLoS One. 2018. Vol. 13, N 10. ID: e0205752. dоi: 10.1371/journal.pone.0205752
  27. Dias M.S., Partington M. Embryology of myelomeningocele and anencephaly // Neurosurg Focus. 2004. Vol. 16, N 2. P. E1. dоi: 10.3171/foc.2004.16.2.2
  28. Isaković J., Šimunić I., Jagečić D., et al. Overview of neural tube defects: gene–environment interactions, preventative approaches and future perspectives // Biomedicines. 2022. Vol. 10, N 5. P. 965. dоi: 10.3390/biomedicines10050965
  29. Juriloff D.M., Harris M.J. Insights into the etiology of mammalian neural tube closure defects from developmental, genetic and evolutionary studies // J Dev Biol. 2018. Vol. 6, N 3. P. 22. dоi: 10.3390/jdb6030022
  30. Yang J., Lee J.Y., Kim K.H., et al. Disorders of secondary neurulation: mainly focused on pathoembryogenesis // J Korean Neurosurg Soc. 2021. Vol. 64, N 3. P. 386–405. dоi: 10.3340/jkns.2021.0023
  31. Lu W., Yan J., Wang C., et al. Interorgan communication in neurogenic heterotopic ossification: the role of brain-derived extracellular vesicles // Bone Res. 2024. Vol. 12, N 1. dоi: 10.1038/s41413-023-00310-8
  32. Husain S.M., Mughal M.Z. Mineral transport across the placenta // Arch Dis Child. 1992. Vol. 67, N 7. P. 874–878. dоi: 10.1136/adc.67.7_spec_no.874
  33. Li Z., Ren A., Liu J., et al. Maternal flu or fever, medication use, and neural tube defects: a population-based case-control study in Northern China // Birth Defects Res A Clin Mol Teratol. 2007. Vol. 79, N 4. P. 295–300. dоi: 10.1002/bdra.20342
  34. Qin L., Chen Y.J., Wang T.H., et al. Effects of endocrine metabolic factors on hemocyte parameters, tumor markers, and blood electrolytes in patients with hyperglycemia // J Diabetes Res. 2023. Vol. 2023. ID: 8905218. dоi: 10.1155/2023/8905218
  35. Petrova E., Gluhcheva Y., Pavlova E., et al. Effects of salinomycin and deferiprone on lead-induced changes in the mouse brain // Int J Mol Sci. 2023. Vol. 24, N 3. P. 2871. dоi: 10.3390/ijms24032871
  36. Petrova E., Pashkunova-Martic I., Schaier M., et al. Effects of subacute cadmium exposure and subsequent deferiprone treatment on cadmium accumulation and on the homeostasis of essential elements in the mouse brain // J Trace Elem Med Biol. 2022. Vol. 74. ID: 127062. dоi: 10.1016/j.jtemb.2022.127062
  37. Moghimi M., Ashrafzadeh S., Rassi S., et al. Maternal zinc deficiency and congenital anomalies in newborns // Pediatr Int. 2017. Vol. 59, N 4. P. 443–446. dоi: 10.1111/ped.13176
  38. Maduray K., Moodley J., Soobramoney C., et al. Elemental analysis of serum and hair from pre-eclamptic South African women // J Trace Elem Med Biol. 2017. Vol. 43. P. 180–186. dоi: 10.1016/j.jtemb.2017.03.004
  39. Jyotsna S., Amit A., Kumar A. Study of serum zinc in low birth weight neonates and its relation with maternal zinc // J Clin Diagnostic Res. 2015. Vol. 9, N 1. P. SC01–SC03. dоi: 10.7860/jcdr/2015/10449.5402
  40. Rahmanian M., Jahed F.S., Yousefi B., et al. Maternal serum copper and zinc levels and premature rupture of the foetal membranes // J Pak Med Assoc. 2014. Vol. 64, N 7. P. 770–774.
  41. Jariwala M., Suvarna S., Kiran Kumar G., et al. Study of the concentration of trace elements fe, zn, cu, se and their correlation in maternal serum, cord serum and colostrums // Indian J Clin Biochem. 2013. Vol. 29, N 2. P. 181–188. dоi: 10.1007/s12291-013-0338-8
  42. King J.C. Determinants of maternal zinc status during pregnancy // Am J Clin Nutr. 2000. Vol. 71, N 5. P. 1334S–1343S. dоi: 10.1093/ajcn/71.5.1334s
  43. Neggers Y.H., Singh J. Zinc supplementation to protein-deficient diet in CO-exposed mice decreased fetal mortality and malformation // Biol Trace Elem Res. 2006. Vol. 114, N 1–3. P. 269–279. dоi: 10.1385/bter:114:1:269
  44. Adamo A.M., Oteiza P.I. Zinc deficiency and neurodevelopment: the case of neurons // BioFactors. 2010. Vol. 36, N 2. P. 117–124. dоi: 10.1002/biof.91
  45. Supasai S., Aimo L., Adamo A.M., et al. Zinc deficiency affects the STAT1/3 signaling pathways in part through redox-mediated mechanisms // Redox Biology. 2017. Vol. 11. P. 469–481. dоi: 10.1016/j.redox.2016.12.027
  46. Supasai S., Adamo A.M., Mathieu P., et al. Gestational zinc deficiency impairs brain astrogliogenesis in rats through multistep alterations of the JAK/STAT3 signaling pathway // Redox Biology. 2021. Vol. 44. ID: 102017. dоi: 10.1016/j.redox.2021.102017
  47. Hurley L.S., Swenerton H. Congenital malformations resulting from zinc deficiency in rats // Experim Biol Med. 1966. Vol. 123, N 3. P. 692–696. dоi: 10.3181/00379727-123-31578
  48. Sun C., Ding D., Wen Z., et al. Association between micronutrients and hyperhomocysteinemia: a case-control study in Northeast China // Nutrients. 2023. Vol. 15, N 8. P. 1895. dоi: 10.3390/nu15081895
  49. Miller J.W., Smith A., Troen A.M., et al. Excess folic acid and vitamin B12 deficiency: clinical implications? // Food Nutr Bull. 2024. Vol. 45, N 1. P. S67–S72. dоi: 10.1177/03795721241229503
  50. Милютина Ю.П., Шенгелия М.О., Беспалова О.Н., и др. Микронутриентный статус беременных с врожденными пороками развития плода // Журнал акушерства и женских болезней. 2023. Т. 72, № 5. C. 61–74. EDN: OSSXEP doi: 10.17816/JOWD472088
  51. Chen C.P. Syndromes, disorders and maternal risk factors associated with neural tube defects (VI) // Taiwan J Obstet Gynecol. 2008. Vol. 47, N 3. P. 267–275. dоi: 10.1016/S1028-4559(08)60123-0

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рисунок. Взаимосвязи между содержанием показателей минерального и витаминного статусов в группах беременных с врожденными пороками развития плода: а — дефекты нервной трубки без хромосомной аномалии; b — без хромосомных аномалий и дефектов нервной трубки; с — хромосомные аномалии. * p < 0,05; ** p < 0,01; *** p < 0,001. Данные представлены в виде значений ранговой корреляции Спирмена. ИМТ — индекс массы тела; КНТ — коэффициент насыщения трансферрина

Скачать (1MB)
Метаданные

© Эко-Вектор, 2024



Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».