Значение полиморфных вариантов гена кисспептина в патогенезе недостаточности яичников у пациенток с сахарным диабетом 1-го типа, наружным генитальным эндометриозом и при их сочетании
- Авторы: Мишарина Е.В.1, Осиновская Н.С.1, Ярмолинская М.И.1
-
Учреждения:
- Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта
- Выпуск: Том 72, № 4 (2023)
- Страницы: 25-36
- Раздел: Оригинальные исследования
- URL: https://bakhtiniada.ru/jowd/article/view/253854
- DOI: https://doi.org/10.17816/JOWD346690
- ID: 253854
Цитировать
Аннотация
Обоснование. Сахарный диабет 1-го типа и эндометриоз оказывают негативное влияние на репродуктивную систему женщины. Существует мнение, что в патогенезе недостаточности яичников при диабете и эндометриозе важная роль принадлежит кисспептину.
Цель исследования — оценить значение полиморфизма гена кисспептина (KISS1) в патогенезе недостаточности яичников у пациенток с сахарным диабетом 1-го типа, наружным генитальным эндометриозом и при их сочетании.
Материалы и методы. Методом полимеразной цепной реакции и анализа полиморфизма длин рестрикционных фрагментов исследованы частоты аллелей и генотипов полиморфных вариантов rs5780218 (с.-145delT) и rs3924587 (c.-89G>A) гена KISS1 у 258 женщин: 73 больных сахарным диабетом 1-го типа, 83 пациенток с наружным генитальным эндометриозом, 35 пациенток с сочетанием этих заболеваний и 67 женщин популяции (контрольной группы).
Результаты. В ходе анализа гена KISS1 выявлено, что шансы наличия сахарного диабета 1-го типа, наружного генитального эндометриоза и их сочетания статистически значимо не отличаются при наличии генотипов ins/del, del/del и ins/ins (rs5780218). Таким образом, аллель del и генотипы ins/del и del/del не ассоциированы с повышенным риском возникновения данных заболеваний. Обнаружено, что при наличии генотипа G/A по полиморфному варианту rs3924587 у пациенток с сахарным диабетом 1-го типа частота нормогонадотропной недостаточности яичников достоверно выше (отношение шансов 15,955; 95 % доверительный интервал 4,47–57,0; р < 0,05), чем при наличии генотипа G/G.
Заключение. Полученные результаты позволяют объяснить высокую частоту встречаемости недостаточности яичников у женщин с сахарным диабетом 1-го типа. Для таких пациенток с генотипом G/A, заинтересованных в реализации репродуктивной функции, даже при наличии регулярного менструального цикла целесообразно гормональное обследование в динамике с целью своевременной диагностики овариальной недостаточности и назначения гормональной терапии.
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Елена Владимировна Мишарина
Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта
Автор, ответственный за переписку.
Email: mishellena@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-0276-7112
SPIN-код: 7350-5674
Scopus Author ID: 57200069538
ResearcherId: K-2720-2018
канд. мед. наук
Россия, Санкт-ПетербургНаталья Сергеевна Осиновская
Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта
Email: natosinovskaya@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-7831-9327
SPIN-код: 3190-2307
Scopus Author ID: 6507794800
ResearcherId: K-1168-2018
канд. биол. наук
Россия, Санкт-ПетербургМария Игоревна Ярмолинская
Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта
Email: m.yarmolinskaya@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-6551-4147
SPIN-код: 3686-3605
Scopus Author ID: 7801562649
ResearcherId: P-2183-2014
д-р мед. наук, профессор РАН
Россия, Санкт-ПетербургСписок литературы
- Дедов И.И., Шестакова М.В., Викулова О.К., и др. Эпидемиологические характеристики сахарного диабета в Российской Федерации: клинико-статистический анализ по данным регистра сахарного диабета на 01.01.2021 // Сахарный диабет. 2021. Т. 24. № 3. С. 204–221. doi: 10.14341/DM12759
- Deltsidou A., Lemonidou C., Zarikas V., et al. Oligomenorrhoea in adolescents with type 1 diabetes mellitus: relationship to glycaemic control // Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 2010. Vol. 153. No. 1. P. 62–66. doi: 10.1016/j.ejogrb.2010.07.027
- Сибирская Е.В., Адамян Л.В., Колтунов И.Е., и др. Менструальная функция девочек, больных сахарным диабетом 1 типа // Проблемы репродукции. 2015. № 3. С. 84–88. doi: 10.17116/repro201521384-88
- Толпыгина М.Г., Тарасова М.А., Боровик Н.В., и др. Влияние компенсации углеводного обмена на восстановление овуляторной функции у женщин репродуктивного возраста с сахарным диабетом 1-го типа // Журнал акушерства и женских болезней. 2018. Т. 67. № 5. С. 42–49. DOI: 10/17816/JOWD67542-49
- Castellano J.M., Bensen A.H., Mikkelsen J.D., et al. Kisspeptins: bridging energy homeostasis and reproduction // Brain Res. 2010. Vol. 1364. P. 129–138. doi: 10.1016/j.drainres.2010.08.057
- Kauffman A.S., Park J.H., McPhie-Lalmansingh A.A., et al. The kisspeptin receptor GPR54 is required for sexual differentiation of the brain and behavior // J. Neurosci. 2007. Vol. 27. No. 33. P. 8826–8835. doi: 10.1523/JNEUROSCI.2099-07.2007
- Liu N., Lapcevich R.K., Underhill C.B., et al. Metastatin: a hyaluronan-binding complex from cartilage that inhibits tumor growth // Cancer Res. 2001. Vol. 61. No. 3. P. 1022–1028.
- Lapatto R., Pallais J.C., Zhang D., et al. Kiss1-/- mice exhibit more variable hypogonadism than Gpr54-/- mice // Endocrinology. 2007. Vol. 148. No. 10. P. 4927–4936. doi: 10.1210/en.2007-0078
- Teles M.G., Bianco S.D., Brito V.N., et al. A GPR54-activating mutation in a patient with central precocious puberty // N. Engl. J. Med. 2008. Vol. 358. No. 7. P. 709–715. doi: 10.1056/NEJMoa073443
- West A., Vojta P.J., Welch D.R., et al. Chromosome localization and genomic structure of the KiSS-1 metastasis suppressor gene (KISS1) // Genomics. 1998. Vol. 54. No. 1. P. 145–148. doi: 10.1006/geno.1998.5566
- Ohtaki T., Shintani Y., Honda S., et al. Metastasis suppressor gene KiSS-1 encodes peptide ligand of a G-protein-coupled receptor // Nature. 2001. Vol. 411. No. 6837. P. 613–617. doi: 10.1038/35079135
- Topaloglu A.K., Tello J.A., Kotan L.D., et al. Inactivating KISS1 mutation and hypogonadotropic hypogonadism // N. Engl. J. Med. 2012. Vol. 366. No. 7. P. 629–635. doi: 10.1056/NEJMoa1111184
- Seminara S.B., Messager S., Chatzidaki E.E., et al. The GPR54 gene as a regulator of puberty // N. Engl. J. Med. 2003. Vol. 349. No. 17. P. 1614–1627. doi: 10.1056/NEJMoa035322
- Funes S., Hedrick J.A., Vassileva G., et al. The KiSS-1 receptor GPR54 is essential for the development of the murine reproductive system // Biochem. Biophys. Res. Commun. 2003. Vol. 312. No. 4. P. 1357–1363. doi: 10.1016/j.bbrc.2003.11.066
- Endotext [Internet]. Marques P., Skorupskaite K., Rozario K.S., et al. Physiology of GnRH and gonadotropin secretion [дата обращения: 13.06.2023]. Доступ по ссылке: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK279070/
- Goodman R.L., Herbison A.E., Lehman M.N., et al. Neuroendocrine control of gonadotropin-releasing hormone: pulsatile and surge modes of secretion // J. Neuroendocrinol. 2022. Vol. 34. No. 5. doi: 10.1111/jne.13094
- Ruohonen S.T., Gaytan F., Usseglio Gaudi A., et al. Selective loss of kisspeptin signaling in oocytes causes progressive premature ovulatory failure // Hum. Reprod. 2022. Vol. 37, No. 4. P. 806–821. doi: 10.1093/humrep/deab287
- Ruohonen S.T., Poutanen M., Tena-Sempere M. Role of kisspeptins in the control of the hypothalamic-pituitary-ovarian axis: old dogmas and new challenges // Fertil. Steril. 2020. Vol. 114. No. 3. P. 465–474. doi: 10.1016/j.fertnstert.2020.06.038
- Masumi S., Lee E.B., Dilower I., et al. The role of Kisspeptin signaling in Oocyte maturation // Front. Endocrinol. (Lausanne). 2022. Vol. 13. doi: 10.3389/fendo.2022.917464
- Jayasena C.N., Abbara A., Comninos A.N., et al. Kisspeptin-54 triggers egg maturation in women undergoing in vitro fertilization // J. Clin. Invest. 2014. Vol. 124. No. 8. P. 3667–3677. doi: 10.1172/JCI75730
- Abbara A., Jayasena C.N., Christopoulos G., et al. Efficacy of kisspeptin-54 to trigger oocyte maturation in women at high risk of Ovarian Hyperstimulation Syndrome (OHSS) during In Vitro Fertilization (IVF) therapy // J. Clin. Endocrinol. Metab. 2015. Vol. 100. No. 9. P. 3322–3331. doi: 10.1210/jc.2015-2332
- Hu K.L., Chen Z., Li X., et al. Advances in clinical applications of kisspeptin-GnRH pathway in female reproduction // Reprod. Biol. Endocrinol. 2022. Vol. 20. No. 1. doi: 10.1186/s12958-022-00953-y
- Abbara A., Clarke S., Islam R., et al. A second dose of kisspeptin-54 improves oocyte maturation in women at high risk of ovarian hyperstimulation syndrome: a Phase 2 randomized controlled trial // Hum. Reprod. 2017. Vol. 32. No. 9. P. 1915–1924. doi: 10.1093/humrep/dex253
- Dudek M., Kołodziejski P.A., Pruszyńska-Oszmałek E., et al. Effects of high-fat diet-induced obesity and diabetes on Kiss1 and GPR54 expression in the hypothalamic-pituitary-gonadal (HPG) axis and peripheral organs (fat, pancreas and liver) in male rats // Neuropeptides. 2016. Vol. 56. P. 41–49. doi: 10.1016/j.npep.2016.01.005
- Bowe J.E., Foot V.L., Amiel S.A, et al. GPR54 peptide agonists stimulate insulin secretion from murine, porcine and human islets // Islets. 2012. Vol. 4. No. 1. P. 20–23. doi: 10.4161/isl.18261
- Cockwell H., Wilkinson D.A., Bouzayen R., et al. KISS1 expression in human female adipose tissue // Arch. Gynecol. Obstet. 2013. Vol. 287. No. 1. P. 143–147. doi: 10.1007/s00404-012-2514-0
- Yamasaki M., Kuwahara A., Iwasa T., et al. Development-related changes in the expression of the ovarian Kiss1 and Kiss1r genes and their sensitivity to human chorionic gonadotropin in prepubertal female rats // J. Reprod. Dev. 2017. Vol. 63. No. 4. P. 409–414. doi: 10.1262/jrd.2016-179
- Chakravarthi V.P., Khristi V., Ghosh S., et al. ESR2 is essential for gonadotropin-induced kiss1 expression in granulosa cells // Endocrinology. 2018. Vol. 159. No. 11. P. 3860–3873. doi: 10.1210/en.2018-00608
- Radovick S., Babwah A.V. Regulation of pregnancy: evidence for major roles by the uterine and placental kisspeptin/KISS1R signaling systems // Semin. Reprod. Med. 2019. Vol. 37. No. 4. P. 182–190. doi: 10.1055/s-0039-3400966
- Schaefer J., Vilos A.G., Vilos G.A., et al. Uterine kisspeptin receptor critically regulates epithelial estrogen receptor α transcriptional activity at the time of embryo implantation in a mouse model // Mol. Hum. Reprod. 2021. Vol. 27. No. 10. doi: 10.1093/molehr/gaab060
- Navarro V.M., Castellano J.M., Fernández-Fernández R., et al. Characterization of the potent luteinizing hormone-releasing activity of KiSS-1 peptide, the natural ligand of GPR54 // Endocrinology. 2005. Vol. 146. No. 1. P. 156–163. doi: 10.1210/en.2004-0836
- Backholer K., Bowden M., Gamber K., et al. Melanocortins mimic the effects of leptin to restore reproductive function in lean hypogonadotropic ewes // Neuroendocrinology. 2010. Vol. 91. No. 1. P. 27–40. doi: 10.1159/000260060
- Ярмолинская М.И., Айламазян Э.К. Генитальный эндометриоз. Различные грани проблемы. Санкт Петербург: Эко-Вектор, 2017.
- Simmen R.C.M., Brown D.M,. Quick C.M., et al. Co-morbidity of type 1 diabetes and endometriosis: bringing a new paradigm into focus // J. Endocrinol. 2019. Vol. 243. P. R47–R57. doi: 10.1530/JOE-19-0248
- Osum K.C., Burrack A.L., Martinov T., et al. Interferon-gamma drives programmed death-ligand 1 expression on islet β cells to limit T cell function during autoimmune diabetes // Sci. Rep. 2018. Vol. 8. No. 1. doi: 10.1038/s41598-018-26471-9
- Gueuvoghlanian-Silva B.Y., Bellelis P., Barbeiro D.F., et al. Treg and NK cells related cytokines are associated with deep rectosigmoid endometriosis and clinical symptoms related to the disease // J. Reprod. Immunol. 2018. Vol. 126. P. 32–38. doi: 10.1016/j.jri.2018.02.003
- Kocbek V., Grandi G., Blank F., et al. TNFα-induced IKKβ complex activation influences epithelial, but not stromal cell survival in endometriosis // Mol. Hum. Reprod. 2016. Vol. 22. No. 11. P. 768–777. doi: 10.1093/molehr/gaw054
- Qiao Y.C., Chen Y.L., Pan Y.H., et al. The change of serum tumor necrosis factor alpha in patients with type 1 diabetes mellitus: a systematic review and meta-analysis // PLoS One. 2017. Vol. 12. No. 4. doi: 10.1371/journal.pone.0176157
- Nothnick W.B., Falcone T., Olson M.R., et al. Macrophage migration inhibitory factor receptor, cd74, is overexpressed in human and baboon (papio anubis) endometriotic lesions and modulates endometriotic epithelial cell survival and interleukin 8 expression // Reprod. Sci. 2018. Vol. 25. No. 11. P. 1557–1566. doi: 10.1177/1933719118766262
- Sánchez-Zamora Y.I., Juarez-Avelar I., Vazquez-Mendoza A., et al. Altered macrophage and dendritic cell response in Mif-/- mice reveals a role of Mif for inflammatory-Th1 response in type 1 diabetes // J. Diabetes Res. 2016. Vol. 2016. doi: 10.1155/2016/7053963
- Gou Y., Li X., Li P., et al. Estrogen receptor β upregulates CCL2 via NF-κB signaling in endometriotic stromal cells and recruits macrophages to promote the pathogenesis of endometriosis // Hum. Reprod. 2019. Vol. 34. No. 4. P. 646–658. doi: 10.1093/humrep/dez019
- Burns K.A., Thomas S.Y., Hamilton K.J., et al. Early endometriosis in females is directed by immune-mediated estrogen receptor α and IL-6 cross-talk // Endocrinology. 2018. Vol. 159. No. 1. P. 103–118. doi: 10.1210/en.2017-00562
- Waugh K., Snell-Bergeon J., Michels A., et al. Increased inflammation is associated with islet autoimmunity and type 1 diabetes in the Diabetes Autoimmunity Study in the Young (DAISY) // PLoS One. 2017. Vol. 12. No. 4. doi: 10.1371/journal.pone.0174840
- Медикаментозная терапия генитального эндометриоза: реалии и перспективы: руководство для врачей / под ред. М.И. Ярмолинской. Москва: ГЭОТАР-Медиа, 2021. doi: 10.33029/9704-6034-4-МЕТ-2021-1-384
- Ярмолинская М.И. Цитокиновый профиль перитонеальной жидкости и периферической крови больных с наружным генитальным эндометриозом // Журнал акушерства и женских болезней. 2008. Т. 57. № 3. С. 30–34.
- Ярмолинская М.И., Ганбарли Н.Ф., Ткаченко Н.Н., и др. Кисспептин и синдром поликистозных яичников — есть ли связь? // Журнал акушерства и женских болезней. 2017. Т. 66. № 6. C. 73–80. doi: 10.17816/JOWD66673-80
- Timologou A., Zafrakas M., Grimbizis G., et al. Immunohistochemical expression pattern of metastasis suppressors KAI1 and KISS1 in endometriosis and normal endometrium // Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 2016. Vol. 199. P. 110–115. doi: 10.1016/j.ejogrb.2016.02.004
- Blasco V., Pinto F.M., Fernández-Atucha A., et al. Female infertility is associated with an altered expression of the neurokinin B/neurokinin B receptor and kisspeptin/kisspeptin receptor systems in ovarian granulosa and cumulus cells // Fertil. Steril. 2020. Vol. 114. No. 4. P. 869–878. doi: 10.1016/j.fertnstert.2020.05.006
- Codner E., Merino P.M., Tena-Sempere M. Female reproduction and type 1 diabetes: from mechanisms to clinical findings // Hum. Reprod. Update. 2012. Vol. 18. No. 5. P. 568–585. doi: 10.1093/humupd/dms024
- Сахарный диабет и репродуктивная система женщины: руководство для врачей / под ред. Э.К. Айламазян, Е.И. Абашовой, О.Н. Аржановой, и др. Москва: ГЭОТАР-Медиа, 2017.
- Григорян О.Р., Красновская Н.С., Михеев Р.К., и др. Состояние овариального резерва у женщин с сахарным диабетом 1 типа в репродуктивном периоде // Сахарный диабет. 2018. Т. 21. № 4. С. 264–270. doi: 10.14341/DM9480
- Jonasson J.M., Brismar K., Sparén P., et al. Fertility in women with type 1 diabetes: a population-based cohort study in Sweden // Diabetes Care. 2007. Vol. 30. No. 9. P. 2271–2276. doi: 10.2337/dc06-2574
- Потин В.В., Боровик Н.В., Тиселько А.В. Сахарный диабет и репродуктивная система женщины // Журнал акушерства и женских болезней. 2006. Т. 55. № 1. С. 85–89.
- Айламазян Э.К., Ярмолинская М.И., Ганбарли Н.Ф. и др. Роль метастина в патогенезе наружного генитального эндометриоза // Журнал акушерства и женских болезней. 2017. Т. 66. № 3. C. 16–24. doi: 10.17816/JOWD66316-24
Дополнительные файлы
