Плазмабластный ответ при острой SARS-CoV-2-инфекции
- Авторы: Бязрова М.Г.1,2, Сухова М.М.1,3, Михайлов А.А.1,3, Романова А.Ф.3, Юсубалиева Г.М.4, Филатов А.В.1,3
-
Учреждения:
- ФГБУН ГНЦ «Институт иммунологии» ФМБА
- ФГАОУ ВО Российский университет дружбы народов имени Патриса Лумумбы
- ФГБОУ ВО Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова
- Федеральный научно-клинический центр специализированных видов медицинской помощи и медицинских технологий ФМБА
- Выпуск: Том 14, № 3 (2024)
- Страницы: 471-475
- Раздел: КРАТКИЕ СООБЩЕНИЯ
- URL: https://bakhtiniada.ru/2220-7619/article/view/262066
- DOI: https://doi.org/10.15789/2220-7619-PRD-16670
- ID: 262066
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Плазмабласты представляют собой популяцию коротко живущих B-клеток, которые появляются в циркуляции вскоре после вакцинации и в процессе острой инфекции. Плазмабласты образуются из покоящихся В-лимфоцитов, от которых они отличаются способностью секретировать антитела, что делает их похожими на плазматические клетки. От последних они отличаются экспрессией на своей поверхности BCR рецептора. Плазмабластный ответ является показателем успешности вакцинации, а также помогает в прогнозировании уровня антител после выздоровления или вакцинации. Однако определение и классификация плазмабластов сталкивается с большими экспериментальными и теоретическими трудностями. Целью работы являлось определение особенностей плазмабластного ответа при острой SARS-CoV-2-инфекции. В исследование были включены пациенты (n = 28), характеризовавшиеся тяжелой формой COVID-19. Забор крови для исследования проводили однократно на 10–18-е сутки с момента госпитализации. B-клетки выделяли методом иммуномагнитной сепарации. Клетки фенотипировали с помощью проточной цитометрии. Секрецию IgM и IgG определяли методом ELISpot. Субпопуляции B-клеток выделяли с помощью проточного сортировщика. У пациентов с COVID-19 по сравнению со здоровыми донорами наблюдалось примерно четырехкратное повышение уровня общих плазмабластов. Еще более выраженное превышение над отрицательным контролем наблюдалось для RBD-специфичных плазмабластов. К этому времени количество RBD-специфичных B-клеток памяти оставалось невысоким. Это свидетельствует том, что на ранней стадии COVID-19 B-клетки памяти еще не успевают сформироваться и гуморальный иммунитет обеспечивался исключительно плазмабластами. По своему составу плазмабласты на треть являлись IgM⁺ клетками. Доля плазмабластов с поверхностным IgG почти в 7 раз была ниже. Такое распределение между изотипами B-клеточных рецепторов BCR соответствовало первичному характеру иммунного ответа при COVID-19. Примерно треть плазмабластов несла антиген CD138, при этом у 4-х пациентов доля CD138⁺ клеток была выше 50%. Следует отметить, что маркер CD138 характерен для поздней стадии созревания плазмабластов и который также встречается на плазматических клетках. Популяция CD27+CD38⁺ была разделена по экспрессии антигена CD138. Методом ELISpot нами было показано, что значительная часть циркулирующих плазмабластов являются антителосекретирующими клетками. Таким образом нами было показано, что при инфекции SARS-CoV-2 формируется выраженный плазмабластный ответ. Среди циркулирующих плазмабластов можно выделить как ранние, так и более поздние плазмабласты, которые характеризуются отсутствием поверхностного BCR, но которые несут антиген CD138. Определение того, как плазмабласты соотносятся с другими B-клеточными популяциями имеет первостепенное значение для разработки новых методов лечения COVID-19 и для создания перспективных вакцин против SARS-CoV-2-инфекции.
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Мария Георгиевна Бязрова
ФГБУН ГНЦ «Институт иммунологии» ФМБА; ФГАОУ ВО Российский университет дружбы народов имени Патриса Лумумбы
Автор, ответственный за переписку.
Email: mbyazrova@list.ru
научный сотрудник лаборатории иммунохимии
Россия, 115522, Москва, Каширское ш., 24; Москва, улица Миклухо-Маклая, 6М. М. Сухова
ФГБУН ГНЦ «Институт иммунологии» ФМБА; ФГБОУ ВО Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова
Email: mbyazrova@list.ru
младший научный сотрудник лаборатории иммунохимии
Россия, 115522, Москва, Каширское ш., 24; 119991, Москва, Ленинские горы, д. 1А. А. Михайлов
ФГБУН ГНЦ «Институт иммунологии» ФМБА; ФГБОУ ВО Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова
Email: mbyazrova@list.ru
лаборант лаборатории иммунохимии, студент кафедры иммунология
Россия, 115522, Москва, Каширское ш., 24; 119991, Москва, Ленинские горы, д. 1А. Ф. Романова
ФГБОУ ВО Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова
Email: mbyazrova@list.ru
младший научный сотрудник лаборатории иммунохимии
Россия, 119991, Москва, Ленинские горы, д. 1Г. М. Юсубалиева
Федеральный научно-клинический центр специализированных видов медицинской помощи и медицинских технологий ФМБА
Email: mbyazrova@list.ru
кандидат медицинских наук, старший научный сотрудник лаборатории клеточных технологий
Россия, МоскваА. В. Филатов
ФГБУН ГНЦ «Институт иммунологии» ФМБА; ФГБОУ ВО Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова
Email: mbyazrova@list.ru
Россия, 115522, Москва, Каширское ш., 24; 119991, Москва, Ленинские горы, д. 1
Список литературы
- Бязрова М.Г., Астахова Е.А., Спиридонова А.Б., Васильева Ю.В., Прилипов А.Г., Филатов А.В. Стимуляция В-лимфоцитов человека in vitro с помощью ИЛ-21/CD40L и их характеристика // Иммунология. 2020. Т. 41, № 1. С. 18–27. [Byazrova M.G., Astakhova E.A., Spiridonova A.B., Vasileva Yu.V., Prilipov A.G., Filatov A.V. IL-21/CD40L stimulation of human B-lymphocytes in vitro and their characteristics. Immunologiya = Immunologiya, 2020, vol. 41, no. 6, pp. 18–27. (In Russ.)] doi: 10.33029/0206-4952-2020-41-6-00-00
- Appanna R., Kg S., Xu M.H., Toh Y.X., Velumani S., Carbajo D., Lee C.Y., Zuest R., Balakrishnan T., Xu W., Lee B., Poidinger M., Zolezzi F., Leo Y.S., Thein T.L., Wang C.I., Fink K. Plasmablasts during acute Dengue infection represent a small subset of a broader virus-specific memory B cell pool. EBioMedicine, 2016, vol. 12, pp. 178–188. doi: 10.1016/j.ebiom.2016.09.003
- Byazrova M., Yusubalieva G., Spiridonova A., Efimov G., Mazurov D., Baranov K., Baklaushev V., Filatov A. Pattern of circulating SARS-CoV-2-specific antibody-secreting and memory B-cell generation in patients with acute COVID-19. Clin. Transl. Immunology, 2021, vol. 10, no. 2: e1245. doi: 10.1002/cti2.1245
- Kuri-Cervantes L., Pampena M.B., Meng W., Rosenfeld A.M., Ittner C.A.G., Weisman A.R., Agyekum R.S., Mathew D., Baxter A.E., Vella L.A., Kuthuru O., Apostolidis S.A., Bershaw L., Dougherty J., Greenplate A.R., Pattekar A., Kim J., Han N., Gouma S., Weirick M.E., Arevalo C.P., Bolton M.J., Goodwin E.C., Anderson E.M., Hensley S.E., Jones T.K., Mangalmurti N.S., Luning Prak E.T., Wherry E.J., Meyer N.J., Betts M.R. Comprehensive mapping of immune perturbations associated with severe COVID-19. Sci. Immunol., 2020, vol. 5, no. 49: eabd7114. doi: 10.1126/sciimmunol.abd7114
- Papillion A.M., Kenderes K.J., Yates J.L., Winslow G.M. Early derivation of IgM memory cells and bone marrow plasmablasts. PLoS One, 2017, vol. 12, no. 6: e0178853. doi: 10.1371/journal.pone.0178853
- Pracht K., Meinzinger J., Daum P., Schulz S.R., Reimer D., Hauke M., Roth E., Mielenz D., Berek C., Côrte-Real J., Jäck H.M., Schuh W. A new staining protocol for detection of murine antibody-secreting plasma cell subsets by flow cytometry. Eur. J. Immunol., 2017, vol. 47, no. 8, pp. 1389–1392. doi: 10.1002/eji.201747019
- Rodda L.B., Pepper M. Metabolic constraints on the B cell response to malaria. Nat. Immunol., 2020, vol. 21, no. 7, pp. 722–724. doi: 10.1038/s41590-020-0718-1
- Sanz I., Wei C., Jenks S.A., Cashman K.S., Tipton C., Woodruff M.C., Hom J., Lee F.E. Challenges and opportunities for consistent classification of human B cell and plasma cell populations. Front. Immunol., 2019, vol. 10: 2458. doi: 10.3389/fimmu.2019.02458
- Shlomchik M.J., Weisel F. B cell primary immune responses. Immunol. Rev., 2019, vol. 288, no. 1, pp. 5–9. doi: 10.1111/imr.12756
- Woodruff M.C., Ramonell R.P., Nguyen D.C., Cashman K.S., Saini A.S., Haddad N.S., Ley A.M., Kyu S., Howell J.C., Ozturk T., Lee S., Suryadevara N., Case J.B., Bugrovsky R., Chen W., Estrada J., Morrison-Porter A., Derrico A., Anam F.A., Sharma M., Wu H.M., Le S.N., Jenks S.A., Tipton C.M., Staitieh B., Daiss J.L., Ghosn E., Diamond M.S., Carnahan R.H., Crowe J.E. Jr., Hu W.T., Lee F.E., Sanz I. Extrafollicular B cell responses correlate with neutralizing antibodies and morbidity in COVID-19. Nat. Immunol., 2020, vol. 21, no. 12, pp. 1506–1516. doi: 10.1038/s41590-020-00814-z
Дополнительные файлы
