Исследование особенностей транспорта вирусного материала SARS-CoV-2 в нейронах неокортекса сирийских хомяков
- Авторы: Чепур С.В.1, Парамонова Н.М.1,2, Мясникова И.А.1, Плужников Н.Н.1, Тюнин М.А.1, Каневский Б.А.1, Ильинский Н.С.1
-
Учреждения:
- ФГБУ Государственный научно-исследовательский испытательный институт военной медицины Министерства обороны РФ
- ФГУН Институт эволюционной физиологии и биохимии им. И.М. Сеченова РАН
- Выпуск: Том 14, № 1 (2024)
- Страницы: 24-34
- Раздел: ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ
- URL: https://bakhtiniada.ru/2220-7619/article/view/256763
- DOI: https://doi.org/10.15789/2220-7619-ISV-16270
- ID: 256763
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Введение. С учетом опыта пандемии новой коронавирусной инфекции COVID-19 в настоящее время значительно возросла актуальность исследований клеточных процессов сборки и транспорта вируса SARS-CoV-2 для обоснования выбора точек фармакологического воздействия. Прослеженная широкая распространенность вируса SARS-CoV-2 в организме и его способность проникать через гематоэнцефалический барьер, определяет возможность морфологической оценки процессов его жизненного цикла в нейронах неокортекса с использованием метода электронной микроскопии, что и стало целью настоящей работы.
Материалы и методы. Вирус SARS-CoV-2 получали от больных, накапливали на культуре клеток Vero(B). Электронномикроскопическое исследование (ЭМИ) транспорта вирусных частиц проводили на самцах сирийских хомяков. Животным интраназально вводили по 26 мкл культуры вируса в количестве 4 × 104 ТЦД50/мл. Эвтаназия животных проводилась на 3, 7 и 28 сутки после заражения. Извлеченный мозг подготавливали для ЭМИ согласно ранее описанным в литературе методикам. Результаты регистрировали с помощью электронного микроскопа FEI Tecnai G2 Spitit BioTWIN.
Результаты. При ЭМИ прослежены морфологические эквиваленты вариантов транспорта вируса в нейронах неокортекса в динамике инфекционного процесса у сирийских хомяков. После синтеза белки вирусной мембраны включаются в транспортные везикулы в терминальных канальцах эндоплазматического ретикулума (ЭР) и поступают в промежуточный компартмент (ПК) — совокупность гладкостенных мембранных везикул между эндоплазматическим ретикулумом (ЭР) и аппаратом Гольджи (АГ). В первые 3-е суток после заражения вирусные копии включаются в АГ в транспортных везикулах, сформированных мембранами ПК. Из-за больших размеров вирусные частицы ограничены расширенными концами подвижных цистерн АГ. Морфологически выявлена деструкция мембран АГ на 7-е сутки инфекционного процесса, что свидетельствует о взаимодействии везикул ПК с сохранившимися мембранными элементами АГ или о реализации их самостоятельной транспортной функции по доставке вируса к периферии клетки и далее в межклеточное пространство. В отростках нейронов прослежен транспорт зрелых вирусных частиц, ассоциированных с элементами цитоскелета, что не выявляли в других локусах персистирования вируса.
Заключение. По результатам полученных данных можно сформировать представление о накопительном значении для прогрессии и персистирования SARS-CoV-2-инфекции в кортикальных нейронах. Ранние признаки заражения нейрона представлены характерными изменениями ядер, гипертрофией ЭР и формированием «вирусных фабрик» на основе ЭР, ПК и АГ. Внутри нейрона происходит формирование вирусной биомассы, выход вириона из клетки в большей степени сопровождается ее гибелью, нежели при включении вируса в лизосомно-эндосомную систему
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
С. В. Чепур
ФГБУ Государственный научно-исследовательский испытательный институт военной медицины Министерства обороны РФ
Email: ropsha.home@rambler.ru
д.м.н., профессор, начальник
Россия, Санкт-ПетербургН. М. Парамонова
ФГБУ Государственный научно-исследовательский испытательный институт военной медицины Министерства обороны РФ; ФГУН Институт эволюционной физиологии и биохимии им. И.М. Сеченова РАН
Email: ropsha.home@rambler.ru
старший научный сотрудник, научный сотрудник
Россия, Санкт-Петербург; Санкт-ПетербургИ. А. Мясникова
ФГБУ Государственный научно-исследовательский испытательный институт военной медицины Министерства обороны РФ
Автор, ответственный за переписку.
Email: ropsha.home@rambler.ru
к.б.н., старший научный сотрудник научно-исследовательского испытательного центра
Россия, Санкт-ПетербургН. Н. Плужников
ФГБУ Государственный научно-исследовательский испытательный институт военной медицины Министерства обороны РФ
Email: ropsha.home@rambler.ru
д.м.н., профессор, главный научный сотрудник
Россия, Санкт-ПетербургМ. А. Тюнин
ФГБУ Государственный научно-исследовательский испытательный институт военной медицины Министерства обороны РФ
Email: ropsha.home@rambler.ru
к.м.н., зам. начальника научно-исследовательского испытательного центра
Россия, Санкт-ПетербургБ. А. Каневский
ФГБУ Государственный научно-исследовательский испытательный институт военной медицины Министерства обороны РФ
Email: ropsha.home@rambler.ru
зам. начальника научно-исследовательского отдела
Россия, Санкт-ПетербургН. С. Ильинский
ФГБУ Государственный научно-исследовательский испытательный институт военной медицины Министерства обороны РФ
Email: ropsha.home@rambler.ru
зам. начальника научно-исследовательского отдела
Россия, Санкт-ПетербургСписок литературы
- Гайер Г. Электронная гистохимия. М.: Мир, 1974. 488 с. [Geyer G. Electronic histochemistry. Moscow: Mir, 1974. 488 p. (In Russ.)]
- Макаренко И.Е., Авдеева О.И., Ванатиев Г.В., Рыбакова А.В., Ходько С.В., Макарова М.Н., Макаров В.Г. Возможные пути и объемы введения лекарственных средств лабораторным животным // Международный вестник ветеринарии. 2013. № 3. С. 72–78. [Makarenko I.E., Avdeeva O.I., Vanati G.V., Rybakova A.V., Khodko S.V., Makarova M.N., Makarov V.G. Possible ways of administration and standard drugs in laboratory animals. Mezhdunarodnyi vestnik veterinarii = International Bulletin of Veterinary Medicine, 2013, no. 3, pp. 72–78. (In Russ.)]
- Матвеев Ю.А. Система ангиотензина II коры мозжечка и ее значение в нейрососудистой регуляции // Вестник новых медицинских технологий. 2020. № 1. С. 90–95. [Matveev Yu.A. Angiotensin II system in cerebellum cortex and its role in neuro-vascular regulation. Vestnik novykh meditsinskikh tekhnologii = Journal of New Medical Technologies, 2020, no. 1, pp. 90–95. (In Russ.)] doi: 10.24411/2075-4094-2020-16498
- Чепур С.В., Тюнин М.А., Мясников В.А., Алексеева И.И., Владимирова О.О., Ильинский Н.С., Никишин А.С., Шевченко В.А., Смирнова А.В. Поражение органов и тканей SARS-CoV-2: биологическая модель на сирийских хомяках Mesocricetus auratus для экспериментальных (доклинических) исследований // Клиническая и экспериментальная морфология. 2021. Т. 10, № 4. С. 25–34. [Chepur S.V., Tyunin M.A., Myasnikov V.A., Alekseeva I.I., Vladimirova O.O., Iljinskiy N.S., Nikishin A.S., Shevchenko V.A., Smirnova A.V. Damage to organs and tissues of SARS-CoV-2: a biological model on Syrian hamsters for experimental (preclinical) studies. Klinicheskaya i eksperimental’naya morfologiya = Clinical and Experimental Morphology, 2021, vol. 10, no. 4, pp. 25–34. (In Russ.)] doi: 10.31088/CEM2021.10.4.25-34
- Fehr A.R., Perlman S. Coronaviruses: an overview of their replication and pathogenesis. Methods Mol. Biol., 2015, vol. 1282, pp. 1–23. doi: 10.1007/978-1-4939-2438-7_1
- Ghosh S., Dellibovi-Ragheb T.A., Kerviel A., Pak E., Qiu Q., Fisher M., Takvorian P.M., Bleck C., Hsu V.W., Fehr A.R., Perlman S., Achar S.R., Straus M.R., Whittaker G.R., de Haan C.A.M., Kehrl J., Altan-Bonnet G., Altan-Bonnet N. β-coronavirus use lysosomes for egress instead of the biosynthetic secretory pathway. Cell, 2020, vol. 183, no. 6, pp. 1520–1535. doi: 10.1016/j.cell.2020.10.039
- Griffiths G., Ericsson M., Krijnse-Locker J., Nilsson T., Goud B., Söling H.D., Tang B.L., Wong S.H., Hong W. Localization of the Lys, Asp, Glu, Leu tetrapeptide receptor to the Golgi complex and the intermediate compartment in mammalian cells. J. Cell. Biol., 1994, vol. 127, no. 6, pt. 1, pp. 1557–1574. doi: 10.1083/jcb.127.6.1557
- Hanus C., Geptin H., Tushev G., Garg S., Alvarez-Castelao B., Sambandan S., Kochen L., Hafner A.S., Langer J.D., Schuman E.M. Unconventional secretory processing diversifies neuronal ion channel properties. Elife, 2016, vol. 5. doi: 10.7554/eLife.20609
- Hartenian E., Nandakumar D., Lari A., Ly M., Tucker J.M., Glaunsinger B.A. The molecular virology of coronaviruses. J. Biol. Chem., 2020, vol. 295, no. 37, pp. 12910–12934. doi: 10.1074/jbc.REV120.013930
- Horstmann H., Ng C.P., Tang B.L., Hong W. Ultrastructural characterization of endoplasmic reticulum-Golgi transport containers (EGTC). J. Cell. Sci., 2002, vol. 115, no. 22, pp. 4263–4273. doi: 10.1242/jcs.00115
- Klein S., Cortese M., Winter S.L., Wachsmuth-Melm M., Neufeldt C.J., Cerikan B., Stanifer M.L., Boulant S., Bartenschlager R., Chlanda P. SARS-CoV-2 structure and replication characterized by in situ cryo-electron tomography. Nat. Commun., 2020, vol. 11, no. 5885. doi: 10.1038/s41467-020-19619-7
- Klumperman J., Locker J.K., Meijer A., Horzinek M.C., Geuze H.J., Rottier P.J. Coronavirus M proteins accumulate in the Golgi complex beyond the site of virion budding. J. Virol., 1994, vol. 68, no. 10, pp. 6523–6534. doi: 10.1128/jvi.68.10.6523-6534.1994
- Plutner H., Cox A.D., Pind S., Khosravi-Far R., Bourne J.R., Schwaninger R., Der C.J., Balch W.E. Rab1b regulates vesicular t-ransport between the e-ndoplasmic reticulum and successive Golgi compartments. J. Cell. Biol., 1991, vol. 115, no. 1, pp. 31–43. doi: 10.1083/jcb.115.1.31
- Reed L.J., Muench H. A simple method of estimating fifty percent endpoints. Am. J. Epidemiol., 1938, vol. 27, no. 3, pp. 493–497. doi: 10.1093/oxfordjournals.aje.a118408
- Ritchie G., Harvey D.J., Feldmann F., Stroeher U., Feldmann H., Royle L., Dwek R.A., Rudd P.M. Identification of N-linked carbohydrates from severe acute respiratory syndrome (SARS) spike glycoprotein. Virology, 2010, vol. 399, no. 2, pp. 257–269. doi: 10.1016/j.virol.2009.12.020
- Sannerud R., Marie M., Nizak C., Dale H.A., Pernet-Gallay K., Perez F., Goud B., Saraste J. Rab1 defines a novel pathway connecting the pre-Golgi intermediate compartment with the cell periphery. Mol. Biol. Cell, 2006, vol. 17, no. 4, pp. 1514–1526. doi: 10.1091/mbc.E05-08-0792
- Saraste J., Prydz K. Assembly and cellular exit of Coronaviruses: hijacking an unconventional secretory pathway from the pre-golgi intermediate compartment via the Golgi ribbon to the extracellular space. Cells, 2021, vol. 10, no. 3: 503. doi: 10.3390/cells10030503
- Schoeman D., Fielding B.C. Coronavirus envelope protein: current knowledge. Virol. J., 2019, vol. 16, no. 1: 69. doi: 10.1186/s12985-019-1182-0
- Stertz S., Reichelt M., Spiegel M., Kuri T., Martinez-Sobrido L., Garcia-Sastre A., Weber F., Kochs G. The intracellular sites of early replication and budding of SARS-coronavirus. Virology, 2007, vol. 361, no. 2, pp. 304–315. doi: 10.1016/j.virol.2006.11.027
- Sturman L.S., Holmes K.V. The molecular biology of coronaviruses. Adv. Virus Res., 1983, vol. 28, pp. 35–112. doi: 10.1016/S0065-3527(08)60721-6
- TaŞtan C., Yurtsever B., Sir KarakuŞ G., Dilek KanÇaĞi D., Demİr S., Abanuz S., Seyİs U., Yildirim M., Kuzay R., Elibol Ö., Arbak S., Açikel E., Birdoğan S., Sezerman U.O., Kocagöz A.S., Yalçin K., Ovali E. SARS-CoV-2 isolation and propagation from Turkish COVID-19 patients. Turk. J. Biol., 2020, vol. 44, no. 3, pp. 192–202. doi: 10.3906/biy-2004-113
- Tooze S.A., Tooze J., Warren G. Site of addition of N-acetyl-galactosamine to the E1 glycoprotein of mouse hepatitis virus-A59. J. Cell. Biol., 1988, vol. 106, no. 5, pp. 1475–1487. doi: 10.1083/jcb.106.5.1475
- Ulasli M., Verheije M.H., de Haan C.A., Reggiori F. Qualitative and quantitative ultrastructural analysis of the membrane rearrangements induced by coronavirus. Cell. Microbiol., 2010, vol. 12, no. 6, pp. 844–861. doi: 10.1111/j.1462-5822.2010.01437.x
- Volchuk A., Amherdt M., Ravazzola M., Brugger B., Rivera V.M., Clackson T., Perrelet A., Söllner T., Rothman J.E., Orci L. Megavesicles implicated in the rapid transport of intracisternal aggregates across the Golgi stack. Cell, 2000, vol. 102, no. 3, pp. 335–348. doi: 10.1016/S0092-8674(00)00039-8
- Westerbeck J.W., Machamer C.E. The infectious bronchitis coronavirus envelope protein alters Golgi pH to protect the spike protein and promote the release of infectious virus. J. Virol., 2019, vol. 93, no. 11: e00015-19. doi: 10.1128/JVI.00015-19
- Yao P., Zhang Y., Sun Y., Gu Y., Xu F., Su B., Chen C., Lu H., Wang D., Yang Z., Niu B., Chen J., Xie L., Chen L., Zhang Y., Wang H., Zhao Y., Guo Y., Ruan J., Zhu Z., Fu Z., Tian D., An Q., Jiang J., Zhu H. Isolation and growth characteristics of SARS-CoV-2 in Vero cell. Virol. Sin., 2020, vol. 35, no. 3, pp. 348–350. doi: 10.1007/s12250-020-00241-2
Дополнительные файлы
