Результаты микробиологической оценки санационного эффекта газообразного озона при лечении экспериментального инфицированного панкреонекрозакроза
- Авторы: Винник Ю.С.1, Теплякова О.В.2, Перьянова О.В.1, Якимов С.В.1,3, Ергулеева А.Д.1,3, Понедельник Д.Н.1
-
Учреждения:
- Красноярский государственный медицинский университет имени профессора В. Ф. Войно-Ясенецкого
- Красноярский государственный медицинский университет имени профессора В.Ф. Войно-Ясенецкого
- Клиническая больница «РЖД-Медицина» города Красноярск
- Выпуск: Том 15, № 4 (2022)
- Страницы: 290-299
- Раздел: Оригинальные статьи
- URL: https://bakhtiniada.ru/2070-478X/article/view/233324
- DOI: https://doi.org/10.18499/2070-478X-2022-15-4-290-299
- ID: 233324
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Обоснование. Поиск новых средств и способов санации брюшной полости сохраняет свое значение на фоне растущей антибиотикорезистентности бактериальных возбудителей хирургической инфекции. Особую актуальность эта проблема приобретает при развитии гнойных осложнений острого панкреатита в связи со сложностью радикального контроля источника воспаления.
Цель: оценить результаты микробиологического исследования перитонеального экссудата, биоптатов поджелудочной железы, артериальной крови на фоне местного применения газообразного озона в лечении экспериментального инфицированного панкреонекроза.
Методы. Проспективное экспериментальное исследование выполнено на 43 лабораторных животных - кроликах породы Советская шиншилла. В группе-1 (13 особей), а также группах-2 и 3 (по 12 особей) моделировали инфицированный панкреонекроз c использованием клинического штамма A. baumannii. Через 24 часа и 60 часов под наркозом осуществляли санационные релапаротомии: в группе-1 – с применением 0,9% раствора натрия хлорида, в группе-2 – 0,02% водного раствора хлоргексидина биглюконата, в группе-3 – озоно-кислородной газовой смеси. Контрольная группа включала шесть ложнооперированных особей. Животные выведены из эксперимента через 96 часов c забором материалов для микробиологического исследования.
Результаты. У животных группы-1 отмечено увеличением частоты (с 23,1 до 100,0%, р=0,003) и степени (с 3,5 (3,0; 4,5) до 7,0 (5,5; 7,5) lg KOE/мл, р<0,001) бактериальной контаминации перитонеального экссудата в сроки от 24 до 96 часов. Особи группы-2 по большинству показателей значимо не отличались от достигнутых в группе-1. Вместе с тем, бактериальное число A. baumannii в перитонеальном экссудате через 60 часов (6,0 (5,7; 6,7) lg KOE/мл), а также степень вторичной (энтерогенной) контаминации поджелудочной железы (5,5 (5,0; 6,7) lg КОЕ/г) и перитонеального экссудата через 96 часов (7,7 (7,0; 8,0) lg КОЕ/мл) в группе-2 значимо превышали аналогичные показатели группы-1 (р≤0,010). Внутрибрюшинное применение направленного потока газообразного озона через 24 и 60 часов позволило к исходу четвертых суток достичь элиминации A. baumannii в 80,0% проб панкреатических биоптатов (р=0,002 и р=0,007 при сравнении с результатами групп-1 и 2, соответственно), предотвратить его распространение в перитонеальный экссудат и системный кровоток. Обработка газообразным озоном также сопровождалась снижением в анализируемых пробах как бактериального числа A. baumannii, так и степени вторичной (энтерогенной) контаминации другими условно-патогенными микроорганизмами.
Заключение. Перспективы трансляции полученных результатов в клиническую практику определяют актуальность продолжения исследования с использованием современных молекулярных методов бактериологического анализа и оценкой безопасности различных режимов направленной обработки тканей и органов брюшной полости озоно-кислородной газовой смесью.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Юрий Семенович Винник
Красноярский государственный медицинский университет имени профессора В. Ф. Войно-Ясенецкого
Email: yuvinnik@ya.ru
ORCID iD: 0000-0002-8995-2862
SPIN-код: 5070-8140
ResearcherId: 74632014
заслуженный деятель науки РФ, д.м.н., профессор, заведующий кафедрой общей хирургии имени профессора М. И. Гульмана
Россия, Россия, 660022, Красноярск, улица Партизана Железняка, д.1Ольга Валериевна Теплякова
Красноярский государственный медицинский университет имени профессора В.Ф. Войно-Ясенецкого
Email: teplyakova-olga@ya.ru
ORCID iD: 0000-0003-0005-3316
SPIN-код: 4975-0569
Scopus Author ID: 55791469400
ResearcherId: M-7060-2014
доктор медицинских наук, доцент, профессор кафедры общей хирургии имени профессора М.И. Гульмана
Россия, Россия, 660022, Красноярск, улица Партизана Железняка, д.1Ольга Владимировна Перьянова
Красноярский государственный медицинский университет имени профессора В. Ф. Войно-Ясенецкого
Email: perianova@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-7150-9670
SPIN-код: 2470-8992
Scopus Author ID: 55613927200
ResearcherId: N-7432-2015
к.б.н., доцент, доцент кафедры микробиологии имени доцента Б.М.Зельмановича
Реюньон, Россия, 660022, Красноярск, улица Партизана Железняка, д.1Сергей Владимирович Якимов
Красноярский государственный медицинский университет имени профессора В. Ф. Войно-Ясенецкого;Клиническая больница «РЖД-Медицина» города Красноярск
Email: ozon6969@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-1586-3349
д.м.н., профессор, профессор кафедры общей хирургии имени профессора М.И. Гульмана
Россия, Россия, 660022, Красноярск, улица Партизана Железняка, д.1Анна Дмитриевна Ергулеева
Красноярский государственный медицинский университет имени профессора В. Ф. Войно-Ясенецкого; Клиническая больница «РЖД-Медицина» города Красноярск
Email: anytaerguleewa@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-7000-4467
https://krasgmu.ru/
аспирант кафедры общей хирургии имени профессора М.И. Гульмана; врач-хирург операционного блока
Россия, Россия, 660022, Красноярск, улица Партизана Железняка, д.1Дарья Николаевна Понедельник
Красноярский государственный медицинский университет имени профессора В. Ф. Войно-Ясенецкого
Автор, ответственный за переписку.
Email: ponedela.dasha12@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-4095-9147
студентка 6 курса лечебного факультета, член СНО кафедры общей хирургии имени профессора М. И. Гульмана
Россия, Россия, 660022, Красноярск, улица Партизана Железняка, д.1Список литературы
- Vinnik YuS, Peryanova OV, Yakimov SV, Anishina OV, Petrushko SI. Application of the ozonated sodium solution in complex with antibiotics in management and prophylacsis of the acute pancreatitis septic complications. Annaly khirurgicheskoy gepatologii. 2002; 7: 1: 59-62. (in Russ.)
- Glukhov AA, Sukhanov VG, Ostroushko AP, Novikov II. Application Videolaparoscopic Hydropress Sanations of an Abdominal Cavity at an Acute Peritonitis. Journal of experimental and clinical surgery. 2009; 2: 3: 199-206. (in Russ.)
- Qadan M, Dajani D, Dickinson A, Polk HC Jr. Meta-analysis of the effect of peritoneal lavage on survival in experimental peritonitis. Br J Surg. 2010; 97: 2: 151-159. doi: 10.1002/bjs.6906
- Mashbari H, Hemdi M, Chow KL, Doherty JC, Merlotti GJ, Salzman SL, et al. A Randomized Controlled Trial on Intra-Abdominal Irrigation during Emergency Trauma Laparotomy; Time for Yet Another Paradigm Shift. Bull Emerg Trauma. 2018; 6: 2: 100-107. doi: 10.29252/beat-060203
- Sada H, Egi H, Ide K, Sawada H, Sumi Y, Hattori M, et al. Peritoneal lavage with hydrogen-rich saline can be an effective and practical procedure for acute peritonitis. Surg Today. 2021; 51: 11: 1860-1871. doi: 10.1007/s00595-021-02271-z
- Oztan MO, Ercan UK, Aksoy Gokmen A, Simsek F, Ozdemir GD, Koyluoglu G. Irrigation of peritoneal cavity with cold atmospheric plasma treated solution effectively reduces microbial load in rat acute peritonitis model. Sci Rep. 2022; 12: 1: 3646. doi: 10.1038/s41598-022-07598-2
- Salakhov EK, Vlasov AP. Methods readjustment abdominal disseminated peritonitis. Sovremennye problemy nauki i obrazovaniya. 2014; 1: 157. (in Russ.)
- Sazhnev DI, Glukhov AA, Andreev AA. Abdominal Аbscesses. Journal of experimental and clinical surgery. 2019; 12: 4: 282-289. (in Russ.) doi: 10.18499/2070-478X-2019-12-4-282-289
- Mokhov EM, Morozov AM, Kadykov VA, Askerov EM, Serova NE. The role of bacteriophages in the complex treatment of peritonitis of appendicular origin. Journal of experimental and clinical surgery of experimental and clinical surgery. 2017; 10: 4: 265-268. (in Russ.) doi: 10.18499/2070-478X-2017-10-4-265-268
- Sukovatykh BS, Zatolokina MA, Mosolova AV. Using The Immobilized Form of the Miramistin® in Experimental Confirmation of Diffuse Peritonitis Treatment. Journal of experimental and clinical surgery. 2021; 14: 1: 53-60. (in Russ.) doi: 10.18499/2070-478X-2021-14-1-53-60.
- Jia Y, Li Z, Feng Y, Cui R, Dong Y, Zhang X, et al. Methane-Rich Saline Ameliorates Sepsis-Induced Acute Kidney Injury through Anti-Inflammation, Antioxidative, and Antiapoptosis Effects by Regulating Endoplasmic Reticulum Stress. Oxid Med Cell Longev. 2018; 2018: 4756846. doi: 10.1155/2018/4756846
- Sukovatykh BS, Itinson AI, Elenskaya EA, Pashkov VM, Andruhina EG. Optimization of Treatment of Infected Pancreatic Necrosis. Journal of experimental and clinical surgery. 2016; 9: 4: 258-265. (in Russ.) doi: 10.18499/2070-478X-2016-9-4-258-265
- Mizgirev DV, Kremlev VV, Neledova LA, Pozdeev VN, Katysheva AA, Duberman BL. Acute Necrotising Pancreatitis - Causes of Deaths: Single-Centre Retrospective Study. Journal of experimental and clinical surgery. 2019; 12: 1: 29-37. (in Russ.) doi: 10.18499/2070-478X-2019-12-1-29-37
- Revishvili ASh, Kubyshkin VA, Zatevakhin II, Bagnenko SF, Polushin YuS, Maystrenko NA, et al. Ostryj pankreatit. Klinicheskie rekomendacii. Dostupno po: https://cr.minzdrav.gov.ru/recomend/326_4. Ssylka aktivna na 06.08.2022. (in Russ.)
- Baron TH, DiMaio CJ, Wang AY, Morgan KA. American gastroenterological association clinical practice update: management of pancreatic necrosis. Gastroenterology. 2020; 158: 1: 67-75.e1. doi: 10.1053/j.gastro.2019.07.064
- Grigorev EG, Krivtsov GA, Plotkin LL, Pribytkova OV, Sovtsov SA. Ostryj peritonit. Klinicheskie rekomendacii. Dostupno po: http://xn----9sbdbejx7bdduahou3a5d.xn--p1ai/stranica-pravlenija/unkr/urgentnaja-abdominalnaja-hirurgija/ostryi-peritonit.html. Ssylka aktivna na 06.08.2022. (in Russ.)
- Mohan BP, Madhu D, Toy G, Chandan S, Khan SR, Kassab LL, et al. Hydrogen peroxide-assisted endoscopic necrosectomy of pancreatic walled-off necrosis: a systematic review and meta-analysis. Gastrointest. Endosc. 2022; 95: 6: 1060-1066.e7. doi: 10.1016/j.gie.2022.01.018
- Vinnik YuS, Teplyakova OV, Peryanova OV, Tyapkin SI, Sosedova EV. Microbial adhesion activity on choosing drainage polymer and local antiseptics in patients with pancreonecrosis and local antiseptics in patients with pancreonecrosis. Annaly khirurgicheskoy gepatologii. 2013; 18: 4: 100-108. (in Russ.)
- Batoni G, Maisetta G, Esin S. Microbial Biofilms and Antibiofilm Agents 2.0. Int J Mol Sci. 2022; 23: 14: 7932. doi: 10.3390/ijms23147932
- Parhisenko YuA, Gluhov AA, Moshurov IP. Ozone therapy for the purpose of non-specific immunomodulation in patients with common forms of peritonitis. Applied Information Aspects of Medicine (Prikladnye informacionnye aspekty mediciny). 2015; 18: 5: 69-71. (in Russ.)
- Wen Q., Liu D., Wang X., Zhang Y., Fang S., Qiu X., Chen Q. A systematic review of ozone therapy for treating chronically refractory wounds and ulcers. Int. Wound J. 2022; 19: 4: 853-870. doi: 10.1111/iwj.13687
- Vinnik YuS, Plakhotnikova AM, Kirichenko AK, Kukonkov VA, Teplyakova OV. The application of directional flow of the ozone-oxygen gaseous mixture to a sanitation of pyogenic wounds in the experiment. Novosti Khirurgii. 2015; 23: 4: 372-378. (in Russ.) doi: 10.18484/2305-0047.2015.4.372
- Ibáñez-Cervantes G., Cruz-Cruz C., Durán-Manuel E.M., Loyola-Cruz M.Á., Cureño-Díaz M.A., Castro-Escarpulli G. at al. Disinfection efficacy of ozone on ESKAPE bacteria biofilms: рotential use in difficult-to-access medical devices. Am. J. Infect. Control. 2022; S0196-6553: 22: 00233-00234. doi: 10.1016/j.ajic.2022.03.037
- Piletić K., Kovač B., Perčić M., Žigon J., Broznić D., Karleuša L. at al. Disinfecting action of gaseous ozone on OXA-48-producing Klebsiella pneumoniae biofilm in vitro. Int. J. Environ. Res. Public Health. 2022; 19: 10: 6177. doi: 10.3390/ijerph19106177
- Liu J, Huang L, Luo M, Xia X. Bacterial translocation in acute pancreatitis. Crit. Rev. Microbiol. 2019; 45: 5-6: 539-547. doi: 10.1080/1040841X.2019.1621795
- Bonez PC, Dos Santos Alves CF, Dalmolin TV, Agertt VA, Mizdal CR, Flores Vda C, at al. Chlorhexidine activity against bacterial biofilms. Am. J. Infect. Control. 2013; 41: 12: e119-122. doi: 10.1016/j.ajic.2013.05.002
- Buxser S. Has resistance to chlorhexidine increased among clinically-relevant bacteria? A systematic review of time course and subpopulation data. PLoS One. 2021; 16: 8: e0256336. doi: 10.1371/journal.pone.0256336
- Uysal B, Yasar M, Ersoz N, Coskun O, Kilic A, Cayc T, at al. Efficacy of hyperbaric oxygen therapy and medical ozone therapy in experimental acute necrotizing pancreatitis. Pancreas. 2010; 39: 1: 9-15. doi: 10.1097/MPA.0b013e3181bb5ae3
- Oztas Y, Uysal B, Kaldirim U, Poyrazoglu Y, Yasar M, Cayci T, at al. Inhibition of iNOS reduces the therapeutic effects of ozone in acute necrotizing pancreatitis: an in vivo animal study. Scand. J. Clin. Lab. Invest. 2011; 71: 5: 370-377. doi: 10.3109/00365513.2011.572183
- Panebianco F, Rubiola S, Di Ciccio PA. The use of ozone as an eco-friendly strategy against microbial biofilm in dairy manufacturing plants: a review. Microorganisms. 2022; 10: 1: 162. doi: 10.3390/microorganisms10010162
Дополнительные файлы

