Оценка метаболической активности и энергетической обеспеченности лимфоцитов периферической крови
- Авторы: Зубаткина О.В.1, Добродеева Л.К.1, Самодова А.В.1, Круглов С.Д.1
-
Учреждения:
- Федеральный исследовательский центр комплексного изучения Арктики имени академика Н.П. Лавёрова
- Выпуск: Том 29, № 12 (2022)
- Страницы: 855-863
- Раздел: ОРИГИНАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
- URL: https://bakhtiniada.ru/1728-0869/article/view/233090
- DOI: https://doi.org/10.17816/humeco109363
- ID: 233090
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Обоснование. Т-клетки способны изменять свой метаболизм в ответ на активационные сигналы. В состоянии покоя Т-клетки преимущественно используют для своих энергетических нужд окисление высших жирных кислот и окислительное фосфорилирование в митохондриях, а после активации переходят на аэробный гликолиз и глутаминолиз, используя в качестве субстратов глюкозу и глутамин соответственно.
Цель. Определение метаболической активности и энергообеспеченности лимфоцитов периферической крови у практически здоровых северян путём установления внутриклеточного содержания HIF-1α (гипоксией индуцируемого фактора 1-α), SIRT3 (сиртуина 3) и АТФ (аденозинтрифосфата).
Материалы и методы. Обследованы 39 волонтёров — жителей Архангельской области (23 женщины и 16 мужчин, возраст от 23 до 62 лет), у которых определяли общее количество лимфоцитов в периферической крови с проведением CD-типирования лимфоцитов (CD3+, CD4+, CD8+, CD71+) методом непрямой иммунопероксидазной реакции, в лизате лимфоцитов определяли содержание HIF-1α и SIRT3 методом иммуноферментного анализа, концентрацию АТФ методом люминесцентного анализа с использованием люциферин-люциферазной реакции. Статистическую обработку результатов исследования проводили в программе Statistica 10.0, применяли кластерный анализ с использованием метода k-средних, вычисляли средние значения (M), стандартное отклонение (SD); нормальность распределения оценивали по критерию Колмогорова–Смирнова и Лиллиефорса, вычисляли t-критерий Стьюдента, различия считали статистически значимыми при p <0,05.
Результаты. Установлено, что у обследованных волонтёров метаболическая активность лимфоцитов, связанная с HIF-1α-регуляцией, статистически значимо различается, при этом в группе с более низким общим количеством лимфоцитов и их субпопуляций (CD3+, CD4+, CD8+, CD71+) наблюдается преимущественная гликолитическая направленность метаболизма и более высокий уровень энергообеспеченности клеток.
Заключение. Метаболическая активность, о которой можно судить по соотношению HIF-1α/SIRT3, и энергетическая обеспеченность лимфоцитов оказывают существенное влияние на их дифференцировку, пролиферацию и функционирование.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Ольга Владимировна Зубаткина
Федеральный исследовательский центр комплексного изучения Арктики имени академика Н.П. Лавёрова
Автор, ответственный за переписку.
Email: ozbiochem@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-5039-2220
SPIN-код: 1581-5178
д.б.н., профессор
Россия, АрхангельскЛилия Константиновна Добродеева
Федеральный исследовательский центр комплексного изучения Арктики имени академика Н.П. Лавёрова
Email: dobrodeevalk@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-5080-6502
SPIN-код: 4518-6925
Россия, Архангельск
Анна Васильевна Самодова
Федеральный исследовательский центр комплексного изучения Арктики имени академика Н.П. Лавёрова
Email: annapoletaeva2008@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-9835-8083
SPIN-код: 6469-0408
Россия, Архангельск
Сергей Дмитриевич Круглов
Федеральный исследовательский центр комплексного изучения Арктики имени академика Н.П. Лавёрова
Email: stees67@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-4085-409X
SPIN-код: 2532-9912
Россия, Архангельск
Список литературы
- Almeida L., Lochner M., Berod L., Sparwasser T. Metabolic pathways in T cell activation and lineage differentiation // Semin Immunol. 2016. Vol. 28, N 5. P. 514–524. doi: 10.1016/j.smim.2016.10.009
- Baixauli F., Martín-Cófreces N.B., Morlino G., et al. The mitochondrial fission factor dynamin-related protein 1 modulates T-cell receptor signalling at the immune synapse // EMBO J. 2011. Vol. 30, N 7. P. 1238–1250. doi: 10.1038/emboj.2011.25
- Chandel N.S., McClintock D.S., Feliciano C.E., et al. Reactive oxygen species generated at mitochondrial complex III stabilize hypoxia inducible factor-1alpha during hypoxia: a mechanism of O2 sensing // J Biol Chem. 2000. Vol. 275, N 33. P. 25130–25138. doi: 10.1074/jbc.M001914200
- Chapman N.M., Chi H. Hallmarks of T-cell exit from quiescence // Cancer Immunol Res. 2018. Vol. 6, N 5. P. 502–508. doi: 10.1158/2326-6066.CIR-17-0605
- Chua Y.L., Dufour E., Dassa E.P., et al. Stabilization of hypoxia-inducible factor-1alpha protein in hypoxia occurs independently of mitochondrial reactive oxygen species production // J Biol Chem. 2010. Vol. 285, N 41. P. 31277–31284. doi: 10.1074/jbc.M110.158485
- Desdín-Micó G., Soto-Heredero G., Mittelbrunn M. Mitochondrial activity in T cell // Mitochondrion. 2018. Vol. 41. P. 51–57. doi: 10.1016/j.mito.2017.10.006
- Diebold L., Chandel N.S. Mitochondrial ROS regulation of proliferating cells // Free Radic Biol Med. 2016. Vol. 100. P. 86–93. doi: 10.1016/j.freeradbiomed.2016.04.198
- Dimeloe S., Burgener A.V., Grehlert J., Hess C. T-cell metabolism governing activation, proliferation and differentiation; a modular view // Immunology. 2017. Vol. 150, N 1. P. 35–44. doi: 10.1111/imm.12655
- Giralt A., Villarroya F. SIRT3, a pivotal actor in mitochondrial functions: metabolism, cell death and aging // Biochem J. 2012. Vol. 444, N 1. P. 1–10. doi: 10.1042/BJ20120030
- Gnanaprakasam J.N.R., Sherman J.W., Wang R. MYC and HIF in shaping immune response and immune metabolism // Cytokine Growth Factor Rev. 2017. Vol. 35. P. 63–67. doi: 10.1016/j.cytogfr.2017.03.004
- Houtkooper R.H., Pirinen E., Auwerx J. Sirtuins as regulators of metabolism and healthspan // Nat Rev Mol Cell Biol. 2016. Vol. 13, N 4. P. 225–238. doi: 10.1038/nrm3293
- Jaakkola P., Mole D.R., Tian Y.M., et al. Targeting of HIF-alpha to the von Hippel-Lindau ubiquitylation complex by O2-regulated prolyl hydroxylation // Science. 2001. Vol. 292, N 5516. P. 468–472. doi: 10.1126/science.1059796
- Kim J.W., Tchernyshyov I., Semenza G.L., Dang C.V. HIF-1-mediated expression of pyruvate dehydrogenase kinase: a metabolic switch required for cellular adaptation to hypoxia // Cell Metab. 2006. Vol. 3, N 3. P. 177–185. doi: 10.1016/j.cmet.2006.02.002
- Liesa M., Shirihai O.S. Mitochondrial networking in T cell memory // Cell. 2016. Vol. 166, N 1. P. 9–10. doi: 10.1016/j.cell.2016.06.035
- Maciolek J.A., Pasternak J.A., Wilson H.L. Metabolism of activated T lymphocytes // Curr Opin Immunol. 2014. Vol. 27. P. 60–74. doi: 10.1016/j.coi.2014.01.006
- Mills E., O'Neill L.A. Succinate: a metabolic signal in inflammation // Trends Cell Biol. 2014. Vol. 24, N 5. P. 313–320. doi: 10.1016/j.tcb.2013.11.008
- Palmer C.S., Hussain T., Duette G. Regulators of glucose metabolism in CD4+ and CD8+ T cells // Int Rev Immunol. 2016. Vol. 35, N 6. P. 477–488. doi: 10.3109/08830185.2015.1082178
- Palmer C.S., Ostrowski M., Balderson B., et al. Glucose metabolism regulates T cell activation, differentiation, and functions // Front Immunol. 2015. Vol. 6. P. 1. doi: 10.3389/fimmu.2015.00001
- Pugha C.W., Ratcliffe P.J. New horizons in hypoxia signaling pathways // Exp Cell Research. 2017. Vol. 356, N 2. P. 116–121. doi: 10.1016/j.yexcr.2017.03.008
- Ron-Harel N., Santos D., Ghergurovich J.M., et al. Mitochondrial biogenesis and proteome remodeling promote one-carbon metabolism for T cell activation // Cell Metab. 2016. Vol. 24, N 1. P. 104–117. doi: 10.1016/j.cmet.2016.06.007
- Salmond R.J. mTOR regulation of glycolytic metabolism in T cells // Front Cell Dev Biol. 2018. Vol. 6. P. 122. doi: 10.3389/fcell.2018.00122
- Saravia J., Raynor J.L., Chapman N.M., et al. Signaling networks in immunometabolism // Cell Res. 2020. Vol. 30, N 4. P. 328–342. doi: 10.1038/s41422-020-0301-1
- Sena L.A., Li S., Jairaman A., et al. Mitochondria are required for antigen-specific T cell activation through reactive oxygen species signaling // Immunity. 2013. Vol. 38, N 2. P. 225–236. doi: 10.1016/j.immuni.2012.10.020
- Shi L.Z., Wang R., Huang G., et al. HIF-1alpha dependent glycolytic pathway orchestrates a metabolic checkpoint for the differentiation of TH17 and Treg cells // J Exp Med. 2011. Vol. 208, N 7. P. 1367–1376. doi: 10.1084/jem.20110278
- Tan H., Yang K., Li Y., et al. Integrative proteomics and phosphoproteomics profiling reveals dynamic signaling networks and bioenergetics pathways underlying T cell activation // Immunity. 2017. Vol. 46, N 3. P. 488–503. doi: 10.1016/j.immuni.2017.02.010
- Tao J.H., Barbi J., Pan F. Hypoxia-inducible factors in T lymphocyte differentiation and function // Am J Physiol Cell Physiol. 2015. Vol. 309, N 9. P. C580–C589. doi: 10.1152/ajpcell.00204.2015
- Thomas L.W., Ashcroft M. Exploring the molecular interface between hypoxia-inducible factor signalling and mitochondria // Cell Mol Life Sci. 2019. Vol. 76, N 9. P. 1759–1777. doi: 10.1007/s00018-019-03039-y
- Ullah M.S., Davies A.J., Halestrap A.P. The plasma membrane lactate transporter MCT4, but not MCT1, is up-regulated by hypoxia through a HIF-1alpha-dependent mechanism // J Biol Chem. 2006. Vol. 281, N 14. P. 9030–9037. doi: 10.1074/jbc.M511397200
- van der Windt G.J., Everts B., Chang C.H, et al. Mitochondrial respiratory capacity is a critical regulator of CD8+T cell memory development // Immunity. 2012. Vol. 36, N 1. P. 68–78. doi: 10.1016/j.immuni.2011.12.007
Дополнительные файлы
