Genetic consequences of the dramatic decline in the north-west pre-caspian saiga (Saiga tatarica tatarica) population: a comparison of modern and museum samples on mtDNA and microsatellite loci

封面

如何引用文章

全文:

详细

The North-West Pre-Caspian saiga (Saiga tatarica tatarica) population numbers was about 800 thousand individuals in the middle of the last century. There was a dramatic decline at the end of the 20th century, and by 2015 this saiga population numbers and was about five thousand animals. Our paper presents the results of microsatellite loci and of the mtDNA control region analysis obtained for the museum saiga samples from the North-West Pre-Caspian population, collected at the peak of their numbers in the 1950s. We compared these data with our previous results for the samples collected during the population depression in1999–2016. There were no noticeable differences of mtDNA control region diversity between the museum and modern saiga samples. The most vivid genetic consequence of the severe decline in population numbers was a significant increase of the inbreeding coefficient (Fis) calculated from the microsatellite loci.

全文:

Существенное и длительное снижение численности популяций и связанные с этим процессы (известные, как “прохождение через бутылочное горлышко”), в ряде случаев могут приводить к значительной утрате генетического разнообразия животных (Avise, 2000; Неверова и др., 2020). В популяциях, прошедших через “бутылочное горлышко”, эффективная численность (Ne) может значительно снижаться, что, в свою очередь, может негативно отражаться на генетическом разнообразии и приводить к повышению вероятности возникновения инбридинга. В результате возникновения инбредной депрессии существует большой риск снижения репродуктивной способности, ухудшения сопротивляемости особей к заболеваниям, повышения смертности молодняка, что в дальнейшем может привести к неблагоприятным последствиям для существования той или иной популяции (Soule, 1987; Luikart et al.,1998; Приходько, 2003; Frankham, 2005; Willi et al., 2006; Pekkala et al., 2014; Bundgaard et al., 2021).

Сайгак (Saiga tatarica) на протяжении всего своего существования испытывал колебания численности (Банников и др., 1961; Кириков, 1966; Жирнов, 1998а; Жирнов и др., 1998а; Жирнов, Максимук, 1998). Его ареал еще в начале XVIII в. простирался от причерноморских степей на западе до аридных территорий Китая на востоке (Кириков, 1966). К началу XX в. под воздействием различных антропогенных и природных факторов сайгак сохранился только в нетронутых человеком самых глухих уголках Северо-Западного Прикаспия и Туранской низменности, а общая его численность сократилась предположительно до 1000 особей (Банников и др., 1961). К середине ХХ в. в результате принятия жестких охранных мер сайгак восстановил свое распространение на территории Евразии, и заселил пригодные для постоянного обитания участки аридных регионов, сформировав пять популяций: четыре трансграничные номинативного подвида (S. t. tatarica) – Бетпакдалинскую, Уральскую, Устюртскую (на территории Казахстана) и Северо-Западного Прикаспия (на территории России); и одну монгольского подвида – S. t. mongolica (=S. borealis), населяющую Западную Монголию (Банников и др., 1961, Жирнов и др., 1998а; Каримова и др., 2021).

Последнее критическое снижение численности сайгака произошло в конце 1990-х гг. в результате распада Советского Союза, и последовавшим за этим многолетним экономическим кризисом и ростом браконьерства по всему ареалу. В 1995 г. было принято решение о включении вида в Приложение II СИТЕС, а в 2002 г. – в Красный список МСОП (IUCN) как “критически угрожаемый вид”, и в Приложение II Конвенции по сохранению мигрирующих видов диких животных (CMS). Низкий уровень численности сайгака на территории России послужил основанием для включения вида в 2021 г. в Красную книгу Российской Федерации (Красная книга..., 2021). В нашей стране в целях повышения эффективности охраны редких и находящихся под угрозой исчезновения видов, в 2014 г. утверждена Стратегия сохранения таких видов (Стратегия..., 2014), в которой особое место отведено генетическому мониторингу, и которому также уделяется большое внимание в ряде программ по сохранению отдельных редких видов (Стратегия..., 2010, 2021а; Рожнов и др., 2010, 2018 и др.). Исследования генетического разнообразия вида также являются неотъемлемой частью Стратегии по сохранению сайгака (Saiga tatarica Linnaeus, 1766) в Российской Федерации (Стратегия..., 2021б).

Популяция сайгака Северо-Западного Прикаспия, обитающая в России, населяет юго-западные районы Астраханской области (Лиманский район) и восточные районы Республики Калмыкия (Яшкульский и Черноземельский районы). Считается, что эта популяция в настоящее время изолирована от других (Каримова и др., 2021). Ее численность, несмотря на все предпринимаемые меры охраны и отмечающуюся тенденцию увеличения количества животных (Богун, 2019), остается на стабильно невысоком уровне. В конце 1950-х гг. численность сайгака этой популяции насчитывала около 800 тыс. особей (Банников и др., 1961), но уже к концу 1980-х гг. из-за промысла и интенсивного освоения степных территорий ее численность сократилась до 150–160 тыс. (Жирнов, Максимук, 1998). К 2015 г. по экспертным оценкам в популяции насчитывалось всего 4–5 тыс. особей (Каримова, Лущекина, 2018). Таким образом, с 1998 г. по 2016 г. общая численность сайгака в популяции Северо-Западного Прикаспия сократилась в 40 раз (Каримова, Лущекина, 2018), а эффективная численность популяции уменьшилась практически в 80 раз (Kashinina et al., 2023).

Рога сайгака, имеющиеся только у самцов, издавна используются в традиционной китайской медицине. Поэтому браконьерская охота на взрослых самцов – до недавнего времени считалась главной причиной нарушения половой структуры популяций (Близнюк, 1995; 2009; Жирнов, 1998а, 1998б; Жирнов, Максимук, 1998; Каримова и др., 2020). Из-за целенаправленного отстрела доля половозрелых самцов в популяции сайгака Северо-Западного Прикаспия с середины 80-х гг. прошлого века до 2002 г. сократилась с 14.9–30.4% (Близнюк, 2009) до 1% (по экспертным оценкам), при пороговом значении в 2.5% (Milner-Gulland et al., 2003; Каримова, Лущекина, 2018). Из-за такого критически низкого процента самцов большинство самок в начале второго тысячелетия оставались яловыми (до 63.8% молодых и 28.3% взрослых), хотя обычно для этого вида при нормальном соотношении полов в размножении участвует более 90% всех самок (Близнюк, 2009).

Все эти неблагоприятные события в демографической истории популяции могли иметь негативные последствия для генетического разнообразия сайгака, обитающего на территории Северо-Западного Прикаспия.

В недавней работе (Kashinina et al., 2023) было описано генетическое разнообразие в популяции сайгака Северо-Западного Прикаспия, где сравнивались образцы двух временных промежутков: конец 1990-х гг., когда началось стремительное снижение численности этой популяции, и в период ее минимальной численности – 3–5 тыс. особей (2010, 2011 и 2016 гг.). Значимых различий в показателях разнообразия обнаружено не было, генетическая дистанция между этими выборками оказалась равна нулю, но показан высокий уровень разнообразия контрольного региона мтДНК (H = 0.91, π = 0.03), и довольно низкий уровень разнообразия микросателлитных локусов ядерной ДНК (яДНК) (Ho = 0.422, He = 0.514), а кроме того, повышенный коэффициент инбридинга (Fis = 0.181) (Kashinina et al., 2023).

Для более полного понимания существования каких-либо генетических последствий последнего резкого снижения численности сайгака в популяции Северо-Западного Прикаспия возникла необходимость определения генетического разнообразия животных более раннего исторического периода: именно в то время, когда их численность была особенно высокой, и последующего сравнения результатов, полученных для музейных и современных образцов.

Цель работы: Выявить возможные последствия резкого снижения численности сайгака в популяции Северо-Западного Прикаспия на полиморфизм контрольного региона мтДНК и микросателлитных локусов ядерной ДНК при сравнении музейных образцов, собранных на пике восстановления численности популяции в середине ХХ в., и на современном этапе продолжающейся ее депрессии.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

Образцы для молекулярно-генетического анализа были получены из Зоологического музея МГУ, где было отобрано 30 (16 самок и 14 самцов) проб стружки из нижней челюсти сайгаков. Все образцы были собраны в 1957 и 1958 гг. на территории Республики Калмыкия в период, когда в популяции Северо-Западного Прикаспия в период размножения насчитывалось 540 тыс. особей. Характеристика образцов представлена в табл. 1. В связи с сильной деградацией ДНК из анализа мтДНК было исключено 7 образцов (n = 23), а из анализа микросателлитных локусов – 1 образец (n = 29).

 

Таблица 1. Характеристика образцов S. tatarica из Зоологического музея МГУ, отобранных для генетического анализа

№ образца

Год сбора

Место сбора. Коллектор

Пол, возраст

Контрольный регион

Микро-саттелитные локусы

№ гаплотипа в ГенБанке

S61239

1957

Калмыцкие степи, Белозерный.

А. Банников

m, ad

 

*

 

S61240

1957

Калмыкия, окр. Сарпы.

А. Банников

m, ad

*

*

OR227835

S61241

1957

Калмыкия, окр. Сарпы.

А. Банников

f, ad

 

*

 

S61242

1957

Калмыкия, Белозерный-Полынный.

А. Банников

m, sub.ad

 

*

 

S61244

1957

Калмыкия, окр. Меклеты.

А. Банников

m, sub.ad

*

*

OR227839

S61246

1957

Калмыкия, окр. Сарпы.

А. Банников

f, ad

*

*

OR227836

S61247

1957

Калмыкия, окр. Адыка.

А. Банников

f, sub.ad

*

*

OR227837

S61248

1957

Калмыкия, окр. Сарпы.

А. Банников

f, ad

*

*

OR227837

S61249

1957

Калмыкия, с/з Полынный.

А. Банников

f, ad

*

*

OR227838

S61250

1957

Калмыкия, окр. Адыка.

А. Банников

F

*

*

OR227839

S61251

1957

Калмыкия, окр. Сарпы.

А. Банников

m, sub.ad

*

*

OR227840

S61252

1957

Калмыкия, окр. Сарпы.

А. Банников

m, sub.ad

*

*

OR227839

S61253

1957

Калмыкия, окр. Северного.

А. Банников

m, sub.ad

*

*

OR227838

S61254

1957

Калмыкия, Черноземельск. А. Банников

M

*

*

OR227841

S61255

1957

Калмыкия.

А. Банников

m, sub.ad

*

*

OR227842

S61256

1957

Калмыкия, окр. Сарпы.

А. Банников

m, sub.ad

*

*

OR227839

S61257

1957

Калмыкия, окр. Сарпы.

А. Банников

m, sub.ad

*

*

OR227843

S61258

1957

Калмыкия, окр. Сарпы.

А. Банников

m, sub.ad

 

*

 

S61260

1957

Калмыкия.

А. Банников

M

*

*

OR227839

S61261

1957

Калмыкия.

А. Банников

M

 

*

 

S61262

1957

Калмыкия.

А. Банников

F

*

*

OR227844

S61275

1958

Калмыкия. Фандеев

F

*

*

OR227839

S61276

1958

Калмыкия. Фандеев

F

*

*

OR227837

S61277

1958

Калмыкия. Фандеев

F

*

*

OR227837

S61278

1958

Калмыкия. Фандеев

F

*

*

OR227845

S61279

1958

Калмыкия. Фандеев

F

*

*

OR227845

S61280

1958

Калмыкия. Фандеев

F

*

*

OR227837

S61281

1958

Калмыкия. Фандеев

F

   

S61282

1958

Калмыкия. Фандеев

F

*

*

OR227846

S61283

1958

Калмыкия. Фандеев

F

 

*

 

Примечание. m – самцы; f – самки; ad – взрослое животное; sub.ad – молодое животное; знаком “*” обозначены получившиеся маркеры для каждого образца.

 

Первичная пробоподготовка проводилась на территории Зоологического музея МГУ. Перед началом выделения ДНК кости были протерты дистиллированной водой, а затем 70% спиртом от поверхностных загрязнений. Наиболее подходящий для взятия материала участок кости шлифовался с использованием ручной дрели Proxxon (Германия), затем кость повторно промывали водой для устранения поверхностной костяной крошки. На месте шлифованной области с помощью дрели и насадок стачивали кость до состояния костной муки. Около 100 мг костной муки от каждого образца собирали в отдельные пробирки и хранили в холодильнике.

Все дальнейшие лабораторные работы и статистические расчеты были выполнены в Кабинете методов молекулярной диагностики ИПЭЭ РАН, входящего в состав ЦКП “Инструментальные методы в экологии”.

Для предотвращения контаминации и кросс-контаминации выделение ДНК проводилось в отдельном ПЦР-боксе, предварительно обработанным раствором DNA-ExitusPlus (AppliChem, Германия), затем – дистиллированной водой, и прожженным ультрафиолетом в течение 15–20 мин. Образцы выделялись в 4 партии, после каждой из них проводилась такая же обработка.

ДНК из костной муки была выделена с помощью набора QIAamp DNA Investigator Kit (Qiagen, Германия) с использованием протокола “Isolation of Total DNA from Bones and Teeth” с некоторыми модификациями: увеличением времени лизиса до суток и повторным внесением протеиназы К через 12 ч. Для исключения возможности контаминации постоянно ставился отрицательный контроль выделения и ПЦР-амплификации.

Для сравнения полученных данных было использовано 86 образцов, взятых от сайгаков, собранных в 1999–2016 гг. на территории Северо-Западного Прикаспия, и проанализированных нами ранее. Номера этих гаплотипов в ГенБанке (GenBank, NCBI): MT150278-MT150328 (Kashinina et al., 2023).

В качестве молекулярных маркеров использовались: фрагмент контрольного региона мтДНК, а также восемь аутосомных микросателлитных локусов ядерной ДНК, разработанных ранее специально для сайгака (Nowak et al., 2013), и использованных для анализа современного генетического разнообразия сайгака (Kashinina et al., 2023).

Амплификацию контрольного региона мтДНК проводили в 20 мкл общей реакционной смеси, содержащей 4 мкл 5x Master Mix (Диалат, Россия) с добавлением 0.5 ед. полимеразы SmartTAQ (Диалат, Россия), прямого FDL (5'-CCACTATCAACACCCAAAGCTG-3') (Sorokin et al., 2011) и обратного gs1sr (5'-GAGATGGCCCTGAAGAAAGAA-3') праймеров. С помощью этой пары праймеров удалось амплифицировать часть контрольного региона мтДНК – левый гипервариабельный участкок длиной 448 п.н. Амплификация проводилась при следующих условиях: I – 94°C – 3 мин; II – 94°C – 30 с, 60°C – 30 с, 72°C – 1 мин 20 с (40 циклов); III – 72°C – 6 мин. Очистку ПЦР-продукта проводили методом осаждения в 96% этиловом спирте с ацетатом натрия. Визуализацию результатов ПЦР осуществляли при проведении электрофореза в 1.5% агарозном геле в TBE буфере, с добавлением бромистого этидия. Определение нуклеотидных последовательностей продукта амплификации выполняли на автоматическом генетическом анализаторе ABI 3130 (Thermo Fisher Scientific, США) с использованием набора реактивов Big Dye Terminator kit 3.1 (Thermo Fisher Scientific, США) с прямым и обратным праймерами, использованными при ПЦР-амплификации.

Амплификацию восьми микросателлитных локусов (STa14, STa20, STa26, STa30, STa39, STa41, STa43, STa47) осуществляли в мультиплексах, при режиме, описанном ранее (Kashinina et al., 2023). Фрагментный анализ продуктов амплификации выполняли на автоматическом генетическом анализаторе ABI 3130 (Thermo Fisher Scientific, США) с использованием маркера молекулярного веса СД-450 (Синтол, Россия). В качестве положительного контроля и для калибровки использовали 8 современных образцов, данные для которых также были получены ранее. Генотипы контрольных образцов из современной выборки полностью совпадали с данными, полученными ранее (Kashinina et al., 2023). Для уменьшения ошибок из-за выпадения аллелей и появления ложных аллелей амплификацию каждого локуса проводили от 4 до 6 раз (Taberlet et al., 1996; 1999). При получении гетерозиготы у образца при трех независимых амплификациях из четырех, особь принималась за гетерозиготную. Если при четырех амплификациях вероятность гетерозиготы составляла 50%, то проводили еще два. В этом случае гетерозигота принималась при четырех случаях из шести. Таким образом, только у одного музейного образца сайгака из 30 не удалось определить микросателлитный профиль.

Статистический анализ

Анализ контрольного региона мтДНК. Выравнивание нуклеотидных последовательностей осуществляли вручную с помощью программы Bioedit 7.1.9 (Hall, 1999). В программе Arlequin 3.5.1.2 (Excoffier, Lischer, 2010) были рассчитаны показатели внутрипопуляционной изменчивости – гаплотипическое (генное, H) и нуклеотидное (π) разнообразие, нуклеотидный состав, количество изменчивых сайтов, трансзиций/трансверсий, был проведен тест на нейтральность Таджимы (Tajima`s D) (Tajima, 1989а, 1989b), а также рассчитан индекс Харпендинга (raggedness index, r) для оценки типа экспансии. Для построения медианных сетей гаплотипов контрольного региона мтДНК использовали программу Network 10 (Bandelt et al., 1999). Последовательности контрольного региона мтДНК музейных образцов сравнивали с таковыми, полученными нами ранее для образцов современных сайгаков (Kashinina et al., 2023).

Анализ микросателлитных локусов ядерной ДНК. Результаты фрагментного анализа считывали с помощью программы Gene Mapper 4.1 (Thermo Fisher Scientific, США). Для оценки количества кластеров (K) использовалось программное обеспечение STRUCTURE 2.3.4 (Pritchard et al., 2000). Заданное число кластеров K было от 1 до 5, использованная модель – LOCPRIOR, количество повторностей MCMC (interaction) – 500 000. Продолжительность периода (burning period) составила 50 000, количество циклов – 4. Оптимальное число кластеров К было рассчитано согласно алгоритму, основанному на величине ΔК с помощью приложения STRUCTURE HARVESTER (Earl, von Holdt, 2012) по методу Эванно (Evanno et al., 2005). Для расчета общего числа аллелей (Na), числа эффективных аллелей (Ne), наблюдаемой (Ho) и ожидаемой гетерозиготности (He), коэффициента инбридинга (Fis) были использованы макросы GenAlEx 6.4. (Peakall, Smouse, 2006; 2012) для Microsoft Office Excel. С помощью этой же программы по каждому локусу мы оценили отклонения от равновесия Харди – Вайнберга (HWE) и значение коэффициента информативности (I) (Brown, Weir, 1983), являющегося показателем генетического разнообразия, эквивалентным индексу Шеннона-Уивера (Shannon-Weaver Index) в экологии. Вероятность наличия «нулевого аллеля» (Fnull) рассчитывали в программе CERVUS 3.0.7 (Kalinowski et al., 2007).

РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЯ

Контрольный регион мтДНК. Фрагмент последовательности контрольного региона мтДНК длиной 448 п.н. был получен для 23 музейных образцов. Нуклеотидный состав последовательностей контрольного региона был следующим: C – 21.68%, G – 14.78%, T – 30.10%, A – 33.44%, что соответствует митохондриальному геному. Из 46 полиморфных сайтов было выявлено 40 замен, из них 39 транзиций и одна трансверсия. Кроме того, в двух образцах было обнаружено две индели (длиной от 1 до 5 нуклеотидов).

По результатам выравнивания было описано 12 гаплотипов, четыре из них отмечены у 2–6 образцов, остальные были уникальными. Все гаплотипы были зарегестрированы в ГенБанке под номерами OR227835–OR227846. Для анализа филогенетических отношений была построена медианная сеть гаплотипов контрольного региона мтДНК музейных образцов сайгака (рис. 1).

 

Рис. 1. Медианная сеть гаплотипов по фрагменту контрольного региона мтДНК (448 п.н.) музейных образцов сайгака из популяции Северо-Западного Прикаспия. Мутационные позиции обозначены на ветвях вертикальными линиями, а диаметр кругов пропорционален числу образцов в гаплотипах.

 

Гаплотипическое (H) и нуклеотидное (π) разнообразие в выборке музейных образцов сайгака составило 0.893 ± 0.044 и 0.03 ± 0.016 соответственно.

Для того чтобы понять, повлияло ли последнее резкое снижение численности на генетическое разнообразие сайгака в популяции Северо-Западного Прикаспия, к выборке музейных образцов 1957–1958 гг. мы добавили современные (1999–2016 гг.) образцы сайгака (n=86), которые уже были проанализированы нами ранее (Kashinina et al., 2023). Для сравнительного анализа последовательности контрольного региона мтДНК современных образцов (длиной 920 п.н.) были обрезаны до 448 п.н.

Для установления филогенетических отношений между гаплотипами музейных и современных образцов была построена медианная сеть гаплотипов. Современных гаплотипов было 28. Суммарное количество гаплотипов – 31, девять из которых были общими для музейной и современной выборок, что составило около 29% от всех гаплотипов. Кроме того, для музейных образцов было описано три уникальных гаплотипа (рис. 2).

 

Рис. 2. Медианная сеть гаплотипов контрольного региона мтДНК сайгака из популяции Северо-Западного Прикаспия (448 п.н.). Черным цветом обозначены музейные образцы (1957–1958 гг.) Белым цветом обозначены современные образцы (1999–2016 гг.). Мутационные позиции обозначены на ветвях вертикальными линиями, а диаметр кругов пропорционален числу образцов в гаплотипах.

 

Уровни полиморфизма контрольного региона мтДНК музейных образцов сайгака, собранных на пике численности популяции во время ее восстановления (1957–1958 гг.), и современных образцов, собранных в период глубокой депрессии численности (1999, 2000, 2010, 2011 и 2016 гг.) отличались незначительно (табл. 2). Это может говорить о том, что последнее снижение численности не было критическим для этой популяции и не оказало заметного влияния на генетическое разнообразие материнских линий сайгака, обитающего на территории Северо-Западного Прикаспия. Интересно, что индекс Таджимы (табл. 2) был слабо положительным и недостоверным в обеих выборках, в популяции 1999–2016 гг. он был несколько выше.

 

Таблица 2. Показатели генетического разнообразия для музейных и современных образцов сайгака из популяции Северо-Западного Прикаспия

Выборка

Музейная

Современная

H ± S.E.

0.911 ± 0.02

0.893 ± 0.044

π ± S.E.

0.035 ± 0.017

0.032 ± 0.016

Tajima's D

0.703/0.81*

0.942/0.89*

Raggedness index (r) (гипотеза демографической экспансии)

0.06/0.036*

0.022/0.003*

Raggedness index (r) (гипотеза пространственной экспансии)

0.06/0.309*

0.022/0.566*

Примечание. H – гаплотипическое разнообразие; π – нуклеотидное разнообразие; S.E. – стандартная ошибка; Tajima's D – индекс Таджимы; Raggedness index (r) – индекс Харпендинга. * Значение показателя/уровень статистической значимости (p).

 

Для популяции сайгака Северо-Западного Прикаспия характерны широкие колебания численности. Например, значительное снижение численности сайгака было в начале прошлого столетия, о нем упоминают многие авторы (Банников и др., 1961; Жирнов, Максимук, 1998; Данилкин, 2005). При этом последующий рост численности популяции сайгака Северо-Западного Прикаспия имел взрывной характер и был слишком коротким для того, чтобы отразиться на значении показателей полиморфизма контрольного региона мтДНК. Необходимо отметить, что для сайгака характерна наиболее высокая среди диких жвачных скорость восстановления численности. Практически все самки при нормальном соотношении полов участвуют в размножении, начиная репродуктивный период уже на первом году жизни, и приносят одного детеныша в первый год, и по два – в последующие (Банников и др., 1961). Кроме того, стоит обратить внимание на неравновесность исследованных нами выборок (23 музейных образца и 86 современных) и относительно небольшое количество проанализированных музейных образцов.

Форма графиков распределения частот парных нуклеотидных различий между гаплотипами (Mismatch distribution), отражающая историю демографических изменений, происходивших в популяциях (Rogers, Harpending, 1992; Rogers, 1995, 1997), имеет неоднородную структуру, включающую несколько пиков (рис. 3). Для обеих выборок был рассчитан индекс Харпендинга (raggedness index, r) (табл. 2). Статистически незначимое значение индекса Харпендинга (Harpending, 1994) подтверждает наличие пространственной экспансии, как для музейных, так и для современных образцов. Признаков демографической экспансии не наблюдалось. Соотношение кривых, построенных по наблюдаемым и моделируемым частотам парных различий для демографической и пространственной экспансий обеих выборок образцов сайгака из популяции Северо-Западного Прикаспия, показано на рис. 3.

 

Рис. 3. Графики распределения частот (ось ординат) величин парных нуклеотидных различий (ось абсцисс) между гаплотипами фрагмента контрольного региона мтДНК (450 п.н.) сайгака из популяции Северо-Западного Прикаспия: а – для демографической и б – для пространственной экспансий.

 

Наличие пространственной экспансии для музейных образцов и современной выборки сайгаков Северо-Западного Прикаспия хорошо подтверждает отсутствие изоляции этой популяции в прошлом, поскольку скорость мутирования мтДНК не позволяет отследить события, произошедшие полвека назад. Пространственная экспансия случалась в годы высокой численности, отмечавшейся в популяции сайгака Северо-Западного Прикаспия. Так, в Европе в XVII–XVIII вв. сайгак заселял междуречье Дона и Волги, т. е. всю степную и пустынную зоны, достигая берегов Волги, а к середине ХХ в. на правобережье Волги он достиг возможных границ своего распространения. Будучи неплохими пловцами, сайгаки в состоянии преодолевать водные преграды, и известны случаи, когда они переплывали такие крупные реки, как Волга или Урал в их нижнем течении (Жирнов, 1982). В настоящее время ареалы популяций сайгака (в первую очередь это касается популяции Северо-Западного Прикаспия) пространственно разобщены, однако при росте численности может происходить обмен животными между популяциями (Стратегия..., 2021).

Микросателлиты. Микросателлитный анализ был проведен для 29 музейных образцов сайгака. Средняя ожидаемая гетерозиготность выборки была равна 0.47, наблюдаемая – 0.46, но показатели различались по разным локусам (табл. 3).

 

Таблица 3. Показатели генетического разнообразия для каждого микросателлитного локуса музейных и современных образцов сайгака из популяции Северо-Западного Прикаспия

Показатели

STa14

STa20

STa26

STa41

STa30

STa39

STa43

STa47

N

28/95

29/95

27/94

28/95

29/95

29/95

29/95

29/95

Na

2/2

2/4

3/6

8/9

2/2

6/7

7/8

3/3

Ne

1.88/1,96

1.11/1,21

2.09/2,41

4.83/5,15

1.49/1,47

3.11/3,38

4.31/4,03

1.15/1,40

I

0.66/0.68

0.20/0.35

0.84/1.03

1.75/1.79

0.51/0.50

1.43/1.43

1.62/1.63

0.29/0.56

Ho

0.54/0.41

0.10/0.19

0.70/0.49

0.75/0.76

0.21/0.13

0.48/0.67

0.76/0.48

0.14/0.24

He

0.47/0.49

0.1/0.17

0.52/0.59

0.79/0.81

0.33/0.32

0.68/0.70

0.77/0.75

0.13/0.29

Fis

–0.14/0.16

–0.06/–0.09

–0.35/0.16

0.05/0.06

0.37/0.61

0.29/0.04

0.01/0.36

–0.06/0.15

HWE

ns/ns

ns/ns

ns/***

ns/ns

*/***

***/ns

ns/***

ns/*

Fnull

–0.07/0.09

–0.02/−0.04

–0.16/0.1

0.03/0.03

0.23/0.43

0.15/0.03

0.01/0.22

–0.03/0.07

Примечание. N – количество образцов; Na – количество аллелей; Ne – количество эффективных аллелей; Ho – наблюдаемая гетерозиготность; He – ожидаемая гетерозиготность; I – коэффициент информативности Шеннона; Fis – индекс фиксации; HWE – значения вероятности, полученные с помощью теста Харди–Вайнберга (ns = not significant; * P <0.05; *** P < 0.001); Fnull – нуль-аллель. Жирным шрифтом выделены показатели для музейной выборки, без выделения – для современной, опубликованные ранее (Kashinina et al., 2023).

 

Для того чтобы проверить наличие генетических последствий снижения численности сайгака с конца ХХ в., мы объединили две разновременные выборки: к музейным образцам (n = 29) были добавлены современные (n = 86)

При обработке данных, полученных с помощью программы STRUCTURE, оказалось, что согласно алгоритму, основанному на величине ΔК, оптимальное число кластеров для объединенной выборки K = 2. При этом распределение по выделенным программой кластерам в обеих выборках было сходным (рис. 4).

 

Рис. 4. Кластеризация образцов сайгака из популяции Северо-Западного Прикаспия в программе STRUCTURE 2.3.4. (K = 2).

 

В результате анализа восьми микросателлитных локусов ядерной ДНК у музейных образцов сайгака из популяции Северо-Западного Прикаспия установлен невысокий уровень изменчивости, сопоставимый с современным уровнем. По частотам аллелей выборки образцов отличались мало. Значение наблюдаемой гетерозиготности (Ho) было несколько выше у музейных образцов, а ожидаемой (He), наоборот, ниже (табл. 4).

 

Таблица 4. Средние показатели генетического разнообразия микросателлитных локусов, полученные для музейных и современных образцов сайгака из популяции Северо-Западного Прикаспия

Показатели ± S.E.

Музейные (n = 29)

Современные (n = 86)

Na

4.13 ± 0.86

5.13 ± 0.97

Ne

2.5 ± 0.51

2.63 ± 0.50

I

0.91 ± 0.22

0.1 ± 0.2

Ho

0.46 ± 0.1

0.42 ± 0.08

He

0.47 ± 0.1

0.51 ± 0.08

Fis

0.02 ± 0.08

0.18 ± 0.08

AR

4.09

4.3

Примечание. Na – количество аллелей; Ne – количество эффективных аллелей; Ho – наблюдаемая гетерозиготность; He – ожидаемая гетерозиготность; I – коэффициент информативности Шеннона; Fis – коэффициент инбридинга; AR – аллельное разнообразие; S.E. – стандартная ошибка.

 

Интересно, что аллельное разнообразие (AR) оказалось несколько выше в образцах современных сайгаков. Отклонение от Харди-Вайнберга было выявлено по двум локусам в музейной выборке, и по 4 другим локусам – в современной (Kashinina et al., 2023). Основное отличие выборок музейных и современных образцов сайгака – существенная разница в средних значениях коэффициента инбридинга (Fis). У современного сайгака популяции Северо-Западного Прикаспия значение этого коэффициента оказалось на порядок выше, чем у сайгаков середины прошлого века в период высокой численности (0.18 и 0.02, соответственно).

В обеих выборках образцов в локусе STa30 был обнаружен существенный недостаток гетерозигот, что может быть результатом выпадения аллелей в музейном материале, или наличия нуль-аллелей (Fnull). Мы проверили наличие нуль-аллелей, их значения приведены в табл. 3. Оказалось, что Fnull для локуса STa30 составляет 0.23. Однако исключение этого локуса из анализа не привело к изменению значений показателей гетерозиготности и порядок значений Fis не изменился (для музейной выборки он составил –0.04, а для современной – 0.12). Известно, что высокий уровень инбридинга во многих случаях сопровождается инбредной депрессией (Soule, 1987; Luikart et al.,1998; Приходько, 2003; Frankham, 2005; Willi et al., 2006; Pekkala et al., 2014; Bundgaard et al., 2021). Скорость падения численности сайгака из популяции Северо-Западного Прикаспия в конце ХХ в. – начале ХХI в. настораживает. Как указывает в своей работе А. Куль с соавторами (Kuhl et al., 2009), это одно из самых быстрых сокращений численности, зарегистрированных когда-либо для млекопитающих в мире. Особенно сильное опасение вызывает снижение эффективной численности (Ne). Используя формулу Райта, измененную для гаремных животных (Wright, 1949; Nomura, 2002), мы рассчитали эффективную численность сайгака исследуемой популяции за 1958 г. Она составила 331125 особей, при учетной численности в 540000, соотношение самцов и самок при этом было около 1:2.8 (Банников, 1961; Жирнов и др., 1998б), а доля самцов в популяции – 26.3%. В современной популяции в период с 1998 по 2016 доля самцов составляла в среднем около 8% (минимальная 1.1%), при общей крайне небольшой численности животных. Вероятно, такое существенное снижение доли взрослых самцов и огромная разница в эффективной численности в разные исторические периоды популяции может объяснить полученное нами различие в коэффициентах инбридинга между двумя разновременными выборками, которое, в свою очередь, может быть самым первым сигналом о снижении генетического разнообразия сайгака из популяции Северо-Западного Прикаспия.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

В результате сравнительного анализа выборок музейных образцов сайгаков из популяции Северо-Западного Прикаспия, собранных на пике восстановления численности (середина ХХ в.), и современных, периода последней глубокой депрессии (конец ХХ – начало ХХI вв.), по полиморфизму контрольного региона мтДНК выраженных различий выявлено не было. Анализ мтДНК обеих выборок выявил в истории данной популяции признаки наличия пространственной экспансии, что позволяет предположить, что в разные исторические периоды популяция сайгака, обитающая на территории России, не была полностью изолированной от других популяций S. t. tatarica. Большинство показателей полиморфизма микросателлитных локусов, включая уровень наблюдаемой и ожидаемой гетерозиготности, в обеих выборках были сходными. Наиболее существенным последствием резкого снижения численности в популяции является значительное увеличение уровня инбридинга (Fis), рассчитанного по микросателлитным локусам яДНК. Такая большая разница в коэффициентах инбридинга между двумя разновременными выборками может быть самым первым сигналом о снижении генетического разнообразия сайгака из популяции Северо-Западного Прикаспия. Однако некоторое влияние на результаты могло оказать различие в объеме выборок.

БЛАГОДАРНОСТИ

Авторы благодарят сотрудников заповедника “Черные Земли” и заказника “Степной” за всестороннюю помощь в сборе образцов, а также Зоологический музей МГУ за возможность отобрать из коллекции материал для исследования.

КОНФЛИКТ ИНТЕРЕСОВ

Авторы заявляют, что не имеют конфликта интересов.

СОБЛЮДЕНИЕ ЭТИЧЕСКИХ НОРМ

В исследовании использовались музейные образцы сайгаков, собранные в 1950-е года, и хранившиеся в коллекции Зоологического музея МГУ, поэтому заключение комиссии по биоэтике не требуется.

ФИНАНСИРОВАНИЕ

Работа была выполнена при поддержке РФФИ (грант №17-04-01351).

×

作者简介

N. Kashinina

Severtsov Institute of Ecology and Evolution, Russian Academy of Sciences

编辑信件的主要联系方式.
Email: nadezda.kashinina@yandex.ru
俄罗斯联邦, 119071 Moscow, Leninsky Prospekt, 33

A. Lushchekina

Severtsov Institute of Ecology and Evolution, Russian Academy of Sciences

Email: nadezda.kashinina@yandex.ru
俄罗斯联邦, 119071 Moscow, Leninsky Prospekt, 33

P. Sorokin

Severtsov Institute of Ecology and Evolution, Russian Academy of Sciences

Email: nadezda.kashinina@yandex.ru
俄罗斯联邦, 119071 Moscow, Leninsky Prospekt, 33

M. Kholodova

Severtsov Institute of Ecology and Evolution, Russian Academy of Sciences

Email: nadezda.kashinina@yandex.ru
俄罗斯联邦, 119071 Moscow, Leninsky Prospekt, 33

参考

  1. Банников А. Г., Жирнов Л. В., Лебедева Л. С. Фандеев А. А. Биология сайгака. М.: Изд-во сельскохозяйственной литературы, журналов и плакатов. 1961. 336 с.
  2. Близнюк А. И. Роль хозяйственного освоения территории в изменении численности калмыцкой популяции сайгака // Биота и природная среда Калмыкии. М.: Элиста. 1995. С. 222–244.
  3. Близнюк А. И. Сайгак калмыцкой популяции. Элиста: ЗАОр “НПП “Джангар”. 2009. 554 с.
  4. Богун С. А. Состояние популяции сайгака в заповеднике “Черные земли”: проблемы и перспективы ее сохранения // Научные труды Национального парка “Хвалынский”. Сборник научных статей VI Международной научно-практической конференции “Особо охраняемые природные территории: прошлое, настоящее, будущее”. Хвалынск, 17–18 октября 2019 г. Саратов: Изд-во ООО “Амирит”. 2019. С. 7–14.
  5. Данилкин А. А. Млекопитающие России и сопредельных регионов. Полорогие (Bovidae). М.: Т-во научных изданий КМК. 2005. 550 с.
  6. Жирнов Л. В. Возвращенные к жизни (экология, охрана и использование сайгаков). М.: Лесная промышленность. 1982. 224 с.
  7. Жирнов Л. В. Антропические факторы и их роль в регуляции численности популяций // Сайгак. Филогения, систематика, экология, охрана и использование. М.: Типография Россельхозакадемии. 1998. С. 252–264.
  8. Жирнов Л. В. Этологическая структура и социальная организация // Сайгак. Филогения, систематика, экология, охрана и использование. М.: Типография Россельхозакадемии. 1998. С. 144–155.
  9. Жирнов Л. В., Бекенов А. Б., Грачев Ю. А., Дуламцэрэн С., Лущекина А. А. Ареал и его изменения в ХХ в. // Сайгак. Филогения, систематика, экология, охрана и использование. М.: Типография Россельхозакадемии. 1998. С. 60–66.
  10. Жирнов Л. В., Проняев А. В., Бекенов А. Б., Грачев Ю. А., Груздев А. Р. Структура популяций (половой и возрастной состав) // Сайгак. Филогения, систематика, экология, охрана и использование. М.: Типография Россельхозакадемии 1998б. С. 180–188.
  11. Жирнов Л. В., Максимук А. В. Численность сайгака в ХХ в. Северо-Западный Прикаспий // Сайгак. Филогения, систематика, экология, охрана и использование. М.: Типография Россельхозакадемии. 1998. С. 219–225.
  12. Каримова Т. Ю., Лущекина А. А. Особенности пространственного размещения и этологической структуры популяции сайгака на территории Заказника “Степной” (Астраханская область) // Экосистемы: экология и динамика. 2018. Т. 2. № 1. С. 73–91.
  13. Каримова Т. Ю., Лущекина А. А., Неронов В. М., Пюрвенова Н. Ю., Арылов Ю. Н. Биологические особенности популяции сайгака Северо-Западного Прикаспия в периоды разной численности // Аридные экосистемы. 2020. T. 26. № 4 (85). C. 51–58. https://doi.org/10.24411/1993-3916-2020-10118
  14. Каримова Т. Ю., Лущекина А. А., Неронов В. М. Современное состояние и ретроспективный анализ популяций сайгака в России и Казахстане // Аридные экосистемы. 2021. Т. 27. № 2 (87). С. 57–67. https://doi.org/10.24411/1993-3916-2021-10151
  15. Кириков С. В. Промысловые животные, природная среда и человек. М.: Наука, 1966. 348 с.
  16. Красная книга Российской Федерации. Животные. М.: ФГБУ «ВНИИ Экология». 2021. 1128 с.
  17. Неверова Г. П., Жданова О. Л., Фрисман Е. Я. Возникновение сложных режимов динамики численности в ходе эволюции структурированной лимитированной популяции // Генетика. 2020. Т. 56. № 6. С. 714–725. https://doi.org/10.31857/S0016675820060065
  18. Приходько В. И. Кабарга: происхождение, систематика, экология, поведение и коммуникация. М.: ГЕОС. 2003. 443 с.
  19. Рожнов В. В., Спасская Н. Н., Чибилев А. А., Левыкин С. В., Орлов В. Н., Паклина Н. В., Позднякова М. К., Петрищев Б. И. Программа по восстановлению лошади Пржевальского в Оренбургской области. М. Т-во научных изданий КМК. 2010. 32 с.
  20. Рожнов В. В., Ячменникова А. А., Найденко С. В., Эрнандес-Бланко Х.А,, Чистополова М. Д., Сорокин П. А., Добрынин Д. В., Сухова О. В., Поярков А. Д., Дронова Н. А., Трепет С. А., Пхитиков А. Б., Пшегусов Р. Х., Магомедов М.-Р.Д. Мониторинг переднеазиатского леопарда и других крупных кошек. М.: Т-во научных изданий КМК. 2018. 121 с.
  21. Стратегия сохранения амурского тигра в Российской Федерации. [Электронный ресурс https://files.stroyinf.ru/Data2/1/4293723/4293723679.htm/ (дата обращения 24.05.2023)], 2010.
  22. Стратегия сохранения редких и находящихся под угрозой исчезновения видов животных, растений и грибов в Российской Федерации на период до 2030 года. [Электронный ресурс https://docs.cntd.ru/document/499077974 (дата обращения 24.05.2023)] 2014.
  23. Стратегия сохранения дальневосточного аиста в Российской Федерации. [Электронный ресурс https://www.garant.ru/products/ipo/prime/doc/403175695/ (дата обращения 24.05.2023)]. 2021a.
  24. Стратегия сохранения сайгака в Российской Федерации. [Электронный ресурс https://sudact.ru/law/rasporiazhenie-minprirody-rossii-ot-11082021-n-30-r/prilozhenie/ (дата обращения 24.05.2023)]. 2021б.
  25. Avise, J. C. Phylogeography: The History and Formation of Species. Harvard University Press. Cambridge. 2000. 447 p.
  26. Bandelt H. J., Forster P., Rohl A. Median-joining networks for inferring intraspecific phylogenies // Mol. Biol. Evol. 1999. V. 16. P. 37–48. https://doi.org/10.1093/oxfordjournals.molbev.a026036
  27. Brown A., Weir B. Measuring genetic variability in plant populations // Isozymes in Plant Genetics and Breeding / Eds. Part A., Tanksley S. D., Orton T. J. Elsevier; Amsterdam. 1983. P. 219–239. https://doi.org/10.1016/B978-0-444-42226-2.50016-5
  28. Bundgaard J., Loeschcke V., Schou M. F., Bijlsma K. R. Detecting purging of inbreeding depression by a slow rate of inbreeding for various traits: the impact of environmental and experimental conditions // Heredity, 2021. V. 127. P. 10–20. https://doi.org/10.1038/s41437-021-00436-7
  29. Earl D. A., von Holdt B. M. STRUCTURE HARVESTER: A Website and Program for Visualizing STRUCTURE Output and Implementing the Evanno Method // Conserv. Genet. Resour. 2012. V. 4. P. 359–361. https://doi.org/10.1007/s12686-011-9548-7
  30. Evanno G., Regnaut S., Goudet J. Detecting the number of clusters of individuals using the software STRUCTURE: a simulation study // Mol. Ecol. 2005. V. 14. P. 2611–2620. https://doi.org/10.1111/j.1365-294X.2005.02553.x
  31. Excoffier L., Lischer H. E.L. Arlequin Suite ver. 3.5.1.2: A new series of programs to perform population genetics analyses under Linux and Windows // Mol. Ecol. Resour. 2010. V. 10. P. 564–567. https://doi.org/10.1111/j.1755-0998.2010.02847.x
  32. Frankham R. Conservation Biology: Ecosystem recovery enhanced by genotypic diversity // Heredity. 2005. V. 95. P. 183–183. https://doi.org/10.1038/sj.hdy.6800706
  33. Hall T. A. BioEdit: a user-friendly biological sequence alignment editor and analysis program for Windows 95/98/NT // Nucleic acids symp. ser. 1999. V. 41. P. 95–98.
  34. Harpending R. C. Signature of ancient population growth in a low-resolution mitochondrial DNA mismatch distribution // Hum. Biol. 1994. V. 66. P. 591–600.
  35. Kashinina N. V., Lushchekina A. A., Sorokin P. A., Tarasyan K. K., Kholodova M. V. The modern state of the European saiga population (Saiga tatarica tatarica): mtDNA, DRB3 MHC gene, and microsatellite diversity // Integr. Zool. 2023. V. 00. P. 1–16. https://doi.org/10.1111/1749-4877.12704
  36. Kalinowski S. T., Taper M. L., Marshall T. C. Revising how the computer program CERVUS accommodates genotyping error increases success in paternity assignment // Mol. Ecology. 2007. V. 16. P. 1099–1106. https://doi.org/10.1111/j.1365-294X.2007.03089.x
  37. Kuhl A., Balinova N., Bykova E., Arylov Yu., Esipov A., Lushchekina A., Milner-Gulland E. J. The role of saiga poaching in rural communities: Linkages between attitudes, socio-economic circum-stances and behavior // Biol. Conserv. 2009. V. 143. P. 1442–1449. https://doi.org/10.1016/j.biocon.2009.02.009
  38. Luikart G., Sherwin W. B., Steele B. M., Allendorf F. W. Usefulness of molecular markers for detecting population bottlenecks via monitoring genetic change // Mol. Ecol. 1998. V. 7. P. 963–974. https://doi.org/10.1046/j.1365-294x.1998.00414.x
  39. Milner-Gulland E.J., Bukreeva O. M., Coulson T. Lushchekina A. A., Kholodova M. V., Bekenov A. B., Grachev I. A. Reproductive collapse in saiga antelope harems // Nature. 2003. V. 422. P. 135–135. https://doi.org/10.1038/422135a
  40. Nomura T. Effect size of populations with unequal sex ratio and variation in mating success // J. Anim. Breed. Genet. 2002. V. 119. P. 297–310. https://doi.org/10.1046/j.1439-0388.2002.00347.x
  41. Nowak C., Zuther S., Leontyev S. V., Geismar J. Rapid development of microsatellite markers for the critically endangered Saiga (Saiga tatarica) using Illumina_Miseq next generation sequencing technology // Conserv. Genet. Resour. 2013. V. 6. P. 159–162. https://doi.org/10.1007/s12686-013-0033-3
  42. Peakall R., Smouse P. E. GenAlEx 6: genetic analysis in Excel. Population genetic software for teaching and research // Mol. Ecol. Notes. 2006. V. 6. P. 288–295. https://doi.org/10.1111/j.1471-8286.2005.01155.x
  43. Peakall R., Smouse P. E. GenAlEx 6.5: genetic analysis in Excel. Population genetic software for teaching and research-an update // Bioinformatics. 2012. V. 28. P. 2537–2539. https://doi.org/10.1093/bioinformatics/bts460
  44. Pekkala N., Knott K. E., Kotiaho J. S., Nissinen K., Puurtinen M. The effect of inbreeding rate on fitness, inbreeding depression and heterosis over a range of inbreeding coefficients. Evol. Appl., 2014. V. 7. № 9. P. 1107–1119. https://doi.org/10.1111/eva.12145
  45. Pritchard K. J., Matthew Stephens, Donnelly P. Inference of Population Structure Using Multilocus Genotype Data // Genetics. 2000. V. 155. P. 945–959. https://doi.org/10.1093/genetics/155.2.945
  46. Rogers A. R., Harpending H. Population growth makes waves in the distribution of pairwise genetic differences // Mol. Biol. Evol. 1992. V. 9. № 3. P. 552–569. https://doi.org/10.1093/oxfordjournals.molbev.a040727
  47. Rogers A. R. Genetic evidence for a Pleistocene population explosion // Evolution. 1995. V. 49. № 4. P. 608–615. https://doi.org/10.1111/j.1558-5646.1995.tb02297.x
  48. Rogers A. R. Population structure and modern human origin // Progress in population genetics and human evolution. N.Y.: Springer-Verlag. 1997. P. 55–79. https://doi.org/10.1007/978-1-4757-2609-1_4
  49. Soulé M. E. Viable populations for conservation. Cambridge, Univ. Press. 1987. 204 pp.
  50. Sorokin P. A., Soldatova N. V., Lukarevskiya V. S., Kholodova M. V. Genetic diversity and relations of the Goitered Gazelle (Gazella subgutturosa) groups from Uzbekistan, Turkmenistan, and Azerbaijan: Analysis of the D-loop of mitochondrial DNA // Biology Bulletin. 2011. V. 38. № 6. P. 585–590. https://doi.org/10.1134/S1062359011060124
  51. Taberlet P., Griffin S., Goossens B., Questiau S., Manceau V., Escaravage N., Waits L. P., Bouvet J. Reliable genotyping of samples with very low DNA quantities using PCR // Nucleic Acids Res. 1996. V. 24. № 16. P. 3189–3194.
  52. Taberlet P., Waits L. P., Luikart G. Noninvasive genetic sampling: look before you leap // Trends Ecol. Evol. 1999. V. 14. № 8. P. 323–327. https://doi.org/10.1016/s0169-5347(99)01637-7
  53. Tajima F. Statistical method for testing the neutral mutation hypothesis by DNA polymorphism // Genetics. 1989a. V. 123. P. 585–595. https://doi.org/10.1093/genetics/123.3.585
  54. Tajima F. The effect of change in population size on DNA polymorphism // Genetics. 1989b. V. 123. P. 597–601. https://doi.org/10.1093/genetics/123.3.597
  55. Willi Y., van Buskirk J., Hoffmann A. A. Limits to the Adaptive Potential of Small Populations // Annu. Rev. Ecol. Evol. Syst. 2006. V. 37. P. 433–458. https://doi.org/10.1146/annurev.ecolsys.37.091305.110145
  56. Wright S. The genetical structure of populations // Ann. Eugen. 1949. V. 15. P. 323–354. https://doi.org/10.1111/j.1469-1809.1949.tb02451.x

补充文件

附件文件
动作
1. JATS XML
2. Fig. 1. Median haplotype network based on a fragment of the mtDNA control region (448 bp) of museum saiga specimens from the population of the Northwestern Caspian Sea. The mutation positions are indicated on the branches by vertical lines, and the diameter of the circles is proportional to the number of samples in the haplotypes.

下载 (75KB)
3. Fig. 2. Median network of haplotypes of the control region of mtDNA saiga from the population of the Northwestern Caspian Sea (448 bp). Museum samples (1957-1958) are indicated in black. Modern samples (1999-2016) are indicated in white. Mutational positions are indicated on branches by vertical lines, and the diameter of circles is proportional to the number of samples in haplotypes.

下载 (126KB)
4. Fig. 3. Graphs of frequency distribution (ordinate axis) of the values of paired nucleotide differences (abscissa axis) between haplotypes of a fragment of the mtDNA control region (450 bp) of saiga from the population of the Northwestern Caspian Sea: a – for demographic and b – for spatial expansions.

下载 (378KB)
5. Fig. 4. Clustering of saiga samples from the population of the Northwestern Caspian Sea in the STRUCTURE 2.3.4 program. (K = 2).

下载 (114KB)

版权所有 © Russian Academy of Sciences, 2024

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».