Radionuclide Diagnosis of Sentinel Lymph Nodes in Breast cancer with a Radiopharmaceutical Based on Technetium-99m Labeled Gamma Aluminum Oxide

Мұқаба

Дәйексөз келтіру

Толық мәтін

Аннотация

Аim: To analyze the results of radionuclide diagnostics of sentinel lymph nodes (SLN) in patients with breast cancer (BC) with the radiotracer Sentiscan, 99mTc (manufacturer “MedicorPharma-Ural”) using the multimodal SPECT/CT at the stage of visualization.

Material and methods: The study was retrospective, it included 48 patients with BC with clinical stage T2-3N0M0, who underwent radionuclide diagnostics of SLN and SPECT/CT was performed at the imaging stage. The images were evaluated visually, the intensity of the radiotracer accumulation in the lymph nodes (LN) was analyzed, SUVmax was used as a quantitative parameter. Intraoperative detection of SLN with subsequent histological examination was also carried out with the calculation of the level of the radiotracer accumulation.

Results: On tomoscintigrams, LNs were visualized in 43 patients out of 48, intraoperatively ‒ in 46 cases, in 2 patients, accumulation of the radiotracer in the LN projection was noted neither according to SPECT/CT, nor intraoperatively. When analyzing the intensity of the radiotracer accumulation according to SPECT/CT data, a rather large scatter of SUVmax‒35 [10‒104]. Sentinel were considered LNs with the level of the radiotracer accumulation in them of at least 10 % of the most intense node. According to SPECT/CT data, 165 lymph nodes were identified, the average number of lymph nodes detected in one patient was 2 [1‒3], the maximum number was 6 lymph nodes. In all patients, the lymph nodes were determined in the projection of the 1st level, in 25 cases ‒ in the projection of other zones of regional lymphatic outflow. The total number of lymph nodes removed during surgery was n=247, on average 3 [2‒5] lymph nodes were removed in one patient, with a maximum of 8 nodes.

Conclusion: The sensitivity of radionuclide diagnostics of SLN with Sentiscan, 99mTc was 89.6 % according to SPECT/CT and 95.8 % according to the results of intraoperative detection. The use of multimodal imaging provides information on the exact anatomical localization of the lymph nodes. In the absence of scintigraphic visualization of the radiotracer redistribution in the lymphatic collector, intraoperative detection does not lose its relevance.

Авторлар туралы

A. Medvedeva

Cancer Research Institute, Tomsk National Research Medical Center

Email: medvedeva@tnimc.ru
Tomsk, Russia

A. Rybina

Cancer Research Institute, Tomsk National Research Medical Center

Email: medvedeva@tnimc.ru
Tomsk, Russia

R. Zeltchan

Cancer Research Institute, Tomsk National Research Medical Center

Email: medvedeva@tnimc.ru
Tomsk, Russia

L. Tashireva

Cancer Research Institute, Tomsk National Research Medical Center

Email: medvedeva@tnimc.ru
Tomsk, Russia

O. Bragina

Cancer Research Institute, Tomsk National Research Medical Center

Email: medvedeva@tnimc.ru
Tomsk, Russia

A. Doroshenko

Cancer Research Institute, Tomsk National Research Medical Center

Email: medvedeva@tnimc.ru
Tomsk, Russia

E. Garbukov

Cancer Research Institute, Tomsk National Research Medical Center

Email: medvedeva@tnimc.ru
Tomsk, Russia

N. Tarabanovskaya

Cancer Research Institute, Tomsk National Research Medical Center

Email: medvedeva@tnimc.ru
Tomsk, Russia

V. Chernov

Cancer Research Institute, Tomsk National Research Medical Center

Email: medvedeva@tnimc.ru
Tomsk, Russia

Әдебиет тізімі

  1. Cabañas R.M. An Approach for the Treatment of Penile Cancer // Cancer. 1977. No. 39. P. 456-466.
  2. Morton D. Technical Details of Intraoperative Lymphatic Mapping for Early Stage Melanoma // Arch. Surg. 1992. V.127, No. 4. P. 392. DOI: 10.1001/ archsurg.1992.01420040034005.
  3. Alex J.C., Krag D.N. The Gamma-Probe-Guided Resection of Radiolabeled Primary // Lymph Nodes // Surg. Oncol. Clin N Am. 1996. V.5, No. 1. P. 33–41.
  4. Boada A., Tejera-Vaquerizo A., Ribero S., Puig S., Moreno-Ramírez D., Quaglino P., Osella-Abate S., Cassoni P., Malvehy J., Carrera C., Pigem R., Barreiro-Capurro A., Requena C., Traves V., Manrique-Silva E., Fernández-Orland A., Ferrandiz L., García-Senosiain O., Fernández-Figueras M.T., Ferrándiz C., Nagore E. Factors Associated with Sentinel Lymph Node Status and Prognostic Role of Completion Lymph Node Dissection for Thick Melanoma // Eur. J. Surg. Oncol. 2020. V.46, No. 2. P. 263–271. doi: 10.1016/j.ejso.2019.09.189.
  5. Lafuente-Sanchis A., Olmo A., Carretero J., Alcacer Fernandez-Coronado J., Estors-Guerrero M., Martínez-Hernández N.J., Cremades A., Zúñiga A., Alcacer J., Farras R., Cuenca M., Galbis-Caravajal J.M. Clinical Significance of Epithelial-mesenchymal Transition-related Markers Expression in the Micrometastatic Sentinel Lymph Node of NSCLC // Clin. Transl. Oncol. 2020. V.22, No. 3. P. 381–391. doi: 10.1007/s12094-019-02138-3.
  6. Ni J.S., Janz T.A., Nguyen S.A., Lentsch E.J. Predictors of Occult Lymph Node Metastasis in Cutaneous Head and Neck Melanoma // World J. Otorhinolaryngol Head Neck Surg. 2019. V.5, No. 4. P. 200–206. doi: 10.1016/j.wjorl.2019.02.003.
  7. Touhami O., Grégoire J., Renaud M.C., Sebastianelli A., Plante M. Performance of Sentinel Lymph Node (SLN) Mapping in High-risk Endometrial Cancer // Gynecol Oncol. 2017. V.147, No. 3. P. 549–553. doi: 10.1016/j.ygyno.2017.09.014.
  8. Moo T.A., Sanford R., Dang C., Morrow M. Overview of Breast Cancer Therapy // PET Clin. 2018. V.13, No. 3. P. 339–354. doi: 10.1016/j.cpet.2018.02.006.
  9. Plichta J.K. Breast Cancer Prognostic Staging and Internal Mammary Lymph Node Metastases: a Brief Overview // Chin. Clin. Oncol. 2019. No. 8. P. 1–11. doi: 10.21037/cco.2019.01.09.
  10. Чернов В.И., Дудникова Е.А., Зельчан Р.В., Кравчук Т.Л., Данилова А.В., Медведева А.А., Синилкин И.Г., Брагина О.Д., Гольдберг В.Е., Гольдберг А.В., Фролова И.Г. Однофотонная эмиссионная компьютерная томография с 99mtc-1-тио-d-глюкозой в диагностике и стадировании злокачественных лимфом: первый опыт использования // Sibirskiy Onkologicheskiy Zhurnal = Siberian Journal of Oncology. 2018. Т.17, № 4. С. 81-87.
  11. Bragina O., Chernov V., Zelchan R., Medvedeva A., Schulga A., Vorobyeva A., Orlova A., Deyev S., Tolmachev V., Konovalova E., Garbukov E., Tashireva L., Sorensen J. Phase I trial of 99mTc-(He)3-G3, a Darpin-based Probe for Imaging of Her2 Expression in Breast Cancer // Journal of Nuclear Medicine. 2022. V.63. No. 4. P. 528-535.
  12. Чернов В.И., Медведева А.А., Синилкин И.Г., Зельчан Р.В., Брагина О.Д. Разработка радиофармпрепаратов для радионуклидной диагностики в онкологии // Медицинская визуализация. 2016. №2. С. 63-66.
  13. Zhang Jing-Jie, Zhang Wan-Chun, An Cai-Xia, Li Xiao-Min, Ma Le. Comparative Research on 99mTc-Rituximab and 99mTc-sulfur Colloid in Sentinel Lymph Node Imaging of Breast Cancer // BMC Cancer. 2019. V.19, No. 1. P. 956. doi: 10.1186/s12885-019-6197-9.
  14. Unkart J.T., Hosseini A., Wallace A.M. Tc-99m Tilmanocept Versus Tc-99m Sulfur Colloid in Breast Cancer Sentinel Lymph Node Identification: Results from a Randomized, Blinded Clinical Trial //J. Surg. Oncol. 2017. V.116, No. 7. P. 819–823.
  15. Криворотько П.В., Канаев С.В., Семиглазов В.Ф., Новиков С.Н., Крживицкий П.И., Семенов И.И., Туркевич Е.А., Бусько Е.А., Донских Р.В., Брянцева Ж.В., Пискунов Е.А., Труфанова Е.С., Черная А.В. Методологические проблемы биопсии сигнальных лимфатических узлов у больных раком молочной железы // Вопросы онкологии. 2015. Т.61, № 3. С. 418-423.
  16. Giammarile F., Alazraki N., Aarsvold J.N., Audisio R.A., Glass E., Grant S.F., Kunikowska J., Leidenius M., Moncayo V.M., Uren R.F., Oyen W.J.G., Olmos R.A.V., Sicart S.V. The EANM and SNMMI Practice Guideline for Lymphoscintigraphy and Sentinel Node Localization in Breast Cancer // European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 2013. No. 40. P. 1932–1947.
  17. Navalkissoor S., Wagner T., Gnanasegaran G. SPECT/CT in Imaging Sentinel Nodes // ClinTransl Imaging. 2015. V.3, No. 3. P. 203–215. doi: 10.1007/s40336- 015-0113-3.
  18. Olmos V.R.A., Rietbergen D.D.D., Vidal-Sicart S. SPECT/CT and Sentinel Node Lymphoscintigraphy // ClinTransl Imaging. 2014. V.2, No. 6. P. 491–504. doi: 10.1007/s40336-014-0087-6.
  19. Mucientes R.J., Farge B.L., Cardona A.J., Moreno E.A., Delgado-Bolton R, Izarduy P.L., Rodríguez R.C., Lapeña G.L., González M.A., Román S.J.M., Carreras D.J.L. SPECT-CT: a New Tool for Localisation of Sentinel Lymph Nodes in Breast Cancer Patients // Rev. Esp. Med. Nucl. 2008. V.27, No. 3. P. 183-190.
  20. Крживицкий П.И., Канаев С.В., Новиков С.Н., Черная А.В., Криворотько П.В., Семиглазов В.Ф., Семенов И.И., Пономарева О.И., Ильин Н.Д., Жукова Л.А. Использование ОФЭКТ-КТ для визуализации сигнальных лимфатических узлов у больных раком молочной железы // Вопросы онкологии. 2015. Т.61, № 4. С. 624-626.
  21. Крживицкий П.И., Канаев С.В., Новиков С.Н., Новиков Р.В., Семенов И.И., Пономарева О.И., Ильин Н.Д., Петрова А.С. Применение ОФЭКТ-КТ для визуализации сигнальных лимфатических узлов и путей лимфооттока у больных раком предстательной железы // Вопросы онкологии. 2016. Т.62, № 2. С. 272-276.
  22. Канаев С.В., Новиков С.Н., Крживицкий П.И., Раджабова З.А., Котов М.А., Пономарева О.И., Гиршович М.М., Артемьев С.С., Артемьева А.С., Мельник Ю.С. Применение ОФЭКТ-КТ для визуализации сигнальных лимфатических узлов и путей лимфооттока у больных раком языка // Вопросы онкологии. 2019. Т.65, № 2. С. 250-255.
  23. Jimenez-Heffernan A., Ellmann A., Sado H., Huić D., Bal C., Parameswaran R., Giammarile F., Pruzzo R., Kostadinova I., Vorster M., Almeida P., Santiago J., Gambhir S., Sergieva S., Calderon A., Young G.O., Valdes-Olmos R., Zaknun J., Magboo V.P., Pascual T.N. Results of a Prospective Multicenter International Atomic Energy Agency Sentinel Node Trial on the Value of SPECT/CT Over Planar Imaging in Various Malignancies // J. Nucl. Med. 2015. V.56, No. 9. P. 1338-1344. doi: 10.2967/jnumed.114.153643.
  24. Pouw B., Hellingman D., Kieft M., Vogel W.V., van Os K.J., Rutgers E.J., Valdés Olmos R.A., Stokkel M.P. The Hidden Sentinel Node in Breast Cancer: Reevaluating the Role of SPECT/CT and Tracer Reinjection // Eur. J. Surg. Oncol. 2016. V.42, No. 4. P. 497-503. doi: 10.1016/j.ejso.2015.12.009.
  25. Варламова Н.В., Скуридин В.С., Нестеров Е.А., Ларионова Л.А., Чернов В.И. Исследование кумулятивных свойств радиофармпрепарата «Наноколлоид, 99mTc-Al2O3» на крысах // Вестн. Новосибирского гос. ун-та. Серия: Биология, клиническая медицина. 2015. Т.13, № 2. С. 40–44.
  26. Варламова Н.В., Стасюк Е.С., Тицкая А.А., Синилкин И.Г., Ларионова Л.А., Шерстобоев Е.Ю., Трофимова Е.С., Лигачева А.А., Скуридин В.С. Изучение аллергизирующих свойств радиофармпрепарата «Наноколлоид, 99mТc-Аl2O3» в эксперименте // Современные технологии в медицине. 2015. №4. С.72–77.
  27. Скуридин В.С., Чернов В.И., Варламова Н.В., Нестеров Е.А., Синилкин И.Г., Зельчан Р.В. Исследование функциональной пригодности радиофармпрепарата «Наноколлоид, 99mTc-Al2O3» для сцинтиграфического и интраоперационного выявления «сторожевых» лимфатических узлов // Диагностическая и интервенционная радиология. 2015. № 3. С.76–80.
  28. Зельчан Р.В., Медведева А.А., Синилкин И.Г., Брагина О.Д., Чернов В.И., Стасюк Е.С., Ильина Е.А., Скуридин В.С. Изучение функциональной пригодности туморотропного радиофармпрепарата 99mТс-1-тио-6-глюкоза в эксперименте // Молекулярная медицина. 2018. Т.16, № 3. С. 54-57.
  29. Синилкин И.Г., Чернов В.И., Коломиец Л.А., Слонимская Е.М., Медведева А.А., Зельчан Р.В., Чернышова А.Л., Дорошенко А.В., Ляпунов А.Ю. Первый опыт клинического применения нового отечественного радиофармпрепарата 99мТс-гамма-оксид алюминия для визуализации сторожевых лимфатических узлов при злокачественных новообразованиях // Медицинская визуализация. 2016. № 2. С. 57-62.
  30. McMasters K.M., Reintgen D.S., Ross M.I., Wong S.L., Gershenwald J.E., Krag D.N., Noyes R.D., Viar V., Cerrito P.B., Edwards M.J. Sentinel Lymph Node Biopsy for Melanoma: How Many Radioactive Nodes should be Removed? // Ann. Surg. Oncol. 2001. V.8, No. 3. P. 192–197.
  31. Boughey J.C., Suman V.J., Mittendorf E.A., Ahrendt G.M., Wilke L.G., Taback B., Leitch A.M., Kuerer H.M., Bowling M., Flippo-Morton T.S., Byrd D.R., Ollila D.W., Julian T.B., McLaughlin S.A., McCall L., Symmans W.F., Le-Petross H.T., Haffty B.G., Buchholz T.A., Nelson H., Hunt K.K., Alliance for Clinical Trials in Oncology. Sentinel Lymph Node Surgery after Neoadjuvant Chemotherapy in Patients with Node-positive Breast Cancer: the ACOSOG Z1071 (Alliance) clinical trial // JAMA. 2013. V.310, No. 14. P. 1455–1461. doi: 10.1001/jama.2013.278932.
  32. Kuehn T., Bauerfeind I., Fehm T., Fleige B., Hausschild M., Helms G., Lebeau A., Liedtke C., von Minckwitz G., Nekljudova V., Schmatloch S., Schrenk P., Staebler A., Untch M. Sentinel-Lymph-Node Biopsy in Patients with Breast Cancer before and after Neoadjuvant Chemotherapy (SENTINA): a Prospective, Multicentre Cohort Study // Lancet Oncol. 2013. V.14, No. 7. P. 609–618. doi: 10.1016/S1470-2045(13)70166-9.
  33. Krag D., Anderson S., Julian T., et al. Technical Outcomes of Sentinel-Lymph-Node Resection and Conventional Axillary-Lymphnode Dissection in Patients with Clinically Node-negative Breast Cancer: Results from the NSABP B-32 Randomised Phase III Trial // Lancet Oncol. 2007. V.8, No. 10. P. 881–888.
  34. Li S., Liu F., Chen K., Rao N., Xie Y., Su F., Zhu L. The Extent of Axillary Surgery is Associated with Breast Cancer-specifc Survival in T1–2 Breast Cancer Patients with 1 or 2 Positive Lymph Nodes: a SEER-population Study // Medicine. 1995. No. 14. P. e3254.
  35. National Comprehensive Cancer Network: NCCN Clinical Practice Guidelines in Oncology, Breast Cancer. Version. 1.2018.
  36. Cheng G., Kurita S., Torigian D.A., Alavi A. Current Status of Sentinel Lymph-node Biopsy in Patients with Breast Cancer // Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2011. No. 38. P. 562-575.
  37. Magnoni F., Corso G., Gilardi L., Pagan E., Massari G., Girardi A., Ghidinelli F., Bagnardi V., Galimberti V., Grana C.M., Veronesi P. Does Failed Mapping Predict Sentinel Lymph Node Metastasis in cN0 Breast Cancer? // Future Oncol. 2022. V.18, No. 2. P. 193-204. doi: 10.2217/fon-2021-0470.
  38. Giammarile F., Alazraki N., Aarsvold J.N., Audisio R.A., Glass E., Grant S.F., Kunikowska J., Leidenius M., Moncayo V.M., Uren R.F., Oyen W.J., Valdés Olmos R.A., Vidal Sicart S. The EANM and SNMMI Practice Guideline for Lymphoscintigraphy and Sentinel Node Localization in Breast Cancer // Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2013. V.40, No. 12. P. 1932-1947. doi: 10.1007/s00259-013-2544-2.

Қосымша файлдар

Қосымша файлдар
Әрекет
1. JATS XML
Жүктеу

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».