In silico идентификация B- и T-клеточных эпитопов белка CD2v вируса африканской чумы свиней (African swine fever virus, Asfivirus, Asfarviridae)
- Авторы: Мима К.А.1, Каторкина Е.И.2, Каторкин С.А.2, Цыбанов С.Ж.2, Малоголовкин А.С.2
-
Учреждения:
- канд. биол. наук, вед. науч. сотр. лаборатории геномики вирусов ФГБНУ «Федеральный исследовательский центр вирусологии и микробиологии», 601125, Владимирская обл., Петушинский р-н, пос. Вольгинский
- ФГБНУ «Федеральный исследовательский центр вирусологии и микробиологии»
- Выпуск: Том 65, № 2 (2020)
- Страницы: 103-112
- Раздел: ОРИГИНАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
- URL: https://bakhtiniada.ru/0507-4088/article/view/118047
- DOI: https://doi.org/10.36233/0507-4088-2020-65-2-103-112
- ID: 118047
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Ведение. Вирус африканской чумы свиней (АЧС) - крупный ДНК-вирус, единственный представитель семейства Asfarviridae. Распространение вируса АЧС на территории РФ, стран Восточной Европы и Китая свидетельствует о неэффективности существующих способов борьбы с заболеванием и стимулирует исследования, направленные на создание вакцин. Одним из значимых антигенов, необходимых для формирования иммунной защиты против АЧС, является серотипспецифический вирусный белок CD2v.
Цель работы - идентификация B- и T-клеточных эпитопов в белке CD2v вируса АЧС с использованием методов in silico прогнозирования.
Материал и методы. Первичную последовательность белка CD2v вируса АЧС штамма Georgia 2007/1 анализировали с помощью программ BCPred, DiscoTop, NetCTLpan, VaxiJen, PVS и Epitope Conservancy Analysis.
Результаты. На основании проведённого комплексного многопараметрического анализа определены четыре B-клеточных иммуногенных эпитопa в секреторной области белка. Анализ секреторной области белка CD2v вируса АЧС в программе NetCTLpan позволил выявить пять T-клеточных эпитопов с 32-й по 197-ю позицию аминокислот, имеющих перекрёстное связывание с 1-й по 13-ю аллель главного комплекса гистосовместимости I класса свиньи.
Обсуждение. В данном исследовании представлены результаты использования методов прогнозирования in silico для выявления B- и Т-клеточных эпитопов белка CD2v вируса АЧС. Результаты анализа свидетельствуют о кластерном распределении эпитопов в белке CD2v. Наибольший интерес для дальнейшего использования в качестве компонента рекомбинантной полиэпитопной вакцины против АЧС представляет растворимая область белка CD2v с 17-й по 204-ю аминокислоту, содержащая В- и Т-клеточные эпитопы.
Заключение. Идентифицированы B- и T-клеточные эпитопы в секреторной области белка CD2v (с 17-й по 204-ю позицию аминокислот) вируса АЧС с помощью in silico программ. Анализ консервативности B- и T-клеточных эпитопов позволил сформировать карту распределения иммунных эпитопов в последовательности белка CD2v.
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Ксения Александровна Мима
канд. биол. наук, вед. науч. сотр. лаборатории геномики вирусов ФГБНУ «Федеральный исследовательский центр вирусологии и микробиологии», 601125, Владимирская обл., Петушинский р-н, пос. Вольгинский
Автор, ответственный за переписку.
Email: mima89@ya.ru
ORCID iD: 0000-0001-7184-6968
Е. И. Каторкина
ФГБНУ «Федеральный исследовательский центр вирусологии и микробиологии»
Email: noemail@neicon.ru
ORCID iD: 0000-0003-3329-0182
Россия
С. А. Каторкин
ФГБНУ «Федеральный исследовательский центр вирусологии и микробиологии»
Email: noemail@neicon.ru
ORCID iD: 0000-0002-4844-9371
Россия
С. Ж. Цыбанов
ФГБНУ «Федеральный исследовательский центр вирусологии и микробиологии»
Email: noemail@neicon.ru
ORCID iD: 0000-0001-8994-0514
Россия
А. С. Малоголовкин
ФГБНУ «Федеральный исследовательский центр вирусологии и микробиологии»
Email: noemail@neicon.ru
ORCID iD: 0000-0003-1352-1780
Россия
Список литературы
- Середа А.Д. Белки вируса африканской чумы свиней. Научный журнал КубГАУ. 2012; 3(77): 1-12. Available at: http://ej.kubagro.ru/2012/03/pdf/35.pdf
- Gogin A., Gerasimov V., Malogolovkin A., Kolbasov D. African swine fever in the North Caucasus region and the Russian Federation in years 2007-2012. Virus Res. 2013; 173(1): 198-203. DOI: http://doi.org/10.1016/j.virusres.2012.12.007
- Barderas M.G., Rodriguez F., Gomez-Puertas P., Aviles M., Beitia F., Alonso C., et al. Antigenic and immunogenic properties of a chimera of two immunodominant African swine fever virus proteins. Arch. Virol. 2001; 146(9): 1681-91. DOI: http://doi.org/10.1007/s007050170056
- Власова Н.Н. Перспективы использования методов молекулярной иммунологии и генной инженерии в системе мер по борьбе с африканской чумой свиней (обзор). Сельскохозяйственная биология. 2012; 47(4): 22-30.
- Han T., Marasco W.A. Structural basis of influenza virus neutralization. Ann. N.Y. Acad. Sci. 2011; 1217: 178-90. DOI: http://doi.org/10.1111/j.1749-6632.2010.05829.x
- Zsak L., Onisk D.V., Afonso C.L., Rock D.L. Virulent African swine fever virus isolates are neutralized by swine immune serum and by monoclonal antibodies recognizing a 72-Kda viral protein. Virology. 1993; 196(2): 596-602. DOI: http://doi.org/10.1006/viro.1993.1515
- Escribano J.M., Galindo I., Alonso C. Antibody-mediated neutralization of African swine fever virus: Myths and facts. Virus Res. 2013; 173(1): 101-9. DOI: http://doi.org/10.1016/j.virusres.2012.10.012
- Neilan J.G., Zsak L., Lu Z., Burrage T.G., Kutish G.F., Rock D.L. Neutralizing antibodies to African swine fever virus proteins p30, p54, and p72 are not sufficient for antibody-mediated protection. Virology. 2004; 319(2): 337-442. DOI: http://doi.org/10.1016/j.virol.2003.11.011
- Thomson S.A., Elliott S.L., Sherritt M.A., Sproat K.W., Coupar B.E., Scalzo A.A., et al. Recombinant polyepitope vaccines for the delivery of multiple CD8 cytotoxic T cell epitopes. J. Immunol. 1996; 157(2): 822-6.
- Khalili S., Jahangiri A., Borna H., Ahmadi Zanoos K., Amani J. Computational vaccinology and epitope vaccine design by immunoinformatics. Acta Microbiol. Immunol. Hung. 2014; 61(3): 285-307. DOI: http://doi.org/10.1556/AMicr.61.2014.3.4
- Takamatsu H.H., Denyer M.S., Lacasta A., Stirling C.M., Argilaguet J.M., Netherton C.L., et al. Cellular immunity in ASFV responses. Virus Res. 2013; 173(1): 110-21. DOI: http://doi.org/10.1016/j.virusres.2012.11.009
- Burmakina G., Malogolovkin A., Tulman E.R., Zsak L., Delhon G., Diel D.G., et al. African swine fever virus serotype-specific proteins are significant protective antigens for African swine fever. J. Gen. Virol. 2016; 97(7): 1670-5. DOI: http://doi.org/10.1099/jgv.0.000490
- Burmakina G., Malogolovkin A., Tulman E.R., Xu W., Delhon G., Kolbasov D., et al. Identification of T-cell epitopes in African swine fever virus CD2v and C-type lectin proteins. J. Gen. Virol. 2019; 100(2): 259-65. DOI: http://doi.org/10.1099/jgv.0.001195
- Crosby K., Yatko C., Dersimonian H., Pan L., Edge A.S. A novel monoclonal antibody inhibits the immune response of human cells against porcine cells: identification of a porcine antigen homologous to CD58. Transplantation. 2004; 77(8): 1288-94. DOI: http://doi.org/10.1097/01.tp.0000120377.57543.d8
- Li X., Yang X., Jiang Y., Liu J. A novel HBV DNA vaccine based on T cell epitopes and its potential therapeutic effect in HBV transgenic mice. Int. Immunol. 2005; 17(10): 1293-302. DOI: http://doi.org/10.1093/intimm/dxh305
- Oyarzun P., Kobe B. Computer-aided design of T-cell epitope-based vaccines: Addressing population coverage. Int. J. Immunogenet. 2015; 42(5): 313-21. DOI: http://doi.org/10.1111/iji.12214
- Khan M.A., Hossain M.U., Rakib-Uz-Zaman S.M., Morshed M.N. Epitope-based peptide vaccine design and target site depiction against Ebola viruses: An immunoinformatics study. Scand. J. Immunol. 2015; 82(1): 25-34. DOI: http://doi.org/10.1111/sji.12302
- Soria-Guerra R.E., Nieto-Gomez R., Govea-Alonso D.O., Rosales-Mendoza S. An overview of bioinformatics tools for epitope prediction: Implications on vaccine development. J. Biomed. Inform. 2015; 53: 405-14. DOI: http://doi.org/10.1016/j.jbi.2014.11.003
- Chen J., Liu H., Yang J., Chou K.C. Prediction of liniar B-cell epitopes using amino acid pair antigenicity scale. Amino Acids. 2007; 33(3): 423-8. DOI: http://doi.org/10.1007/s00726-006-0485-9
- Doytchinova I.A., Flower D.R. VaxiJen: a server for prediction of protective antigens, tumour antigens and subunit vaccines. BMC Bioinformatics. 2007; 8: 4. DOI: http://doi.org/10.1186/1471-2105-8-4
- Stranzl T., Larsen M.V., Lundegaard C., Nielsen M. NetCTLpan: pan-specific MHC class I epitope predictions. Immunogenetics. 2010; 62(6): 357-68. DOI: http://doi.org/10.1007/s00251-010-0441-4
- Bui H.H., Sidney J., Li W., Fusseder N., Sette A. Development of an epitope conservancy analysis tool to facilitate the design of epitope-based diagnostics and vaccines. BMC Bioinformatics. 2007; 8: 361. DOI: http://doi.org/10.1186/1471-2105-8-361
- Мима К.А., Бурмакина Г.С., Титов И.А., Малоголовкин А.С. Иммунологически значимые гликопротеины p54 и CD2v вируса африканской чумы свиней: биоинформатический анализ генетических вариаций и гетерогенности. Сельскохозяйственная биология. 2015; 50(6): 785-93. DOI: http://doi.org/10.15389/agrobiology.2015.6.785rus
Дополнительные файлы
