Communities of Fungi on Plates Coated with Antifouling Paint Modified by Nanoparticles

N. I. Kopytina; Копытина Н. И.; N. A. Andreeva; Андреева Н. А.; O. S. Sizova; Сизова О. С.; A. A. Mosunov; Мосунов А. А.; V. P. Evstigneev; Евстигнеев В. П.; E. A. Bocharova; Бочарова Е. А.

doi:10.31857/S0320965223040137

Комплексы грибов на пластинах, покрытых противообрастающей краской, модифицированной наночастицами

Авторы: Копытина Н.И.¹, Андреева Н.А.²^,3, Сизова О.С.²^,3, Мосунов А.А.², Евстигнеев В.П.², Бочарова Е.А.⁴
Учреждения:
1. Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина Российской академии наук
2. Севастопольский государственный университет
3. Институт природно-технических систем
4. Институт биологии южных морей им. А.О. Ковалевского Российской академии наук
Выпуск: № 4 (2023)
Страницы: 464-472
Раздел: ВОДНАЯ МИКОЛОГИЯ
URL: https://bakhtiniada.ru/0320-9652/article/view/134906
DOI: https://doi.org/10.31857/S0320965223040137
EDN: https://elibrary.ru/RWFRTA
ID: 134906

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ
Доступ закрыт

Доступ предоставлен
Доступ закрыт

Только для подписчиков

Аннотация
Об авторах
Список литературы
Дополнительные файлы
Статистика

Аннотация

В Севастопольской бухте (Черное море) осенью 2021 г. исследованы комплексы грибов на пластинах из оргстекла, окрашенных противообрастающей эмалью Биопласт-52 (контроль) и покрытиях на ее основе, модифицированных наночастицами (НЧ) Zn-FeO, ZnO и Fe-CuО. Идентифицированы 16 видов грибов, относящиеся к семи родам, пяти семействам, пяти порядкам и трем классам отдела Ascomycota. В видовом составе доминировали представители родов Aspergillus (семь видов) и Alternaria (четыре вида). Количество видов грибов, выделенных на субстратах, изменялось от четырех (с НЧ ZnO) до восьми (Биопласт-52 и с НЧ Zn-FeO), по времени экспозиции – от 3 (14-е сут) до 14 видов (61-е сут). На покрытии, модифицированном НЧ Fe-CuO, отсутствовали представители родов Aspergillus и Alternaria. На покрытии с НЧ ZnO обнаружены только виды рода Aspergillus. На этих покрытиях выявлены наименьшие численность и количество видов грибов. Наночастицы Fe-CuO и ZnO усиливали противообрастающие свойства эмали Биопласт-52.

Ключевые слова

обрастание, наночастицы металлов, грибостойкость, видовая структура микокомплексов, Черное море

Список литературы

Артемчук Н.Я. 1981. Микофлора морей СССР. М.: Наука.
Багаева Т.В., Ионова Н.Э., Надеева Г.В. 2013. Микробиологическая ремедиация природных систем от тяжелых металлов. Казань: Казанск. ун-т.
Бакина О.В., Глазкова Е.А., Сваровская Н.В. и др. 2018. Магнитные наночастицы Cu/Fe с противоопухолевой активностью // Сиб. онкол. журн. Т. 17. № 1. С. 19. https://doi.org/10.21294/1814-4861-2018-17-1-19-25
Баринова К.В., Власов Д.Ю., Щипарев С.М. и др. 2010. Органические кислоты микромицетов, изолированных с каменистых субстратов // Микология и фитопатология. Т. 44. Вып. 2. С. 137.
Баязитова А.А, Глушко Н.И., Лисовская С.А. и др. 2015. Влияние солей Cu2+ на ферментативную активность клинических изолятов Aspergillus niger // Уч. зап. Казанск. ун-та. Серия: Естественные науки. Т. 157. Кн. 4. С 39.
Билай В.И., Коваль Э.З. 1988. Аспергиллы. Определитель. Киев: Наукова думка.
Карпов В.А., Ковальчук Ю.Л., Полтаруха О.П., Ильин И.Н. 2007. Комплексный подход к защите от морского обрастания и коррозии. М.: Тов-во науч. изд. КМК.
Карташов В.Р., Челнокова М.В., Калинина А.А. и др. 2013. Генерация микроорганизмами и его роль в биологической коррозии металлов // Тр. Нижегород. гос.-техн. ун-та им. Р.Е. Алексеева. № 1(98). С. 242.
Копытина Н.И. 2020. Микобиота пелагиали Одесского региона северо-западной части Черного моря // Вестн. Томск. гос. ун-та. Биология. № 52. С. 140. https://doi.org/10.17223/19988591/52/8
Ложкомоев А.С., Бакина О.В., Глазкова Е.А. и др. 2018. Закономерности формирования антимикробных микро/нанокомпозитов при окислении биметаллических наночастиц Al/Zn // Журн. физ. химии. Т. 92. № 12. С. 1958. https://doi.org/10.1134/S0044453718120270
Мартинкевич А.А., Прокопчук Н.Р. 2014. Пигменты для современных лакокрасочных материалов. Минск: Белорус. гос. тех. ун-т.
Сабадаха Е.Н., Прокопчук Н.Р. 2014. Разработка биозащитного лакокрасочного материала для внутренних работ по минеральной поверхности // Тр. Белорус. гос. тех. ун-та. Химия, технология орган. веществ и биотехнол. № 4. С. 26.
Сабадаха Е.Н., Прокопчук Н.Р., Шутова А.Л. 2016. Принципы снижения экологической нагрузки при окрашивании деревянной поверхности биозащитным лакокрасочным материалом // Тр. Белорус. гос. тех. ун-та. № 4. С. 225.
Сахно О.Н., Селиванов О.Г., Чухланов В.Ю. 2018. Биостойкость полимерных материалов и методы ее оценки. Учебное пособие. Владимир: Изд-во Владим. гос. ун-та.
Семенов С.А., Гумаргалиева К.З., Заиков Г.Е. 2008. Характеристики процессов и особенности повреждения материалов техники микроорганизмами в условиях эксплуатации // Вестник МИТХТ. Т. 3. № 2. С. 3.
Сенаторова Д.Д., Никиян А.Н., Давыдова О.К. 2021. Визуализация и антимикробная активность синтезированных наночастиц металлов в отношении бактерий Escherichia coli и Staphylococcus aureus // Шаг в науку. № 3. С. 21.
Терехова В.А. 2007. Микромицеты в экологической оценке водных и наземных экосистем. М.: Наука.
Челнокова М.В. 2011. Стимулированная микромицетами коррозия металлов: Автореф. дис. … канд. хим. наук. Нижний Новгород. 25 с.
Aldalbahi A., Alterary S., Almoghim R.A.A. et al. 2020. Greener synthesis of zinc oxide nanoparticles: characterization and multifaceted applications // Molecules. № 25(18). P. 4198. https://doi.org/10.3390/molecules25184198
Al-Dossary M.A., Abood S.A., AL-Saad H.T. 2019. Biodegradation of crude oil using Aspergillus species // J. Biol. Agriculture and Healthcare. V. 9. № 4. P. 60. https://doi.org/10.7176/JBAH/9-4-09
Al-Fori M., Dobretsov S., Myint M.T., Dutta J. 2014. Antifouling properties of zinc oxide nanorod coatings // Biofouling. № 30(7). P. 871. https://doi.org/10.1080/08927014.2014.942297
Amend A., Burgaud G., Cunliffe M. et al. 2019. Fungi in the marine environment: open questions and unsolved problems // Ecol. and Evolution. Sci. V. 10(2). e01189-18. https://doi.org/10.1128/mBio.01189-18
Clarke K.R., Gorley R.N, Somerfield P.J., Warwickb R.M. 2014. Change in marine communities: an approach to statistical analysis and interpretation. Plymouth: PRIMER-E.
Clarke K.R., Warwick R.M. 2001. A further biodiversity index applicable to species lists: Variation in taxonomic distinctness // Mar. Ecol. Progr. Ser. № 216. P. 265. https://doi.org/10.3354/MEPS216265
De Hoog G.S., Guarro J., Gene J., Figueras M.J. 2000. Atlas of clinical fungi. Utrecht: Reus.
Dobretsov S., Al-Shibli H., Maharachchikumbura S.S.N., Al-Sadi A.M. 2021. The Presence of Marine Filamentous Fungi on a Copper-Based Antifouling Paint // Appl. Sci. V. 11. P. 8277. https://doi.org/10.3390/app11188277
Erofeev V.T., Bogatov A.D., Bogatova S.N. et al. 2012. Influence of the operational environment on biological firmness of building composite // Magazine of Civil Engineering. № 33(7). P. 23. https://doi.org/10.5862/MCE.33.3
Jones E.B.G., Pang K.-L., Abdel-Wahab M.A. et al. 2019. An online resource for marine fungi // Fungal Diversity. № 96. P. 347. https://doi.org/10.1007/s13225-019-00426-5
Jones E.B.G., Suetrong S., Sakayaroj J. et al. 2015. Classification of marine Ascomycota, Basidiomycota, Blastocladiomycota and Chytridiomycota // Fungal Diversity. № 73(1). P. 1. https://doi.org/10.1007/s13225-015-0339-4
Lozhkomoev A.S., Lerner M., Pervikov A. et al. 2018. Development of Fe/Cu and Fe/Ag bimetallic nanoparticles for promising biodegradable materials with antimicrobial effect // Nanotechnologies in Russia. V. 13(1–2). P. 18. https://doi.org/10.1134/S1995078018010081
Pathogenic fungi in humans and animals. 2002. New York: CRC Press. https://doi.org/10.1201/9780203909102
Richards T.A., Jones M.D., Leonard G., Bas D. 2012. Marine fungi: their ecology and molecular diversity // Ann. Rev. Mar. Sci. № 4. P. 495. https://doi.org/10.1146/annurev-marine-120710-100802