Modern taxonomy and approaches to the identification of the genus Talaromyces (Trichocomaceae, Eurotiales)

封面

如何引用文章

全文:

详细

Talaromyces is a monophyletic genus of microscopic fungi which contain a large number of species, including clinically and biotechnologically significant ones. Since 2011 when species of Penicillium subg. Biverticillium were transferred to a Talaromyces, interest in the genus has grown significantly, a large number of new species have been described from various regions, especially Asia and North America. According to the generalized literature data on the 2023 year a genus Talaromyces have a 198 species. This paper provides an overview of the history and changes in the genus system, discusses the difficulties in identifying both using morphological and molecular characters, and gives information about genetic regions that are most convenient for the DNA barcoding procedure. Separately, provides a data about regions and substrates.

全文:

ВВЕДЕНИЕ

Увеличение доступности различных технологий секвенирования ДНК способствовало накоплению значительного количества молекулярных данных. Большинство этих данных доступны и хранятся в таких базах данных, как GenBank, UNITE, SILVA и др. Внедрение процедуры идентификации таксона с использованием только короткой последовательности ДНК (ДНК-штрихкодирование) и открытие универсальных генетических участков позволило сравнивать свои данные исследователям по всему миру. Для грибов таким претендентом на универсальность оказался участок внутреннего транскрибируемого спейсера (ITS), считающийся оптимальным для идентификации (Schoch et al., 2012; Lücking et al., 2020) и рекомендованный как первичный ДНК-штрихкод для различных групп грибов. Однако для значительной части таксонов (~17%) было показано, что ITS является малоинформативным, поэтому они не могут быть надежно идентифицированы до видового уровня (Vu et al., 2019; Lücking et al., 2020). Недостаточная информативность при использовании ITS может быть связана с недавно показанной внутригеномной изменчивостью для мультикопийных генов, которая в некоторых случаях может превышать межвидовую изменчивость (особенно это проблематично для видовых комплексов), что затрудняет идентификацию конкретных видов (Paloi et al., 2022). Вторичные ДНК-штрихкоды — в основном белок-кодирующие участки (например, TEF1-α, RPB1, RPB2, β-tubulin, CaM), все чаще внедряются для идентификации таксонов, где ITS не обеспечивает достаточной точности (Tekpinar, Kalmer, 2019). Несмотря на широкое распространение ДНК-штрихкодов, методы, основанные на изучении фенотипических признаков, по-прежнему остаются важными для первичной каталогизации биоразнообразия грибов (Lücking et al., 2020).

Система грибов подвержена многочисленным изменениям, поскольку исследователи пытаются использовать различные подходы к их классификации. До августа 2011 г. в номенклатуре грибов на протяжении многих десятилетий была разрешена двойная номенклатура: из-за плеоморфизма различные формы спорообразования гриба (анаморфные и телеоморфные) могли иметь разные названия. Многие виды микроскопических грибов достаточно легко образуют анаморфное спороношение и редко или никогда — телеоморфное, поэтому существующие системы идентификации опирались преимущественно на морфологические признаки именно бесполого размножения. Однако эта система оказалась плохо совместима с данными, появившимися в настоящее время благодаря более надежным молекулярным методам (Gams, 2016).

Поэтому смещение акцента в системе грибов с морфологических на молекулярные признаки, отказ от двойной номенклатуры и принятие принципа “один гриб — одно название” (Hawksworth et al., 2011), привело к заметным изменениям как в понимании границ и объема рода Talaromyces, так и в его внутриродовой структуре.

История ключевых изменений рода Talaromyces

Род Talaromyces был введен C.R. Benjamin (1955) как половая стадия для некоторых грибов из рода Penicillium, обладающих закрытыми плодовыми телами и рыхлым перидием из переплетенных гиф, с типовым видом Talaromyces vermiculatus (P.A. Dang.) C.R. Benj., позднее, в 1972 г., сведенным в синонимы с T. flavus (Klöcker) Stolk et Samson (Stolk, 1972). Исходно представители рода Talaromyces морфологически характеризовались своей половой стадией (телеоморфой), имеющей плодовые тела типа гимнотеция или клейстотеция, унитуникатные прототуникатные сумки с восемью одноклеточными аскоспорами, имеющими экваториальные гребни или без них. Бесполые стадии (анаморфы) ассоциировались с родом Penicillium и другими родственными родами: Geosmithia, Merimbla, Paecilomyces и Sagenomella (Benjamin, 1955; Malloch, Cain, 1972; Stolk, 1972; Yaguchi et al., 1996b; Samson, Pitt, 2003).

Первый вид, который сейчас мы относим к роду Talaromyces, T. flavovirens (Durieu et Mont.) Visagie, Llimona et Seifert был изначально описан еще в 1845 г. как Lasioderma flavovirens Durieu et Mont., однако перенесен в род Talaromyces лишь в 2013 г. (Visagie et al., 2013). Немного раньше, в 2012 г., было показано, что Penicillium aureocephalum Munt-Cvetk., Hoyo et Gómez-Bolea является синонимом Lasioderma flavovirens и принадлежит к роду Talaromyces (Visagie et al., 2012), из-за чего возникли проблемы, так как Lasioderma была более старым названием, чем широко используемое Talaromyces. Это закономерно привело к предложению сохранить Talaromyces, и была проведена процедура консервации названия (Seifert et al., 2012).

Первая внутриродовая классификация Talaromyces была введена в 1972 г. Она была основана на особенностях строения конидиального аппарата и морфологии колоний, в результате чего для рода были предложены четыре секции: Emersonii, Purpurea, Talaromyces, Thermophila (Stolk, Samson, 1972). J. Pitt (1979) принял секции Talaromyces, Thermophilus и Purpureus и ввел для секции Talaromyces серии Flavi, Lutei, Trachyspermi. Также он ввел секцию Coremigenum для Penicillium subg. Biverticillium, добавив в нее серии Dendritica и Duclauxii. На основании изучения убихиноновых профилей большинства видов Talaromyces было показано, что почти все виды Talaromyces, связанные с анаморфой Penicillium, имели убихиноновую систему Q10(H2), а остальные виды Penicillium — систему Q9. В отдельную секцию Trachyspermus были вынесены представители Talaromyces sect. Talaromyces ser. Trachyspermi, у которых была обнаружена смесь убихинонов Q10(H2) и Q10(H4), которые отличались белыми плодовыми телами и быстрым ростом при 37օC (Yaguchi et al., 1996).

Молекулярные данные по роду Talaromyces начали появляться с 1990-х гг., и они однозначно продемонстрировали тесную связь телеоморф Talaromyces с анаморфами рода Penicillium subg. Biverticillium, и показали, что Penicillium не является монофилетичным (LoBuglio et al., 1993; Berbee et al., 1995). В 1993 г. на основе анализа последовательностей малой субъединицы митохондриальной рДНК и ядерной рДНК для 10 видов Talaromyces и шести видов из Penicillium subg. Biverticillium было выдвинуто предположение о том, что введенные на основе морфологических данных секции и серии Talaromyces не полностью отражают их реальные филогенетические отношения; также были высказаны сомнения о принадлежности Talaromyces thermophilus Stolk к роду Talaromyces (LoBuglio et al., 1993). В дальнейшем полифилия Penicillium и близость Talaromyces к Penicillium subg. Biverticillium была продемонстрирована еще не раз на множестве молекулярных данных. Ключевые работы по анализу последовательностей различных генетических локусов приведены в табл. 1.

 

Таблица 1. Работы, в которых была показана полифилия рода Penicillium и обособленность рода Talaromyces

Генетические локусы

Авторы

Малая субъединица ярДНК (18S SSU)

Berbee et al. (1995); Ogawa et al. (1997)

Большая субъединица ярДНК (28S LSU)

Ogawa et al. (1997)

Митохондриальный ген малой субъединицы рРНК (mtSrDNA) и внутренний транскрибируемый спейсер (ITS)

LoBuglio et al. (1993)

Кальмодулин (СaM)

Wang, Zhuang (2007)

Внутренний транскрибируемый спейсер (ITS) ярДНК и наибольшая субъединица РНК-полимеразы II (RPB1)

Samson et al. (2011)

 

Основываясь на результатах филогенетических реконструкций по участкам RPB1 и ITS, фенотипических признаках и профилях вторичных метаболитов, все виды из Penicillium subg. Biverticillium были включены в род Talaromyces, образовав монофилетическую кладу, удаленную от других подродов Penicillium. Диагноз рода при этом был значительно расширен, так как Talaromyces стал включать анаморфные виды с симметричными двухъярусными кисточками, гладкими или шероховатыми конидиеносцами, несущими остроконечные и ампуловидные фиалиды, продуцирующие конидии от шаровидных до эллипсовидных, а также телеоморфные виды с плодовыми телами типа клейстотеций с мягкой рыхлой стенкой, часто желтой окраски (иногда белой, кремовой, розоватой, оранжевой, красноватой или зеленой), содержащими сумки с восемью, и, реже, двумя гладкими, но чаще шиповатыми и/или с гребнями аскоспорами, от эллипсоидных до шаровидных, от бесцветных до желтых, иногда красных (Samson et al., 2011; Yilmaz et al., 2014a).

Включение Penicillium subg. Biverticillium в Talaromyces выявило необходимость в новой внутриродовой системе, для чего было важно сначала уточнить таксономическое положение спорных видов. Так, Talaromyces emersonii Stolk и T. byssochlamydoides Stolk et Samson были перенесены в новый род Rasamsonia (Houbraken, Samson, 2011), а чуть позднее и Talaromyces thermophilus был перенесен в род Thermomyces (Houbraken et al., 2014). Таким образом, секции Thermophila и Emersonii были упразднены. В это же время было предложено разделить семейство Trichocomaceae на три: Aspergillaceae, Thermoascaceae, Trichocomaceae на основе мультилокусного филогенетического анализа по четырем генетическим участкам: RPB1, RPB2, Tsr1 и Cct8. Род Talaromyces, вместе с пятью другими родами (Dendrosphaera, Rasamsonia, Sagenomella, Thermomyces, Trichocoma), остался в семействе Trichocomaceae, которое с этого момента стали понимать sensu stricto (Houbraken, Samson, 2011).

После разграничения семейства Trichocomaceae и решения вопросов о переносе спорных видов на основе мультигенной филогении по локусам ITS, BenA и RPB2 было предложено разделение, призванное наиболее точно отразить связи между видами рода Talaromyces. Были выделены следующие секции: Bacillispori, Helici, Islandici, Purpurei, Talaromyces, Subinflati, Trachyspermi (Yilmaz et al., 2014). Позже был описан новый вид Talaromyces tenuis B.D. Sun, A.J. Chen, Houbraken et Samson, который поместили в новую секцию Tenues (Sun et al., 2020). В табл. 2 в хронологическом порядке собраны системы, предлагавшиеся для внутриродового разделения Talaromyces, а также указаны признаки, на основе которых они были выделены.

 

Таблица 2. Различные подходы к выделению секций в роде Talaromyces

Авторы

Stolk (1972)

Yaguchi et al. (1996)

Yilmaz et al. (2014)

Sun et al. (2020)

Признаки

морфологические

биохимические и морфологические

молекулярные и морфологические

молекулярные и морфологические

Секции

Emersonii1

Emersonii1

Bacillispori

Bacillispori

Purpurea

Purpurea

Purpurei

Purpurei

Talaromyces

Talaromyces

Talaromyces

Talaromyces

Thermophila2

Thermophila2

Islandici

Islandici

Trachyspermus

Trachyspermi

Trachyspermi

Subinflati

Subinflati

Helici

Helici

Tenues

Примечание.*Система, предложенная в работе Pitt (1979) (не приведена в данной таблице).1 Секция перенесена в род Rasamsonia (Houbraken et al., 2012).2 Секция перенесена в род Thermomyces (Houbraken et al., 2014).

 

Таким образом, накопление молекулярных данных способствовало значительному расширению представления о составе рода Talaromyces. После включения в него Penicillium subg. Biverticillium число видов выросло до 71 (Samson et al., 2011). Позже на основе мультигенной филогении была предложена новая внутриродовая система, состоящая из семи секций, куда поместили 88 принятых на тот момент видов (Yilmaz et al., 2014). В 2020 г. в род была добавлена восьмая секция (Sun et al., 2020), а количество описанных видов увеличилось до 171 (Houbraken et al., 2020).

Виды рода Talaromyces и их субстратная приуроченность

Анализ литературных данных показал, что интерес к роду Talaromyces с 2011 г. значительно вырос: за период с 2011 по первое полугодие 2023 г. было описано более половины всех известных на сегодня видов Talaromyces, а их количество увеличилось с 71 вида (Samson et al., 2011) до 198 видов (обобщенные литературные данные на первое полугодие 2023 г.). На рис. 1 приведена столбчатая диаграмма с хронологией количества описаний новых видов, входящих на данный момент в род Talaromyces.

 

Рис. 1. Столбчатая диаграмма, демонстрирующая количество новых видов Talaromyces (или их базионимов), описанных в период с 1845 по 2023 г.

 

Для построения диаграммы на рис. 1 была собрана база данных публикаций (190 публикаций) по всем видам, которые сегодня относят к роду Talaromyces. Начало датируется 1845 г., когда был описан вид Lasioderma flavovirens, получивший новую комбинацию Talaromyces flavovirens в 2013 г. (Visagie et al., 2013).

С увеличением количества работ по описанию новых видов Talaromyces исследователи стали проводить ревизии и оценку объема рода. Этот параметр менялся год от года. В табл. 3 приведены работы, опубликованные в период с 1955 по первое полугодие 2023 г., по которым можно оценить динамику расширения рода Talaromyces по количеству видов. До 2011 г. эти ревизии носили спорадический характер и стали регулярными лишь в последнее время.

 

Таблица 3. Динамика описания видов в роде Talaromyces с 1955 по 2023 г.

Год

Количество видов

Авторы

1955

10

Benjamin (1955)

1972

18

Stolk (1972); Malloch, Cain (1972)

1978

18

Kirilenko (1978)

1987

20

von Arx (1987)

2011

71

Samson et al. (2011)

2014

88

Yilmaz et al. (2014)

2018

120

Tsang et al. (2018)

2020

171

Houbraken et al. (2020)

2022

149

Wijayawardene et al. (2022)

2023

198

Обобщенные литературные данные

 

Из данных табл. 3 хорошо заметно значительное нарастание в количестве видов, известных для Talaromyces с 1978 по 2011 г. В течение этого периода было описано или перенесено в род 31 вид, однако на 2023 г. из них в Talaromyces остались всего 10. Полный список этих видов и их текущее название приведены в табл. 4. Остальные виды, сейчас являющиеся частью рода Talaromyces, за это время были описаны в анаморфных родах Penicillium, Sagenoma, Paecilomyces и др. и перенесены в Talaromyces только в 2011 г. по результатам работы R.A. Samson (2011).

 

Таблица 4. Виды Talaromyces, описанные с 1978 по 2011 г.

Вид

Авторы

Текущее название (по: Index Fungorum, 2023)

Talaromyces assiutensis Samson et Abdel-Fattah

Samson, Abdel-Fattah (1978)

Talaromyces assiutensis Samson et Abdel-Fattah

T. gossypii Pitt

Pitt (1979)

Penicillium gossypii Pitt

T. mimosinus A.D. Hocking

Pitt (1979)

Penicillium mimosinum A.D. Hocking

T. ohiensis Pitt

Pitt (1979)

Penicillium ohiense L.H. Huang et J.A. Schmitt

T. panasenkoi Pitt

Pitt (1979)

Penicillium panasenkoi Pitt

T. malagensis (Thüm.) Stalpers et Samson

Stalpers (1984)

Sporotrichum malagense Thüm.

T. thermocitrinus Subrahm. et Gopalkr.

Subrahmanyam, Gopalkrishnan (1984)

Talaromyces thermocitrinus Subrahm. et Gopalkr. (Index Fungorum, 2023); T. liani (Kamyschko) Yilmaz, Frisvad et Samson (Yilmaz et al., 2014)

T. ryukyuensis (S. Ueda et Udagawa) Arx

Arx (1987)

Penicillium unicum Tzean, J.L. Chen et Shiu

T. viridis (Stolk et G.F. Orr) Arx (как viride)

Arx (1987)

Talaromyces viridis (Stolk et G.F. Orr) Arx

T. derxii Takada et Udagawa

Takada, Udagawa (1988)

Penicillium derxii Takada et Udagawa

T. macrosporus (Stolk et Samson) Frisvad, Samson et Stolk

Frisvad et al. (1990)

Talaromyces macrosporus (Stolk et Samson) Frisvad, Samson et Stolk

T. helicus var. boninensis Yaguchi et Udagawa

Yaguchi et al. (1992)

Talaromyces boninensis (Yaguchi et Udagawa) Samson, N. Yilmaz et Frisvad

T. unicus Tzean, J.L. Chen et Shiu

Tzean et al. (1992)

Penicillium unicum Tzean, J.L. Chen et Shiu

T. convolutus Udagawa

Udagawa (1993)

Penicillium convolutum Udagawa

T. emodensis Udagawa

Udagawa (1993)

Penicillium emodense Udagawa

Talaromyces tardifaciens Udagawa

Udagawa (1993)

Penicillium tardifaciens Udagawa

T. indigoticus Takada et Udagawa

Takada, Udagawa (1993)

Penicillium indigoticum Takada et Udagawa

T. austrocalifornicus Yaguchi et Udagawa

Yaguchi et al. (1993a)

Penicillium austrocalifornicum Yaguchi et Udagawa

T. subinflatus Yaguchi et Udagawa

Yaguchi et al. (1993a)

Penicillium subinflatum Yaguchi et Udagawa

T. barcinensis Yaguchi et Udagawa

Yaguchi et al. (1993b)

Penicillium barcinense Yaguchi et Udagawa

T. lagunensis Udagawa, Uchiy. et Kamiya

Udagawa et al. (1994)

Penicillium lagunense Udagawa, Uchiy. et Kamiya

T. spectabilis Udagawa et Shoji Suzuki

Udagawa, Suzuki (1994)

Paecilomyces variotii Bainier

T. muroii Yaguchi, Someya et Udagawa

Yaguchi et al. (1994)

Talaromyces muroii Yaguchi, Someya et Udagawa

T. eburneus Yaguchi, Someya et Udagawa

Yaguchi et al. (1994)

Rasamsonia eburnea (Yaguchi, Someya et Udagawa) Houbraken et Frisvad

T. trachyspermus var. assiutensis (Samson et Abdel-Fattah) Yaguchi et Udagawa

Yaguchi et al. (1994)

Talaromyces assiutensis Samson et Abdel-Fattah

T. wortmannii var. sublevisporus Yaguchi et Udagawa

Yaguchi et al. (1994)

Talaromyces sublevisporus (Yaguchi et Udagawa) Samson, N. Yilmaz et Frisvad

T. hachijoensis Yaguchi, Someya et Udagawa

Yaguchi et al. (1996a)

Talaromyces hachijoensis Yaguchi, Someya et Udagawa

T. euchlorocarpius Yaguchi, Someya et Udagawa

Yaguchl et al. (1999)

Penicillium euchlorocarpium Yaguchi, Someya et Udagawa

T. brevicompactus H.Z. Kong

Kong (1999)

Hamigera brevicompacta (H.Z. Kong) Houbraken, Frisvad et Samson

T. ocotl Bills et Heredia

Heredia et al. (2001)

Sagenomella ocotl (Bills et Heredia) Samson, Houbraken et Frisvad

T. apiculatus Samson, N. Yilmaz et Frisvad

Samson et al. (2011)

Talaromyces apiculatus Samson, N. Yilmaz et Frisvad

Примечание. Данные по текущему названию вида приведены из Index Fungorum (2023). Подчеркиванием выделены виды, которые остались в Talaromyces.

 

Распределение работ по описанию новых видов Talaromyces по странам и регионам их обнаружения за 11 лет (с 2012 по первое полугодие 2023 г.) представлено в табл. 5. Всего за этот период было описано 124 новых вида, 55 из которых описано из стран Азии, и, в частности, 49 новых видов (40% от общего количества) из стран Восточной Азии. Второй регион по числу новых описаний Talaromyces — Сев. Америка, откуда было описано 26 новых видов (21%).

 

Таблица 5. Страны, из которых были описаны новые виды Talaromyces с 2012 по первое полугодие 2023 г.

Страна

Число видов

Регион

Ссылка

Китай

42

Восточная Азия

Chen et al. (2016); Wang et al. (2016); Wang et al. (2016); Wang et al. (2017); Su, Niu (2018); Jiang et al. (2018); Sun et al. (2020); Han et al. (2021); Pyrri et al. (2021); Tian, (2021); Wei et al. (2021); Zhang et al. (2021); Han et al. (2021); Sun et al. (2022); Wang, Zhuang, (2022); Zhang et al. (2023)

Республика Корея

6

Sang et al. (2013); You et al. (2020); Nguyen et al. (2021)

Япония

1

Fujii et al. (2014)

Таиланд

4

Юго-Восточная Азия

Manoch et al. (2013); Nuankaew et al. (2022)

Индия

1

Южная Азия

Rajeshkumar et al. (2019)

Иран

1

Западная Азия

Crous et al. (2016)

США

22

Северная Америка

Peterson, Jurjević, (2013); Guevara-Suarez et al. (2017); Peterson, Jurjević, (2017); Crous, Wingfield, et al. (2018); Crous, Luangsa-ard, et al. (2018); Peterson, Jurjević, (2019)

Канада

2

Visagie et al. (2015); Peterson, Jurjević, (2017)

Мексика

2

Visagie, Hirooka, et al. (2014); Peterson, Jurjević, (2017)

Колумбия

6

Южная Америка

Visagie et al. (2015); Yilmaz, López-Quintero, et al. (2016); Guerra Sierra et al. (2022)

Бразилия

4

Barbosa et al. (2018); Crous, Carnegie, et al. (2019); Rodríguez-Andrade et al. (2019)

Аргентина

2

Romero et al. (2016)

Гватемала

1

Центральная Америка

Crous, Wingfield, et al. (2019)

Испания

4

Европа

Rodríguez-Andrade et al. (2019); Pyrri et al. (2021)

Нидерланды

4

Yilmaz et al. (2012); Visagie et al. (2015); Crous et al. (2017); Pyrri et al. (2021)

Германия

2

Crous et al. (2017); Pyrri et al. (2021)

Италия

2

Varriale et al. (2018); Peterson, Jurjević, (2019)

Португалия

1

Trovão et al. (2021)

Франция

1

Crous et al. (2020)

Южная Африка

12

Африка

Yilmaz et al. (2012); Visagie, Jacobs, (2012); Frisvad et al. (2013); Visagie et al. (2014); Visagie et al. (2015); Yilmaz et al. (2016); Peterson, Jurjević, (2019); Pyrri et al. (2021)

Гана

1

Peterson, Jurjević, (2019)

Австралия

2

Австралия

Visagie et al. (2015); Sun et al. (2020)

Микронезия

1

Микронезия

Visagie et al. (2014)

Итого:

124

  

 

Субстраты, на которых впервые были обнаружены виды Talaromyces, достаточно разнообразны и приведены в табл. 6. Для составления табл. 6 была собрана база данных публикаций по всем видам, которые сегодня относят к роду Talaromyces. Подсчитано процентное соотношение количества видов на определенном типе субстрата и общего количества видов для каждого типа субстрата. Эти данные также можно условно разделить на две части. До 2012 г. основная масса видов была описана из почвы и подстилки (57 видов, 77%), а с остальных субстратов значительно меньше. Нужно отметить, что в 1959 г. из внутренних органов китайской бамбуковой крысы (Rhizomys sinensis) в горной местности Центрального Вьетнама был выделен и описан патоген Penicillium marneffei Segretain, Capponi et Sureau (Segretain, 1959), являющийся эндемиком Юго-Восточной Азии и вызывающий глубокие микозы у людей с ослабленным иммунитетом (Pruksaphon et al., 2022). Позже этот вид перенесен в род Talaromyces (Samson et al., 2011).

 

Таблица 6. Субстраты, на которых были описаны виды рода Talaromyces

Субстрат

Число видов

%

1955–2011

Почва

54

74

Искусственные материалы

5

6.8

Растения, древесина, семена

4

5.4

Подстилка

3

4.1

2012–2023

Почва

50

40.3

Воздух

17

13.7

Растения и древесина

12

9.6

Помещения и пыль

9

7.2

Подстилка

5

4

Ризосфера и корни

5

4

Воздух

3

4.1

Неизвестный субстрат

3

4.1

Перо Hylocichla fuscescens

1

1.4

Внутренние органы Rhizomys sinensis

1

1.4

Ткани и органы человека

5

4

Насекомые, суставная жидкость животных

5

4

Фрукты

5

4

Вода

4

3.2

Мед

4

3.2

Семена

3

2.4

 

Субстраты, на которых были описаны виды Talaromyces после 2011 г., гораздо разнообразнее. Почва, подстилка, ризосфера и корни растений являются субстратом для уже менее чем половины (48%) всех описанных за это время видов. Значительная часть видов (21%) была обнаружена в воздухе и пыли помещений. С растительными субстратами (остатками растений, древесиной, семенами, фруктами) связано 16% описанных видов. Остальные находки (15%) сделаны на самых разнообразных субстратах, к которым относятся насекомые, ткани собаки, ткани человека, мед, вода. Прямая ассоциация с этими субстратами требует дополнительных подтверждений отсутствия поверхностной контаминации их спорами.

Таким образом, интерес к видам рода Talaromyces значительно вырос после 2011 г., что также отразилось и на количестве описаний новых видов: с 2000 по 2011 г. было описано только два новых вида рода Talaromyces и четыре вида рода Penicillium (в 2002 г. описан Penicillium calidicanium J.L. Chen, в 2004 г. — P. cecidicola Seifert, Hoekstra et Frisvad, в 2008 г. — P. ramulosum Visagie et K. Jacobs, в 2010 г. P. albobiverticillium H.M. Hsieh, Y.M. Ju et S.Y. Hsieh), которые в 2011 г. были включены в Talaromyces (Houbraken, Samson, 2011). С 2012 по 2023 г. было описано 124 новых вида, значительная часть — из стран Азии. На первое полугодие 2023 г., по обобщенным литературным данным, известно 198 видов рода Talaromyces, которые в большинстве приурочены к почве и связанным с ней субстратам (подстилке, растениям, древесине, семенам, фруктам, корням) — 141 вид, или 71% от общего количества видов.

Дифференциация и идентификация видов рода Talaromyces

Классификация микроскопических грибов всегда вызывала трудности у исследователей. Основные причины — дефицит легко наблюдаемых стабильных морфологических признаков, отсутствие полового размножения у значительной части видов и связанные с этим технические трудности при изучении. Выходом из этой ситуации стало развитие молекулярной филогении и основанной на ней системе, что позволило свести к минимуму субъективность интерпретации полученных данных. Логичным продолжением молекулярной филогении стал полифазный таксономический подход для определения критериев вида, основанный на независимом анализе множества признаков и свойств у большого числа штаммов (Gannibal, 2021). Попытки построения таких систем на основе морфологических, физиологических, молекулярных признаков и вторичных метаболитов сейчас проводят и для рода Talaromyces (Yilmaz et al., 2014; Tsang et al., 2018; Houbraken et al., 2020b).

Наиболее полная система для достоверного разделения видов была предложена в 2014 г. для рода Penicillum, но она также хорошо работает и для Talaromyces (Visagie et al., 2014). В основе этой системы лежат строго стандартизованные условия культивирования штамма и последующая его характеристика по трем направлениям: морфологическому, молекулярному и физиологическому.

На первом этапе штамм инкубируют из споровой суспензии в течение семи сут в темноте на вентилируемых чашках Петри (диаметр 90 мм, 20 мл питательной среды в чашке). Рекомендуемые питательные среды: MEA при 25օC, CYA в трехкратной повторности при 30 и 37օC. Дополнительно можно использовать среды CZ, YES, OA, CREA, DG18, CYAS (Crous et al., 2009; Visagie, Houbraken et al., 2014). Второй этап — всесторонний анализ, характеристика и выявление признаков, описанных в табл. 7.

 

Таблица 7. Данные, необходимые для дифференциации видов рода Talaromyces (по: Visagie, 2014)

Морфологическая характеристика

 

Макроморфологические признаки

Микроморфологические признаки2

 

– диаметр и текстура колонии;

— цвет мицелия и спороношения;

— наличие растворимого пигмента;

— цвет экссудата и реверса;

— верхний температурный предел роста;

— выделение кислотных или щелочных метаболитов на индикаторной среде CREA1

– количество уровней ветвления между ножкой и фиалидами;

— размер, форма и текстура конидиогенного аппарата, конидий, клейстотециев, сумок и аскоспор (при наличии)

 

Молекулярная идентификация

 

– получение последовательностей ДНК генов для идентификации видов: ITS, BenA;

— получение последовательностей ДНК генов для филогении: CaM, RPB2;

— поиск сходных нуклеотидных последовательностей через BLAST

 

Выявление вторичных метаболитов (экстралитов)3

 

– экстракция метаболитов смесью: этилацетат/дихлорметан/метанол (3 : 2 : 1) (об./об./об.) с 1% (об./об.) муравьиной кислоты;

— фильтрация и анализ при помощи ВЭЖХ (Klitgaard et al., 2014);

— дополнительно — реакция Эрлиха4 с использованием фильтровальной бумаги

 

Примечание.1Состав питательных сред по: Crous et al. (2009).2 Признаки выявляют на среде MEA1; жидкость для приготовления препаратов — 60%-я молочная кислота; конидии отмывают в 70%-м этаноле.3 Используют пять агаровых блоков из каждой среды (CYA1 и МЕА) на один образец.4 Рекомендации по реакции Эрлиха для различения метаболитов по: Lund (1995).

 

Идентификация грибов рода Talaromyces в настоящее время является сложной задачей, требующей изучения множества признаков (табл. 7), во-первых, микро- и макроморфологических, во-вторых, изучение физиологических особенностей, в-третьих, определение спектра вторичных метаболитов с использованием различных методов высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ), позволяющей получить профили, специфичные для разных видов. Для большинства соединений Talaromyces уже доступны стандарты профилей различных экстралитов (Klitgaard et al., 2014).

Все это в совокупности с молекулярными данными необходимо для того, чтобы надежно установить границы видов или ввести новые таксоны (Yilmaz et al., 2014; Tsang et al., 2018). При этом даже незначительные вариации в составе питательной среды и окружающих условий могут изменить внешний вид организма и привести к неверной идентификации, поскольку морфологические изменения являются одним из способов адаптации к выживанию в окружающей среде. Именно поэтому необходимо использовать стандартизированные методы работы для проведения морфологических и физиологических исследований (Samson et al., 2014; Tsang et al., 2018; Houbraken et al., 2020).

Идентификация видов рода Talaromyces осложняется наличием близкородственных видов, образующих видовые комплексы и имеющих сходные морфологические признаки, и часто не имеющих телеоморфной стадии. Сегодня все больше микологов придерживаются концепции филогенетического распознавания видов с генеалогическим соответствием (GCPSR — genealogical concordance phylogenetic species recognition) для понимания и разделения криптических видов (Taylor et al., 2000). На основе этой концепции исследователи использовали последовательности различных маркерных генов (ITS, β-тубулина, RPB1, RPB2, кальмодулина и др.) для разграничения видов Talaromyces, входящих в ранее выявленные комплексы видов. В табл. 8 приведены описанные в литературе комплексы внутри рода Talaromyces.

 

Таблица 8. Видовые комплексы в роде Talaromyces

Название

Виды

Авторы

T. purpurogenus

T. purpureogenus (Stoll) Samson, N. Yilmaz, Houbraken, Spierenb., Seifert, Peterson, Varga et Frisvad;

T. ruber (Stoll) N. Yilmaz, Houbraken, Frisvad et Samson;

T. amestolkiae N. Yilmaz, Houbraken, Frisvad et Samson;

T. stollii N. Yilmaz, Houbraken, Frisvad et Samson

Yilmaz et al. (2012)

T. wortmanii

T. wortmannii (Klöcker) C.R. Benj.;

T. variabilis (Sopp) Samson, N. Yilmaz, Frisvad et Seifert;

T. sublevisporus (Yaguchi et Udagawa) Samson, N. Yilmaz et Frisvad

Yilmaz et al. (2016)

T. rugulosus

T. rugulosus (Thom) Samson, N. Yilmaz, Frisvad et Seifert;

T. atricola (Thom) S.W. Peterson et Jurjević;

T. echinosporus (Nehira) Samson, N. Yilmaz et Frisvad;

T. infraolivaceus Visagie, N. Yilmaz et K. Jacobs;

T. acaricola Visagie, N. Yilmaz et K. Jacobs

Yilmaz et al. (2016)

T. minioluteus

T. chongqingensis X.C. Wang et W.Y. Zhuang;

T. minnesotensis Guevara-Suarez, Cano et Dania García;

T. minioluteus (Dierckx) Samson, N. Yilmaz, Frisvad et Seifert;

T. calidominioluteus Houbraken et Pyrri;

T. africanus Houbraken, Pyrri et Visagie;

T. germanicus Houbraken et Pyrri;

T. gaditanus (C. Ramírez et A.T. Martínez) Houbraken et Soccio;

T. samsonii (Quintan.) Houbraken et Pyrri

Pyrri et al. (2021)

T. pinophilus

T. soli Jurjević et S.W. Peterson;

T. tumuli Jurjević et S.W. Peterson;

T. malicola Jurjević et S.W. Peterson;

T. domesticus Jurjević et S.W. Peterson;

T. pratensis Jurjević et S.W. Peterson;

T. mae X.Z. Jiang et L. Wang;

T. lentulus X.Z. Jiang et L. Wang;

T. adpressus A.J. Chen, Frisvad et Samson;

T. pinophilus sensu stricto

Peterson, Jurjević (2019)

 

Однако сложности с идентификацией могут возникнуть даже с разными штаммами одного вида. Например, внутривидовая вариативность Talaromyces albobiverticillius (H.M. Hsieh, Y.M. Ju et S.Y. Hsieh) Samson, N. Yilmaz, Frisvad et Seifert была хорошо продемонстрирована как на уровне макроморфологии колонии, так и на уровне последовательностей ДНК, где наблюдались вариации (Frisvad et al., 2013). Возможно, в скором времени этот вид признают комплексным и разделят на самостоятельные виды.

Выбор генов для идентификации и филогении Talaromyces

При текущем внедрении консолидированного распознавания видов, где молекулярные данные получили основную роль, маркерные последовательности ДНК и филогенетический анализ стали “золотым стандартом” для точной идентификации грибов (Tsang et al., 2018). Стоит учитывать, что некоторые из маркеров недостаточно информативны для разделения видов в пределах рода. Так, внутренний транскрибируемый спейсер (ITS — internal transcribed spacer) — общепринятый генетический ДНК-штрихкод для грибов, возможно, слишком консервативен для рода Talaromyces и родственных родов (Schoch et al., 2012). В целом участок ITS можно использовать для идентификации видов Talaromyces, но в нескольких кладах он имеет низкую изменчивость, не позволяя различать некоторые виды (Samson et al., 2011; Yilmaz et al., 2014). Например, T. ruber (Stoll) N. Yilmaz, Houbraken, Frisvad et Samson и T. amestolkiae N. Yilmaz, Houbraken, Frisvad et Samson различаются всего одной парой оснований, поэтому для их идентификации необходимо использовать альтернативные гены (Yilmaz et al., 2012). Более поздние данные демонстрируют наличие внутригеномных вариаций ITS, что может вызвать проблемы при разграничении и идентификации видов, при этом в исследованных геномах Talaromyces pinophilus (Hedgc.) Samson, N. Yilmaz, Frisvad et Seifert, T. funiculosus (Thom) Samson, N. Yilmaz, Frisvad et Seifert, T. rugulosus (Thom) Samson, N. Yilmaz, Frisvad et Seifert такие вариации обнаружены не были (Paloi et al., 2022).

Более вариативный по сравнению с ITS ген β-тубулина BT2, а в частности его фрагмент BenA длиной 400–450 п. о., прост для амплификации, как и участок ITS, но при этом позволяет точно различить известные виды Talaromyces. Поэтому он был предложен в качестве альтернативного (вторичного) идентификационного маркера для этого рода (Yilmaz et al., 2014), и это предложение было поддержано в последующих работах (Visagie et al., 2015). Также была выявлена проблема с амплификацией паралогов гена β-тубулина в секции Islandici с использованием пар праймеров bt2a/bt2b или Bt2f/T22 (Peterson, Jurjević, 2013), что подтвердилось в отдельной работе по изучению Talaromyces из секции Islandici (Yilmaz, Visagie et al., 2016), где для этой секции авторы рекомендовали использовать пару праймеров T10 и Bt2b (Glass, Donaldson, 1995) при температуре отжига 50 или 52օC для амплификации.

Также имеются данные по анализу последовательностей гена митохондриальной цитохром С оксидазы 1 (СО1) в качестве ДНК-штрихкода для Penicillium subgen. Penicillium и родственных видов, показавшего хорошее таксономическое разрешение на видовом уровне, при этом амплификация и выравнивание CO1 были проще, при этом BenA обеспечивал большее разрешение, чем ITS или CO1 (Seifert et al., 2007).

Ген второй субъединицы РНК-полимеразы II(RPB2), показал хорошее филогенетическое разрешение для видов из отдела Ascomycota (Liu et al., 1999), но его амплификация, а также амплификация участка наибольшей субъединицы РНК-полимеразы II (RPB1) затруднена во всех секциях Talaromyces (Yilmaz et al., 2014a), что усложняет его использование в качестве вторичного идентификационного маркера в отличие от легко амплифицируемого участка BenA (Samson et al., 2014).

Анализ последовательностей гена кальмодулина (CaM) показал хорошую разрешающую способность для рода Talaromyces (Wang, Zhuang, 2007), однако отделить T. amestolkiae от T. ruber по этому участку не удалось (Yilmaz et al., 2012). Амплификация последовательностей кальмодулина часто затруднена в секции Trachyspermi при использовании пар праймеров CMD5/CMD6 и CF1/CF4 (Yilmaz et al., 2014).

Стоит отметить, что при выборе того или иного генетического участка стоит учитывать наличие и количество последовательностей ДНК для сравнения в базах данных (в первую очередь в GenBank). Больше всего последовательностей для рода Talaromyces доступно для участка ITS, который все же недостаточно информативен сам по себе и его желательно использовать вместе с рекомендованным как вторичный маркер участком BenA (Yilmaz et al., 2014), для которого также имеется достаточное количество последовательностей. Участки RPB1, RPB2 и CaM, рекомендованные для построения филогении на уровне рода (Visagie, Houbraken, et al., 2014) и выше, так же хорошо работают и для идентификации видов. Для RPB2 и CaM доступно значительное количество референсных последовательностей, а для участка RPB1 значительно меньше; при этом RPB1 и RPB2 достаточно трудны для амплифкации, в отличие от ITS, BenA и CaM. При разделении семейства Trichocomaceae были использованы участки Tsr1 и Cct8 (Houbraken, Samson, 2011), по которым доступны последовательности и для некоторых видов Talaromyces, вероятно, их тоже можно использовать для идентификации видов, но количество последовательностей доступных для сравнения крайне мало.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Количество видов рода Talaromyces за последнее десятилетие выросло более чем двукратно, достигнув в 2023 г. 198 видов, при этом значительная часть новых видов была описана из стран Азии. За это время произошла смена подходов в работе от морфологического через молекулярный к полифазному, который теперь является “золотым стандартом” для описания новых видов грибов, при этом для видовой идентификации ключевой стала процедура ДНК-штрихкодирования. Однако короткие последовательности ДНК не всегда информативны, и часто идентифицировать виды достаточно сложно. На это есть несколько причин: используемые генетические участки имеют недостаточную разрешающую способность, в общедоступных базах данных для сравнения отсутствуют нужные референсные последовательности, исследуемый вид является частью видового комплекса.

При обширном количестве макроморфологических признаков, очень варьирующих даже в пределах одного вида, наблюдается крайне скудное разнообразие микроморфологических признаков, что также не способствует простой идентификации видов Talaromyces. Выходом из этой ситуации может стать использование полифазного подхода, но соблюдать полные рекомендации, одновременно исследуя морфологические признаки, проводя молекулярную идентификацию и выявляя профиль вторичных метаболитов, — крайне ресурсоемкая задача. Поэтому часто на первое место при идентификации и описании новых видов Talaromyces выходит процедура ДНК-штрихкодирования как наиболее простой и точный метод. Этому способствует и большое количество накопленных последовательностей ДНК в общедоступных базах данных. Для ключевых, достаточно информативных и простых в амплификации генетических участков — универсального ITS и рекомендованного в качестве вторичного маркера BenA — таких последовательностей достаточно много.

Большая часть данных о новых видах сегодня поступает из стран Азии и Северной Америки, при этом по-прежнему остаются “белые пятна” в наших знаниях о разнообразии и распространении представителей рода Talaromyces в других регионах — как умеренного, так и тропического климата. Значительная часть видов Talaromyces известна из почвы, а описание новых видов происходит в последнее время с других, иногда не связанных с ней субстратов, в связи с чем при планировании работы следует учитывать этот факт. Все вышесказанное предполагает наличие высокого потенциала для описания новых видов, особенно на слабоизученных территориях. Таким образом, в будущем можно ожидать дальнейшего увеличения числа видов Talaromyces.

Исследование выполнено в рамках научного проекта государственного задания МГУ № 121032300081-7. Составление базы данных поддержано программой Министерства науки и высшего образования Российской Федерации (соглашение № 075-15-2021-1396).

×

作者简介

Е. Antonov

Lomonosov Moscow State University; Joint Vietnam-Russian Tropical Research and Technological Center; Kurchatov Institute National Research Center

编辑信件的主要联系方式.
Email: AntonovEA@my.msu.ru
俄罗斯联邦, Moscow; Vietnam, Hanoi; Moscow

A. Aleksandrova

Lomonosov Moscow State University; Joint Vietnam-Russian Tropical Research and Technological Center

Email: alina-alex2011@yandex.ru
俄罗斯联邦, Moscow; Vietnam

I. Antonova

Lomonosov Moscow State University

Email: AntonovEA@my.msu.ru
俄罗斯联邦, Moscow

参考

  1. Arx J.A. von A re-evaluation of the Eurotiales. Persoonia. 1987. V. 13 (3). P. 273–300.
  2. Barbosa R.N., Bezerra J.D.P., Souza-Motta C.M. et al. New Penicillium and Talaromyces species from honey, pollen and nests of stingless bees. Antonie van Leeuwenhoek. 2018. V. 111 (10). P. 1883–1912. https://doi.org/10.1007/s10482-018-1081-1
  3. Benjamin C.R. Ascocarps of Aspergillus and Penicillium. Mycologia. 1955. V. 47 (5). P. 669. https://doi.org/10.2307/3755578
  4. Berbee M.L., Yoshimura A., Sugiyama J. et al. Is Penicillium monophyletic? An evaluation of phylogeny in the family Trichocomaceae from 18S, 5.8S and ITS ribosomal DNA sequence data. Mycologia. 1995. V. 87 (2). P. 210. https://doi.org/10.2307/3760907
  5. Chen A.J., Sun B.D., Houbraken J. et al. New Talaromyces species from indoor environments in China. Stud. Mycol. 2016. V. 84 (1). P. 119–144. https://doi.org/10.1016/j.simyco.2016.11.003
  6. Crous P.W., Carnegie A.J., Wingfield M.J. et al. Fungal Planet description sheets: 868–950. Persoonia. 2019. V. 42. P. 291–473. https://doi.org/10.3767/persoonia.2019.42.11
  7. Crous P.W., Cock A.W. de (eds). Centraalbureau voor Schimmelcultures. Fungal biodiversity. CBS-KNAW Fungal Biodiversity Centre, Utrecht, 2009.
  8. Crous P.W., Wingfield M.J., Burgess T.I. et al. Fungal Planet description sheets: 469–557. Persoonia. 2016. V. 37 (1). P. 218–403. https://doi.org/10.3767/003158516X694499
  9. Crous P.W., Wingfield M.J., Burgess T.I. et al. Fungal Planet description sheets: 625–715. Persoonia. 2017. V. 40 (1). https://doi.org/10.3767/persoonia.2017.39.11
  10. Crous P.W., Wingfield M.J., Burgess T.I. et al. Fungal Planet description sheets: 716–784. Persoonia. 2018. V. 40 (1). P. 239–392. https://doi.org/10.3767/persoonia.2018.40.10
  11. Crous P.W., Luangsa-ard J.J., Wingfield M.J. et al. Fungal Planet description sheets: 785–867. Persoonia. 2018. V. 41 (1). P. 238–417. https://doi.org/10.3767/persoonia.2018.41.12
  12. Crous P.W., Wingfield M.J., Lombard L. et al. Fungal Planet description sheets: 951–1041. Persoonia. 2019. V. 43. P. 223–425. https://doi.org/10.3767/persoonia.2019.43.06
  13. Crous P.W., Cowan D.A., Maggs-Kölling G. et al. Fungal Planet description sheets: 1112–1181. Persoonia. 2020. V. 45 (1). P. 251–409. https://doi.org/10.3767/persoonia.2020.45.10
  14. Frisvad J.C., Filtenborg O., Samson R.A., et Stolk A.C. Chemotaxonomy of the genus Talaromyces. Antonie van Leeuwenhoek. 1990. V. 57 (3). P. 179–189. https://doi.org/10.1007/BF00403953
  15. Frisvad J.C., Yilmaz N., Thrane U. et al. Talaromyces atroroseus, a new species efficiently producing industrially relevant red pigments. PLOS One. 2013. V. 8 (12). P. e84102. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0084102
  16. Fujii T., Hoshino T., Inoue H. et al. Taxonomic revision of the cellulose-degrading fungus Acremonium cellulolyticus nomen nudum to Talaromyces based on phylogenetic analysis. FEMS Microbiol. Letters. 2014. V. 351 (1). P. 32–41. https://doi.org/10.1111/1574–6968.12352
  17. Gams W. Recent changes in fungal momenclature and their impact on naming of microfungi. In: D.-W. Li (ed.). Biology of Microfungi. Springer International Publishing, N.Y. etc., pp. 7–23.
  18. Gannibal F.B. Polyphasic approach in fungal taxonomy. Zhurnal obshchey biologii. 2021. V. 82 (3). P. 175–187 (in Russ.). https://doi.org/10.31857/S0044459621020032
  19. Glass N.L., Donaldson G.C. Development of primer sets designed for use with the PCR to amplify conserved genes from filamentous ascomycetes. Appl. Environm. Microbiol. 1995. V. 61 (4). P. 1323–1330. https://doi.org/10.1128/aem.61.4.1323–1330.1995
  20. Guerra Sierra B., Arteaga-Figueroa L., Sierra-Pelaéz S. et al. Talaromyces santanderensis: A new cadmium-tolerant fungus from cacao soils in Colombia. J. Fungi. 2022. V. 8 (10). P. 1042. https://doi.org/10.3390/jof8101042
  21. Guevara-Suarez M., Sutton D.A., Gené J. et al. Four new species of Talaromyces from clinical sources. Mycoses. 2017. V. 60 (10). P. 651–662. https://doi.org/10.1111/myc.12640
  22. Han P.-J., Sun J.-Q., Wang L. Two new sexual Talaromyces species discovered in estuary soil in China. J. Fungi. 2021. V. 8 (1). P. 36. https://doi.org/10.3390/jof8010036
  23. Hawksworth D.L., Crous P.W., Redhead S.A. et al. The Amsterdam declaration on fungal nomenclature. IMA Fungus. 2011. V. 2 (1). P. 105–112. https://doi.org/10.5598/imafungus.2011.02.01.14
  24. Heredia G., Reyes M., Arias R. et al. Talaromyces ocotl sp. nov. and observations on T. rotundus from conifer forest soils of Veracruz State, Mexico. Mycologia. 2001. V. 93 (3). P. 528–540. https://doi.org/10.1080/00275514.2001.12063185
  25. Houbraken J., de Vries R.P., Samson R.A. Modern taxonomy of biotechnologically important Aspergillus and Penicillium species. Adv. Appl. Microbiol. 2014. V. 86. P. 199–249. https://doi.org/10.1016/978-0-12-800262-9.00004-4
  26. Houbraken J., Kocsubé S., Visagie C.M. et al. Classification of Aspergillus, Penicillium, Talaromyces and related genera (Eurotiales): An overview of families, genera, subgenera, sections, series and species. Stud. Mycol. 2020. V. 95. P. 5–169. https://doi.org/10.1016/j.simyco.2020.05.002
  27. Houbraken J., Samson R.A. Phylogeny of Penicillium and the segregation of Trichocomaceae into three families. Stud. Mycol. 2011. V. 70. P. 1–51. https://doi.org/10.3114/sim.2011.70.01
  28. Houbraken J., Spierenburg H., Frisvad J.C. Rasamsonia, a new genus comprising thermotolerant and thermophilic Talaromyces and Geosmithia species. Antonie van Leeuwenhoek. 2012. V. 101 (2). P. 403–421. https://doi.org/10.1007/s10482-011-9647-1
  29. Index Fungorum. CABI Bioscience, 2023. http://www.indexfungorum.org/. Accessed 10.06.2023.
  30. Jiang X.-Z., Yu Z.-D., Ruan Y.-M. et al. Three new species of Talaromyces sect. Talaromyces discovered from soil in China. Scientific Reports. 2018. V. 8 (1). P. 4932. https://doi.org/10.1038/s41598-018-23370-x
  31. Kirilenko T.S. Key to soil ascomycetes. Kiev, Naukova dumka, 1978 (in Russ.).
  32. Klitgaard A., Iversen A., Andersen M.R. et al. Aggressive dereplication using UHPLC–DAD–QTOF: screening extracts for up to 3000 fungal secondary metabolites. Analyt. Bioanalyt. Chem. 2014. V. 406 (7). P. 1933–1943. https://doi.org/10.1007/s00216-013-7582-x
  33. Kong H. A new species of Talaromyces. Mycosystema. 1999. V. 18 (1). P. 9–11.
  34. LoBuglio K.F., Pitt J.I., Taylor J.W. Phylogenetic analysis of two ribosomal DNA regions indicates multiple independent losses of a sexual Talaromyces state among asexual Penicillium species in subgenus Biverticillium. Mycologia. 1993. V. 85 (4). P. 592. https://doi.org/10.2307/3760506
  35. Lücking R., Aime M.C., Robbertse B. et al. Unambiguous identification of fungi: where do we stand and how accurate and precise is fungal DNA barcoding? IMA Fungus. 2020. V. 11 (1). P. 14. https://doi.org/10.1186/s43008-020-00033-z
  36. Lund F. Differentiating Penicillium species by detection of indole metabolites using a filter paper method. Letters Appl. Microbiol. 1995. V. 20 (4). P. 228–231. https://doi.org/10.1111/j.1472-765X.1995.tb00434.x
  37. Malloch D., Cain R. The Trichocomataceae: Ascomycetes with Aspergillus, Paecilomyces, and Penicillium imperfect states. Can. J. Bot. 1972. V. 50 (12). P. 2613–2628. https://doi.org/10.1139/b72-335
  38. Manoch L., Dethoup T., Yilmaz N. et al. Two new Talaromyces species from soil in Thailand. Mycoscience. 2013. V. 54 (5). P. 335–342. https://doi.org/10.1016/j.myc.2012.12.002
  39. Nguyen T.T.T., Frisvad J.C., Kirk P.M. et al. Discovery and extrolite production of three new species of Talaromyces belonging to sections Helici and Purpurei from freshwater in Korea. J. Fungi. 2021. V. 7 (9). P. 722. https://doi.org/10.3390/jof7090722
  40. Nuankaew S., Chuaseeharonnachai C., Preedanon S. et al. Two novel species of Talaromyces discovered in a karst cave in the Satun UNESCO global geopark of Southern Thailand. J. Fungi. 2022. V. 8 (8). P. 825. https://doi.org/10.3390/jof8080825
  41. Ogawa H., Yoshimura A., Sugiyama J. Polyphyletic origins of species of the anamorphic genus Geosmithia and the relationships of the cleistothecial genera: Evidence from 18S, 5S and 28S rDNA sequence analyses. Mycologia. 1997. V. 89 (5). P. 756. https://doi.org/10.2307/3761132
  42. Paloi S., Luangsa-ard J.J., Mhuantong W. et al. Intragenomic variation in nuclear ribosomal markers and its implication in species delimitation, identification and barcoding in fungi. Fungal Biol. Rev. 2022. V. 42. P. 1–33. https://doi.org/10.1016/j.fbr.2022.04.002
  43. Peterson S.W., Jurjević Ž. Talaromyces columbinus sp. nov., and genealogical concordance analysis in Talaromyces clade 2a. PLOS One. 2013. V. 8 (10). P. e78084. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0078084
  44. Peterson S.W., Jurjević Ž. New species of Talaromyces isolated from maize, indoor air, and other substrates. Mycologia. 2017. P. 1–20. https://doi.org/10.1080/00275514.2017.1369339
  45. Peterson S.W., Jurjević Ž. The Talaromyces pinophilus species complex. Fungal Biology. 2019. V. 123 (10). P. 745–762. https://doi.org/10.1016/j.funbio.2019.06.007
  46. Pitt J. The genus Penicillium and its teleomorphic states Eupenicillium and Talaromyces. Academic Press, L., 1980.
  47. Pruksaphon K., Nosanchuk J.D., Ratanabanangkoon K. et al. Talaromyces marneffei infection: virulence, intracellular lifestyle and host defense mechanisms. J. Fungi. 2022. V. 8 (2). P. 200. https://doi.org/10.3390/jof8020200
  48. Pyrri I., Visagie C.M., Soccio P. et al. Re-evaluation of the taxonomy of Talaromyces minioluteus. J. Fungi. 2021. V. 7 (11). P. 993. https://doi.org/10.3390/jof7110993
  49. Rajeshkumar K.C., Yilmaz N., Marathe S.D. et al. Morphology and multigene phylogeny of Talaromyces amyrossmaniae, a new synnematous species belonging to the section Trachyspermi from India. MycoKeys. 2019. V. 45. P. 41–56. https://doi.org/10.3897/mycokeys.45.32549
  50. Rodríguez-Andrade E., Stchigel A.M., Terrab A. et al. Diversity of xerotolerant and xerophilic fungi in honey. IMA Fungus. 2019. V. 10 (1). P. 20. https://doi.org/10.1186/s43008-019-0021-7
  51. Romero S.M., Romero A.I., Barrera V. et al. Talaromyces systylus, a new synnematous species from Argentinean semi-arid soil. Nova Hedwigia. 2016. V. 102 (1–2). P. 241–256. https://doi.org/10.1127/nova_hedwigia/2015/0306
  52. Samson R.A., Pitt J.I. (eds). Integration of modern taxonomic methods for Penicillium and Aspergillus classification. N.Y., CRC Press, 2000. https://doi.org/10.1201/9781482284188
  53. Samson R.A., Visagie C.M., Houbraken J. et al. Phylogeny, identification and nomenclature of the genus Aspergillus. Stud. Mycol. 2014. V. 78 (1). P. 141–173. https://doi.org/10.1016/j.simyco.2014.07.004
  54. Samson R.A., Yilmaz N., Houbraken J. et al. Phylogeny and nomenclature of the genus Talaromyces and taxa accommodated in Penicillium subgenus Biverticillium. Stud. Mycol. 2011. V. 70. P. 159–183. https://doi.org/10.3114/sim.2011.70.04
  55. Samson R., Abdel-Fattah H. A new species of Talaromyces and a discussion of some recently described taxa. Persoonia. 1978. V. 9 (4). P. 501–504.
  56. Sang H., An T.-J., Kim C.S. et al. Two novel Talaromyces species isolated from medicinal crops in Korea. J. Microbiol. 2013. V. 51 (5). P. 704–708. https://doi.org/10.1007/s12275-013-3361-9
  57. Schoch C.L., Seifert K.A., Huhndorf S. et al. Nuclear ribosomal internal transcribed spacer (ITS) region as a universal DNA barcode marker for Fungi. PNAS. 2012. V. 109 (16). P. 6241–6246. https://doi.org/10.1073/pnas.1117018109
  58. Segretain G. Penicillium marneffei n. sp., agent d’une mycose du système réticulo-endothélial. Mycopathologia et Mycologia Applicata. 1959. V. 11 (4). P. 327–353. https://doi.org/10.1007/BF02089507
  59. Stalpers J.A. A revision of the genus Sporotrichum. Centraalbureau voor Schimmelcultures, Baarn, 1984.
  60. Stolk A.C. The genus Talaromyces: studies on Talaromyces and related genera II. Centraalbureau voor Schimmelcultures, Baarn, 1972.
  61. Stolk A.C., Samson R. Studies on Talaromyces and related genera I. Hamigera gen. nov. and Byssochlamys. Undefined. 1971.
  62. Su L., Niu Y.-C. Multilocus phylogenetic analysis of Talaromyces species isolated from cucurbit plants in China and description of two new species, T. cucurbitiradicus and T. endophyticus. Mycologia. 2018. V. 110 (2). P. 375–386. https://doi.org/10.1080/00275514.2018.1432221
  63. Subrahmanyam A., Gopalkrishnan K.S. Notes on thermophilic fungi. Indian Botanical Reporter. 1984. P. 33–36.
  64. Sun B.-D., Chen A.J., Houbraken J. et al. New section and species in Talaromyces. MycoKeys. 2020. V. 68. P. 75–113. https://doi.org/10.3897/mycokeys.68.52092
  65. Sun X.-R., Xu M.-Y., Kong W.-L. et al. Fine identification and classification of a novel beneficial Talaromyces fungal dpecies from Masson Pine rhizosphere soil. J. Fungi. 2022. V. 8 (2). P. 155. https://doi.org/10.3390/jof8020155
  66. Takada M., Udagawa S. A new species of heterothallic Talaromyces. A new species of heterothallic Talaromyces. 1988. V. 31 (2). P. 417–425.
  67. Takada M., Udagawa S. Talaromyces indigoticus, a new species from soil. Mycotaxon. 1993. V. 46. P. 129–134.
  68. Taylor J.W., Jacobson D.J., Kroken S. et al. Phylogenetic species recognition and species concepts in Fungi. Fungal Genetics Biol. 2000. V. 31 (1). P. 21–32. https://doi.org/10.1006/fgbi.2000.1228
  69. Tekpinar A.D., Kalmer A. Utility of various molecular markers in fungal identification and phylogeny. Nova Hedwigia. 2019. V. 109 (1–2). P. 187–224. https://doi.org/10.1127/nova_hedwigia/2019/0528
  70. Tian J. Talaromyces peaticola (Aspergillaceae, Eurotiales), a new species from the Zoige wetlands, China. Stud. Fungi. 2021. V. 6 (1). P. 391–399. https://doi.org/10.5943/sif/6/1/29
  71. Trovão J., Soares F., Tiago I. et al. Talaromyces saxoxalicus sp. nov., isolated from the limestone walls of the Old Cathedral of Coimbra, Portugal. Int. J. Systematic Evolutionary Microbiol. 2021. V. 71 (12). https://doi.org/10.1099/ijsem.0.005175
  72. Tsang C.-C., Tang J.Y.M., Lau S.K. et al. Taxonomy and evolution of Aspergillus, Penicillium and Talaromyces in the omics era — Past, present and future. Computational and Structural Biotechnology J. 2018. V. 16. P. 197–210. https://doi.org/10.1016/j.csbj.2018.05.003
  73. Tzean S.S., Chen J.L., Shiu S.H. Talaromyces unicus sp. nov. from Taiwan. Mycologia. 1992. V. 84 (5). P. 739–749. https://doi.org/10.1080/00275514.1992.12026200
  74. Udagawa S. Three new species of Talaromyces from Nepal. Mycotaxon. 1993. V. 48. P. 141–156.
  75. Udagawa S., Suzuki S. Talaromyces spectabilis, a new species of food-borne ascomycetes. Mycotaxon. 1994. V. 50. P. 81–88.
  76. Udagawa S., Uchiyama S., Kamiya S. Talaromyces lagunensis, a new species from Philippine soil. Mycoscience. 1994. V. 35 (4). P. 403–407. https://doi.org/10.1007/BF02268513
  77. Varriale S., Houbraken J., Granchi Z. et al. Talaromyces borbonicus, sp. nov., a novel fungus from biodegraded Arundo donax with potential abilities in lignocellulose conversion. Mycologia. 2018. V. 110 (2). P. 316–324. https://doi.org/10.1080/00275514.2018.1456835
  78. Visagie C.M., Hirooka Y., Tanney J.B. et al. Aspergillus, Penicillium and Talaromyces isolated from house dust samples collected around the world. Stud. Mycol. 2014. V. 78 (1). P. 63–139. https://doi.org/10.1016/j.simyco.2014.07.002
  79. Visagie C.M., Houbraken J., Frisvad J.C. et al. Identification and nomenclature of the genus Penicillium. Stud. Mycol. 2014. V. 78 (1). P. 343–371. https://doi.org/10.1016/j.simyco.2014.09.001
  80. Visagie C.M., Jacobs K. Three new additions to the genus Talaromyces isolated from Atlantis sandveld fynbos soils. Persoonia. 2012. V. 28 (1). P. 14–24. https://doi.org/10.3767/003158512X632455
  81. Visagie C.M., Llimona X., Vila J. et al. Phylogenetic relationships and the newly discovered sexual state of Talaromyces flavovirens, comb. nov. Mycotaxon. 2013. V. 122 (1). P. 399–411. https://doi.org/10.5248/122.399
  82. Visagie C.M., Yilmaz N., Frisvad J.C. et al. Five new Talaromyces species with ampulliform-like phialides and globose rough walled conidia resembling T. verruculosus. Mycoscience. 2015. V. 56 (5). P. 486–502. https://doi.org/10.1016/j.myc.2015.02.005
  83. Vu D., Groenewald M., De Vries M. et al. Large-scale generation and analysis of filamentous fungal DNA barcodes boosts coverage for kingdom fungi and reveals thresholds for fungal species and higher taxon delimitation. Stud. Mycol. 2019. V. 92 (1). P. 135–154. https://doi.org/10.1016/j.simyco.2018.05.001
  84. Wang L., Zhuang W.-Y. Phylogenetic analyses of penicillia based on partial calmodulin gene sequences. BioSystems. 2007. V. 88 (1–2). P. 113–126. https://doi.org/10.1016/j.biosystems.2006.04.008
  85. Wang Q.-M., Zhang Y.-H., Wang B. et al. Talaromyces neofusisporus and T. qii, two new species of section Talaromyces isolated from plant leaves in Tibet, China. Scientific Rep. 2016. V. 6 (1). P. 18622. https://doi.org/10.1038/srep18622
  86. Wang X.-C., Chen K., Qin W.-T. et al. Talaromyces heiheensis and T. mangshanicus, two new species from China. Mycol. Progress. 2017. V. 16 (1). P. 73–81. https://doi.org/10.1007/s11557–016–1251–3
  87. Wang X.-C., Chen K., Xia Y.-W. et al. A new species of Talaromyces (Trichocomaceae) from the Xisha Islands, Hainan, China. Phytotaxa. 2016. V. 267 (3). P. 187. https://doi.org/10.11646/phytotaxa.267.3.2
  88. Wang X.-C., Zhuang W.-Y. New species of Talaromyces (Trichocomaceae, Eurotiales) from Southwestern China. J. Fungi. 2022. V. 8 (7). P. 647. https://doi.org/10.3390/jof8070647
  89. Wei S., Xu X., Wang L. Four new species of Talaromyces section Talaromyces discovered in China. Mycologia. 2021. V. 113 (2). P. 492–508. https://doi.org/10.1080/00275514.2020.1853457
  90. Wijayawardene N., Hyde K., Dai D. et al. Outline of Fungi and fungus-like taxa — 2021. Mycosphere. 2022. V. 13 (1). P. 53–453. https://doi.org/10.5943/mycosphere/13/1/2
  91. Yaguchi T., Imai S., Udagawa S. Talaromyces helicus var. boninensis, a new variety from Japanese soil. Trans. Mycol. Soc. Japan. 1992. V. 33. P. 511–515.
  92. Yaguchi T., Miyadoh S., Udagawa S. Two new species of Talaromyces from soil. Trans. Mycol. Soc. Japan. 1993a. V. 34 (2). P. 245–254.
  93. Yaguchi T., Miyadoh S., Udagawa S.I. Talaromyces barcinensis, new species a new soil ascomycete. Trans. Mycol. Soc. Japan. 1993b. V. 34 (1). P. 15–19.
  94. Yaguchi T., Someya A., Miyadoh S. et al. A new variety of Talaromyces wortmannii and some observation on Talaromyces assiutensis. Mycoscience. 1994. V. 35 (1). P. 63–68. https://doi.org/10.1007/BF02268530
  95. Yaguchi T., Someya A., Udagawa S. Two new species of Talaromyces from Taiwan and Japan. Mycoscience. 1994. V. 35 (3). P. 249–255. https://doi.org/10.1007/BF02268446
  96. Yaguchi T., Someya A., Udagawa S. New and rare microfungi from the island of Hachijo-jima. 1996a. V. 37 (2). P. 157–162.
  97. Yaguchi T., Someya A., Udagawa S. A reappraisal of intrageneric classification of Talaromyces based on the ubiquinone systems. Mycoscience. 1996b. V. 37 (1). P. 55–60. https://doi.org/10.1007/BF02461457
  98. Yaguchl T., Someya A., Udagawa S. Talaromyces euchlorocarpius, a new species from soil. Mycoscience. 1999. V. 40 (2). P. 133–136. https://doi.org/10.1007/BF02464291
  99. Yilmaz N., Houbraken J., Hoekstra E.S. et al. Delimitation and characterisation of Talaromyces purpurogenus and related species. Persoonia. 2012. V. 29 (1). P. 39–54. https://doi.org/10.3767/003158512X659500
  100. Yilmaz N., López-Quintero C.A., Vasco-Palacios A.M. et al. Four novel Talaromyces species isolated from leaf litter from Colombian Amazon rain forests. Mycol. Progress. 2016. V. 15 (10–11). P. 1041–1056. https://doi.org/10.1007/s11557–016–1227–3
  101. Yilmaz N., Visagie C.M., Frisvad J.C. et al. Taxonomic re-evaluation of species in Talaromyces section Islandici, using a polyphasic approach. Persoonia. 2016. V. 36 (1). P. 37–56. https://doi.org/10.3767/003158516X688270
  102. Yilmaz N., Visagie C.M., Houbraken J. et al. Polyphasic taxonomy of the genus Talaromyces. Stud. Mycol. 2014. V. 78. P. 175–341. https://doi.org/10.1016/j.simyco.2014.08.001
  103. You Y.-H., Aktaruzzaman M., Heo I. et al. Talaromyces halophytorum sp. nov. isolated from roots of Limonium tetragonum in Korea. Mycobiology. 2020. V. 48 (2). P. 133–138. https://doi.org/10.1080/12298093.2020.1723389
  104. Zhang Z., Li X., Chen W. et al. Culturable fungi from urban soils in China II, with the description of 18 novel species in Ascomycota (Dothideomycetes, Eurotiomycetes, Leotiomycetes and Sordariomycetes). MycoKeys. 2023. V. 98. P. 167–220. https://doi.org/10.3897/mycokeys.98.102816
  105. Zhang Z.-K., Wang X.-C., Zhuang W.-Y. et al. New Species of Talaromyces (Fungi) isolated from soil in Southwestern China. Biology. 2021. V. 10 (8). P. 745. https://doi.org/10.3390/biology10080745
  106. Ганнибал Ф.Б. (Gannibal) Полифазный подход в таксономии грибов // Журнал общей биологии. 2021. Т. 82. № 3. С. 175–187.
  107. Кириленко Т.С. (Kirilenko) Определитель почвенных сумчатых грибов. Киев: Наукова думка, 1978. 263 с.

补充文件

附件文件
动作
1. JATS XML
2. Fig. 1. A bar chart showing the number of new species of Talaromyces (or their basionyms) described in the period from 1845 to 2023.

下载 (360KB)

版权所有 © Russian Academy of Sciences, 2024

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».